0 閲覧数 • 2:57 分 • July 8th, 2025
ショウジョウバエの3齢幼虫を採取し、二酸化炭素を使用して麻酔します。
顕微鏡下で、腹側面を上に向けて幼虫を配置し、分節神経を視覚化します。
これらの神経には、体壁の筋肉を神経支配し、幼虫の動きを制御する運動ニューロンが含まれています。
これらのニューロンの軸索終末は筋線維と結合して神経筋接合部またはNMJを形成します。
ニューロンは筋線維上の受容体に結合する神経伝達物質を放出し、イオン流入を引き起こし、信号伝達を引き起こします。
鉗子を使用して、腹側キューティクルをつまんで分節神経を損傷し、それによって動きを阻害します。
負傷した幼虫を幼虫の餌と一緒に寒天プレートに置き、生存を確実にします。
皿を皿に入れ、湿らせたペーパータオルで覆って水分を保ち、幼虫が回復できるように容器に保管します。
時間が経つにつれて、損傷は神経変性として知られる運動ニューロンの死につながり、NMJ が破壊されます。
各幼虫をCO2麻酔装置に置きます。解剖顕微鏡下で、各幼虫をその背側に慎重に転がして、キューティクル全体の分節神経を視覚化します。
損傷する前にキューティクルを通して分節神経を視覚化するために、各幼虫を慎重に背側に転がすことが不可欠です。
口のフックから始めて、サイズ5の鉗子を幼虫の長さの約2分の1から2/3に配置します。位置決めしたら、サイズ5の鉗子で分節神経を含む腹側キューティクルの約3分の1をつまみます。幼虫の分節神経が損傷するようにするには、分節神経を押しつぶすのに十分な力を加えますが、キューティクルはそのままにしておきます。正しい力の量を決定するには、10匹の幼虫を粉砕し、5時間後の死亡率が50%未満であることを確認します。
損傷後、幼虫を約0.5グラムの酵母ペーストを含むフルーツジュース寒天プレートに慎重に移します。各幼虫を、その前端が酵母ペーストの上に来るように配置し、餌を与え続けます。酵母ペーストと10匹の負傷した幼虫を入れた寒天プレートを、100 x 15ミリメートルの空のペトリ皿の底に置きます。ペーパータオルが幼虫や寒天プレートに触れないように、ペトリ皿を湿らせたペーパータオルで覆います。次に、シャーレを密閉容器に入れ、室温で入れます。最後に、損傷後の指定された期間後に解剖のために幼虫を回収します。
本記事では、分節神経を損傷させることにより、ショウジョウバエ(Drosophila)の3齢幼虫において神経変性を誘導し、解析する方法について説明します。この手順には、幼虫の麻酔、神経の損傷、および運動ニューロン機能と神経筋接合部への影響のモニタリングが含まれます。
本手法は、ショウジョウバエにおける運動ニューロン損傷の制御可能かつ誘導可能なモデルを提供することで、神経変性疾患研究におけるターゲットバリデーションを可能にします。また、分節神経損傷と定量可能な神経筋接合部の破綻を関連付けることにより、治療仮説のメカニズム的なリスク低減を支援します。このアプローチは、神経変性疾患プログラムにおける初期段階のターゲット選別の予測精度を高めます。
この手法は、神経変性疾患プログラムにおけるターゲット仮説の検証から、表現型スクリーニング、およびメカニズムの実証に至るまでのディスカバリー・コンティニュアムに適合します。
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最終更新:29 8月 2026