0 閲覧数 • 3:04 分 • July 8th, 2025
ウジョウバエ幼虫の切断された中枢神経系(CNS)を、生理食塩水で満たされた記録チャンバー内に配置します。
切断されたCNSには、腹側神経節と下行末梢神経が含まれます。
切断されたCNSの後端に吸引電極を配置します。チャンバーをアース線に接続して、バックグラウンドノイズを低減します。
負圧を加えて末梢神経を電極に引き込み、神経活動の細胞外記録を開始します。
ニューロンによる活動電位の自発的な生成を経時的に監視し、ベースライン発火頻度と呼び、安定させます。
溶媒をコントロールとして追加します。アクティビティを記録して、起動頻度がベースラインと一致していることを確認します。
溶媒に溶解した対象の試験剤を導入し、発火頻度を記録します。
頻度の増加は薬剤の興奮効果を示しますが、頻度の減少は抑制効果を示します。
まず、ガラスピペット電極をホウケイ酸ガラスのキャピラリーから5〜15メガオームの抵抗まで引きます。トランセクトされたCNSを200マイクロリットルの生理食塩水を含むワックスチャンバーに挿入します。アース線にはんだ付けされたワニ口クリップでコーティングされていない防虫ピンをクランプし、そのピンを生理食塩水に挿入して回路を完成させます。マイクロマニピュレーターを使用して、電極を切断されたCNSの尾端に向けます。
末梢神経幹を接続する前に、取得解析ソフトウェアでしきい値レベルを調整することで、バックグラウンドノイズを除去します。シリンジにわずかな負圧を加えて、末梢神経を吸引電極に引き込みます。データ収集ソフトウェアで記録を開始し、ベースライン発射速度データを収集する前に、ベースライン発射速度を 5 分間平衡させます。
5分後、200マイクロリットルの生理食塩水とビヒクルを加えてチャンバーの総容積を400マイクロリットルにし、制御発火速度の記録を開始します。対照処理の発火パターンがここに示す例と類似していない場合は、準備と記録を破棄します。
記録の3〜5分後にベースラインが確立されたら、200マイクロリットルの生理食塩水を回収し、生理食塩水に可溶化した実験薬200マイクロリットルを加えます。この薬物適用の時点を、薬物と最終濃度を含むコメントを含めて、取得分析ソフトウェアにラベルを付けます。
本記事では、ショウジョウバエ幼虫の切断された中枢神経系(CNS)から神経活動を記録する方法について説明します。この手法では、活動電位をモニタリングすることにより、さまざまな試験剤が神経細胞の発火頻度に及ぼす影響を評価します。
Drosophilaの中枢神経系(CNS)におけるニューロン活性の細胞外記録により、神経回路に対する化合物の影響を定量的に評価することが可能となり、初期段階のターゲットバリデーションおよびメカニズム的なリスク低減が促進されます。このアプローチは、神経活性剤の評価に予測的な信頼性を提供し、神経薬理学パイプラインにおけるポートフォリオの選別決定に寄与します。
本手法は、初期のターゲットバリデーションから、リード化合物の同定、そして神経活性剤の前臨床評価に至るまでの創薬探索の連続的なプロセスに統合されます。
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最終更新:22 8月 2026