$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
無血清培地で目的のプラスミドを取ります。このプラスミドは、小胞特異的タンパク質を蛍光タグでコードします。
別のチューブで、無血清培地で希釈したトランスフェクション試薬を取ります。
2つの溶液を混合してインキュベートします。
トランスフェクション試薬はプラスミドと結合し、複合体を形成します。
血清を含む培地中の接着ニューロンを含むウェルを取ります。複合体を加えてインキュベートします。複合体は、プラスミドの細胞への侵入を促進します。
メディアを廃棄して、内部化されていない複合体を除去します。
新鮮な培地を加えてからインキュベートします。
プラスミドは転写される核に入り、ニューロンの小胞を標識する小胞特異的蛍光タンパク質に翻訳されます。
温度
制御下で蛍光顕微鏡を使用し、指定した時間間隔で画像を取得します。
画像を分析するには、トラッキングパラメータを定義します。
目的の小胞を特定し、その座標を各画像に記録します。
データをコンパイルして、小胞の動きを視覚化します。
この手順では、4マイクログラムのプラスミドを200マイクロリットルの無血清培地と混合します。別のチューブで、8マイクロリットルのトランスフェクション試薬を200マイクロリットルの無血清培地で希釈します。次に、溶液を室温で5分間インキュベートします。5分後、プラスミド溶液とトランスフェクション試薬溶液を混合し、室温で20分間インキュベートします。その後、コーティングされたガラス底皿に混合物を加えます。
ニューロンを摂氏37度で30分間インキュベートします。その後、培地を2ミリリットルの大脳皮質培地と交換し、ニューロンを摂氏37度で1〜2日間インキュベートします。
イメージングには、40倍対物レンズを備えたCCDカメラを搭載した蛍光顕微鏡を使用してください。インキュベーションシステムを使用して温度を摂氏37度に保ちます。画像取得ソフトウェアによって制御される100秒間にわたって、5秒ごとに1フレームでニューロン画像を取得します。
画像を分析するには、手動追跡でImageJソフトウェアですべての連続画像を開きます。連続した画像を結合するには、[Image]、[Stacks]、[Images to Stack]の順に選択し、[OK]をクリックします。その後、[Plugins]、[Manual Tracking]の順に選択します。追跡ウィンドウがポップアップ表示されます。[パラメータを表示]のチェックボックスをクリックし、パラメータセクションでトラッキングパラメータを定義します。
次に、「トラックを追加」をクリックして、新しいトラックを開始します。目的の小胞を決定したら、連続した画像の信号の中心をクリックして、XY座標を記録します。この手順を繰り返して、すべての連続した画像から小胞のXY座標を収集します。各画像は、基準点を選択すると、自動的に連続する画像に進みます。