0 閲覧数 • 4:49 分 • July 8th, 2025
麻酔をかけ、遺伝子組み換えされたマウスに頭を頭保持アダプターに固定することから始めます。
マウスの脳は、神経活動の検出を可能にする蛍光タンパク質を発現します。
頭皮を切り開く前に、頭皮を剃り、順次殺菌します。
結合組織を取り除いて頭蓋骨を露出させます。
ターゲット領域に印を付け、接着剤の層を塗ります。
マイクロドリルを使用して、マークされた領域の頭蓋骨を薄くします。
頭蓋骨の一部を取り除いて脳を露出させます。
人工脳脊髄液を塗布して脳を湿らせます。
その領域に光学窓を取り付け、セメントアタッチメントのベースとなる接着剤で密閉します。
黒い歯科用セメントを塗布して光を遮断します。
頭蓋骨の反対側でも手順を繰り返します。
動物が回復するのを待ちます。
神経活動を画像化するには、固定された麻酔マウスを顕微鏡下に置き、画像を取得します。
麻酔をかけた20〜25グラム、1および1/2〜2および1/2か月齢のThy1-GCaMP6sマウスのつま先ピンチに対する反応の欠如を確認し、動物の目に軟膏を塗布します。滅菌ドレープで覆われた加熱パッドの上にマウスを置き、マウス用のヘッド保持アダプターを使用して頭を安定させます。両刃のカミソリで頭皮の大部分を剃り、露出した皮膚を連続して滅菌アルコール調製パッドとポビドンヨード溶液スクラブで洗浄します。次に、ハサミを使用して頭皮に長方形の2×3ミリメートルの切り込みを入れます。
綿棒を使用して、皮膚を脇に押しのけて直径3ミリメートルを超える露出領域を作成し、鈍い顕微手術用ブレードを使用して頭蓋骨に付着した結合組織をそっと取り除きます。歯科用ドリルで、S1領域の周りに直径3ミリメートルの円をそっとマークします。頭蓋骨の左側に同様の円を描いた後、骨の両側にシアノアクリレート瞬間接着剤の薄層を塗布して、歯科用セメント塗布のベースを提供します。
解剖顕微鏡下で、高速マイクロドリルを使用して、S1領域の周りの頭蓋骨の右側にある円形の溝を薄くして滑らかなエッジを作成し、必要に応じて真空で骨片を吸引します。約 2/3 の骨の深さに達したら、円形の骨弁が周囲の頭蓋骨から完全に解放されるまで、残りの骨の 3 分の 1 をゆっくりと慎重に薄くします。#5/45鉗子のペアを使用して、軟膜血管を損傷しないように注意しながら、円形の骨片をゆっくりと慎重に取り除き、硬膜を露出させます。
同じ方法で頭蓋骨の左側から骨弁を取り外した後、頭蓋骨の右側の光学窓を滅菌生理食塩水ですすぎ、実体顕微鏡で欠陥がないか確認します。窓の上部を頭蓋骨に置き、下部を開頭開口部内に置き、脳脊髄液の存在下で硬膜の上に置いて、開頭術領域に光学窓を取り付けます。シアノアクリレート瞬間接着剤を使用して、光学窓の端の上部を頭蓋骨に密閉します。
接着剤が乾いたら、ガラスの端、露出した頭蓋骨の右側の残りの部分、および創傷の縁に黒い歯科用セメントを塗布して光を遮断します。次に、左側の光学窓を取り付け、完全に横臥するまで動物を監視しながら回復させます。処置の7〜10日後、麻酔をかけた動物を加熱パッド上のヘッド保持アダプターに、2光子顕微鏡下で置き、光学窓と頭蓋骨の右側が顕微鏡の光軸に対して垂直に向けられるように注意します。
4倍倍の明視野照明を使用して、頭蓋窓の初期参照マップ画像を取得します。同じ関心領域の複数の画像を取得した後、左半球のS1領域内のカルシウム動態を画像化し、頭蓋骨の両側の各関心領域からの蛍光の変化を計算します。
本記事では、2光子顕微鏡を用いて遺伝子改変マウスの神経活動をイメージングするための詳細なプロトコルについて説明します。この手順では、動物の安全と快適性を確保しながら、脳活動を直接観察できるようにするための頭蓋窓の作製について解説します。
トランスジェニックモデルにおける信頼性の高い神経活動イメージングを確立することは、CNS創薬におけるターゲットの検証およびメカニズムのデリスキングを支援します。頭蓋窓手法により、ニューロンダイナミクスの縦断的かつ定量的なモニタリングが可能となり、初期段階の治療仮説における予測の信頼性が向上します。このアプローチは、疾患に関連するシステムにおけるターゲットへの結合やパスウェイ調節の直接的かつ変換可能なリードアウトを提供することで、生物学的な不確実性を低減します。
この手法は、反復的かつ定量的な神経活動測定が可能であるため、初期のターゲット検証からリード化合物の同定、そして前臨床での有効性試験に至るまでの創薬研究の連続的なプロセスに統合されます。
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最終更新:29 8月 2026