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組
換えウイルスベクターに感染したCA3ニューロンを含むマウス海馬脳スライスを取ります。
ウイルスゲノムは、蛍光レポーターと電位依存性カルシウムチャネルの発現をダウンレギュレートするマイクロRNAでタグ付けされた光活性化チャネルを発現します。
暗い条件下で記録チャンバーにスライスを入れます。顕微鏡を使用して、蛍光CA3ニューロンを同定します。
感染したCA3ニューロンから入力を受け取るCA1ニューロンに記録電極をパッチします。膜を破裂させて細胞内イオン電流を記録します。
阻害剤を適用して抑制性神経伝達物質受容体をブロックし、興奮性シグナルのみを許可します。
光パルスを使用して、感染したCA3ニューロンの光活性化チャネルを刺激し、活動電位を生成します。
感染していないマウスでは、活動電位が電位依存性カルシウムチャネルを活性化し、カルシウムイオンの流入を引き起こし、神経伝達物質の放出を引き起こします。神経伝達物質は、CA1ニューロンの興奮性シナプス後電流(EPSC)を引き起こします。
感染したマウスでは、マイクロRNAを介した電位依存性カルシウムチャネルの減少により、EPSC阻害が起こります。
このプロトコルでは、Cetin and company によって以前に公開されたプロトコルに従って、15 日以上前に rAAV1/2 を脳に注射した動物を使用します。脳を分離し、ビブラトームとガスを注入した氷のように冷たい aCSF で急性脳スライスを作成します。
関心領域のスライスを収集し、光遺伝学的プローブの活性化を避けるために光への曝露を最小限に抑えます。同じaCSFでスライスを摂氏37度で30分間回復させます。脳スライスを保持するために特別に設計されたチャンバーを使用してください。次に、スライスを室温に戻し、6〜8時間健康を保
ちます。
続行するには、スライスを記録チャンバーに移し、毎分2ミリリットルのaCSFでスーパーフューズします。次に、発現した蛍光レポーターのシグナルを簡単にチェックして、感染の局在と強度を確認します。次に、パッチ電極に細胞内溶液を満たします。
次に、赤外線照明の下で、感染したニューロンからシナプス入力を受け取っているニューロン上で、密閉された全細胞構成を取得します。直列抵抗は補償せずに残すことができますが、一定で低くする必要があります。たとえば、CA3錐体ニューロンが感染した場合、CA1領域の近位から内側路の錐体ニューロンにパッチを貼ります。
細胞が縮小または腫れ始めたり、パッチが困難になったり、パッチが不安定になったりすると、選択したスライスは記録できるほど長く正常ではありません。
次に、薬理学を使用して、調査中のシナプス電流を分離します。たとえば、興奮性シナプス伝達を調査することが目的である場合は、バスにビクキュリンを加えることによって抑制性シナプス伝達をブロックします。
次に、感染したニューロンの体細胞に配置された光ファイバーに結合された473ナノメートルの青色レーザーを使用して、興奮性シナプス後電流などのシナプス電流を誘発します。レーザーをニューロンの軸索に向けないでください。
たとえば、シェーファーの担保に光を当てないようにしてください。軸索の直接脱分極は望ましくありません。次に、刺激の長さを最小に調整して、光パルスごとに複数の活動電位を誘発する可能性を減らします。
次に、レーザーの強度を調整して、小さいながらもはっきりと検出可能なシナプス電流を呼び起こします。たとえば、CA3とCA1錐体ニューロン間の興奮性シナプス伝達では、レーザーの強度を調整して、20〜50ピコアンペアのシナプス電流を誘発します。