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$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
培地を含むマルチウェルプレートでミクログリア培養物を取ります。
テストウェルの培地の半分を銀ナノ粒子を含む培地に交換し、コントロールウェルの培地をビヒクル培地に置き換えます。インキュベート。
ミクログリアはナノ粒子を内在化し、活性化され、炎症誘発性サイトカインを放出します。
ビヒクル培地とこれらのサイトカインを含むコンディショニング培地を、収集チューブに取り付けられたフィルターに移します。
遠心分離してナノ粒子を除去し、サイトカインを保持します。
フィルターを新しい収集チューブに反転させ、遠心分離し、培地を収集します。新しいメディアを追加します。
次に、視床下部神経細胞培養を行います。
コントロールウェル培地の半分をビークル培地に交換し、テストウェル培地をコンディショニング培地に交換します。インキュベート。
サイトカインは視床下部ニューロンの受容体に結合し、ニューロン死を誘導するシグナル伝達経路を活性化します。
レサズリンを加えてインキュベートします。
生細胞では、デヒドロゲナーゼ酵素が弱蛍光レサズリンを蛍光レゾルフィンに還元します。
蛍光を測定します。
蛍光の低下は視床下部ニューロン死の増加を示し、ナノ粒子誘発性神経毒性を示唆しています。
まず、各プレートウェルから200マイクロリットルの上清培地を収集し、微量遠心チューブの上に置かれたナノ粒子を除去するフィルターにロードします。
ナノ粒子をろ過する場合、そのサイズ、形状、濃度がろ過効率に影響を与えるため、事前にろ過をテストすることをお勧めします。
次に、チューブを室温で14,000 gで15分間回転させます。次に、ナノ粒子を含むフロースルーを廃棄し、フィルターを逆さまにして新しい収集チューブに入れます。フィルターを1,000 gで逆さまにして2分間回転させ、サイトカインを含む濃縮コンディショニング培地を収集します。
次に、作りたてのDMEMを補充してコレクションの量を400マイクロリットルに増やし、チューブを氷の上に保管します。このアッセイでは、ミクログリア培養物を確立するために説明されているのと同じ方法を使用して、凍結ストックから視床下部細胞を確立します。最終的に、それらを使用して、200マイクロリットルの添加されたDMEMにウェルあたり5,000個の細胞を含む黒壁の透明底プレートを播種します。
24時間の培養後、100マイクロリットルの培地を取り出し、活性化されたミクログリア細胞培養物から収集した100マイクロリットルのろ過濃縮培地と交換します。次に、標準条件下でプレートを24時間インキュベートします。翌日、各ウェルに22マイクロリットルのレサズリン試薬を加え、20分間インキュベーションを続けます。次に、マルチモード分光光度計を使用して、蛍光測定を行い、相対蛍光単位の観点から細胞の生存率を推定します。