$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
記録室で固定化された脳スライスから始めます。
顕微鏡のカメラ制御ソフトウェアを使用して、対象領域に焦点を合わせます
励起ライトを点灯して、さまざまな深さで複数の写真を撮ります。
この
ソフトウェアは、蛍光標識細胞の座標を検出します。
次に、記録電極を含む溶液で満たされたパッチピペットをチャンバーに配置します。
適切なソフトウェアを使用して、位置制御を校正します。
高倍率下で、蛍光標識細胞を正確に標的にするようにコントロールを再校正します。
ターゲットセルの座標を選択します。
パッチピペットの自動下降を開始します。
コンピュータは電極を介して抵抗を監視します。負圧を加えると、ピペットが細胞膜と接触することによる抵抗の増加は、ギガシールの形成を示します。
これに続いて、ソフトウェアは細胞膜に穿刺する圧力をさらに下げ、全細胞パッチ構成を取得します。
このステップでは、1つの脳スライスを記録チャンバーの中央に配置します。スライスホルダウンやハープで脳スライスを安定させる。蛍光セルを検出するには、4倍の倍率で関心のある領域を見つけます。次に、「クリックして移動」モードをオンにして顕微鏡ステージを移動し、関心領域の中心をクリックします。次に、高倍率レンズに切り替え、キーパッドのRFを使用して顕微鏡をz軸で動かして焦点を調整します。
ソフトウェアは、カメラ内の顕微鏡にさまざまな深さで一連の画像を撮影するように指示します。次に、これらの画像をコンピューター ビジョン処理にかけて、蛍光標識された細胞を見つけます。メイン列の [セルの検出] ボタン (単位 0) をクリックします。セル座標のリストがメモリ位置のGUIに表示されます。座標の横にある [X] ボタンをクリックして、リストから不要なセルを削除します。
次に、目的のセルをクリックします。セルに数字の付いた黄色の点が表示され、セルの座標がメモリ位置のGUIに表示されます。ピペットのオフセット座標を検出するために二次校正を実行するには、ガラスピペットの3分の1を内部溶液で満たします。次に、ヘッドステージに取り付けられたピペットホルダーにピペットをセットします。
低倍率では、キーパッドの1と2を使用して、ユニット1とユニット2を切り替えます。次に、ピペットを視野に持ってきて、キーパッドを使用して焦点を調整します。
次に、[Load Calibration]をクリックしてプライマリキャリブレーションをロードします。顕微鏡レンズを高倍率に切り替え、メインGUIを40回クリックします。ピペットチップを中央に持っていきます。次に、使用中のユニットの下にあるメインGUIの二次キャリブレーションボタンをクリックします。ターゲットセルにパッチを適用するには、[パッチコントロール]ボタンをクリックしてパッチコントロールGUIを開きます。メモリ位置 GUI の座標リストで目的のセルの横にある [移動] ボタンをクリックします。
その後
、メインGUIでユニットのCTMボタンをクリックして、移動を有効にします。目的のセルをクリックして、ピペットチップをセルに移動します。
次に、ユニット1の選択ボタンを使用して、2つのユニット間で入力信号を切り替えます。パッチコントロールGUIの[パッチ]ボタンをクリックします。自動パッチ適用が開始され、圧力と抵抗はパッチ制御GUIで監視できます。
自動パッチングアルゴリズムは、抵抗を監視し、一連のロジックループを介して圧力を制御してギガシールを形成します。ポップアップウィンドウはギガシールの形成を通知します。
このシステムは、抵抗変化を利用してセル表面の接触を認識します。細胞表面の接触が時間内に検出されない場合は、[次へ]ボタンを使用して、同じ自動パッチングトライアルにとどまりながらパッチング段階を進めます。
パッチコントロールGUIのそれぞれのボタンをクリックして、いつでも自動プロセスを操作できます。次に、[はい]を選択して、ザップと吸引を組み合わせて侵入します。次に、実験パッチログを保存します。