0 閲覧数 • 3:22 分 • July 8th, 2025
1 穴のグリッドに取り付けられた、健康で脳損傷したゼブラフィッシュの幼虫から、樹脂が埋め込まれ、化学的に固定された極薄の脳切片を取ります。
切片は重金属で染色され、顕微鏡イメージング中の画像のコントラストが向上します。
グリッドをサンプルホルダーに入れ、ホルダーを顕微鏡チャンバーに移します。
電子ビームを生成する電子銃の下にグリッドを合わせます。
電磁レンズとコイルの配列が電子ビームをセクションに集束させます。
サンプルホルダーを動かして、ラスターパターンでセクションをスキャンします。
電子ビームが組織切片を通過すると、染色された電子密度の高い領域はより多くの電子を散乱させ、染色されていない領域は電子を透過します。
検出器はこれらの電子信号を収集し、高解像度の脳画像を作成します。
対照と比較して、損傷した脳は、損傷誘発性神経変性の特徴である多数の細胞内封入体を含む食作用性ミクログリアを示します。
走査型電子顕微鏡またはSEMにサンプルを取り付けるには、トランスファーボックスからグリッドをマルチグリッドサンプルホルダーにセクションを置き、SEMのチャンバーに移します。テキストプロトコルに従って検出器を位置合わせした後、スキャンする領域全体が画像ウィンドウに収まるようにズームアウトしてサンプルを事前に照射します。絞りを 120 マイクロメートルに変更し、画像の焦点をぼかしたら、縮小領域スキャン オプションを使用して、スキャン領域をできるだけ狭くします。
次に、フレームレートを約1〜2秒でスキャンするように設定します。次に、少なくとも 100 倍にズームインし、小さな領域を 10 秒間スキャンします。それでもその領域の明るさが変化する場合は、照射前を続けてください。この領域が周囲と比較して明るさが変化しない場合は、事前照射で十分です。
ピントを合わせた状態で、最も明るい領域または特徴を選択し、細部が見えるようにスキャン速度を設定します。顕微鏡ソフトウェアで、ヒストグラムを注意深く観察して明るさとコントラストを調整し、すべてのピクセルをダイナミックレンジに保ちます。最も暗い領域と特徴についても同じことを行います。明るい領域に戻り、ヒストグラムの両側にスペースがあることをもう一度確認します。
ステップ4〜6〜4〜8では、領域全体がダイナミックレンジ内になるように、明るさとコントラストの調整を非常に慎重に行う必要があります。
スキャンする領域全体がイメージングウィンドウに収まるようにズームアウトし、大面積取得プログラムを開始します。次に、ウィザード オプションを使用して、画面から領域を選択してモザイクを設定します。
必要な詳細に応じて2〜5ナノメートルのピクセルサイズを使用し、走査型透過型電子顕微鏡またはSTEMの滞留時間を3マイクロ秒に設定します。最適化を押して顕微鏡の設定を確認すると、必要な時間が表示されます。次に、外部スキャンジェネレータの電源を再度オンにして、[続行]を押します。
この記事では、電子顕微鏡を用いてゼブラフィッシュ稚魚の脳切片をイメージングする手法について詳しく説明します。ここでは、健康な脳組織と損傷した脳組織を比較し、神経変性変化を特定することに焦点を当てています。
ゼブラフィッシュ幼魚の脳損傷を高解像度でイメージングすることにより、超微細構造スケールで神経変性表現型を可視化し、初期のターゲットバリデーションにおけるメカニズム的なリスク低減が可能になります。このアプローチは、細胞病理を機能的な結果に結びつけることで、前臨床モデルにおける予測の信頼性を高め、神経変性疾患プログラムにおける継続または中止(go/no-go)の決定に寄与します。本手法は、再現性のある定量的な形態学的リードアウトを通じて、創薬探索から前臨床バリデーションまでのトランスレーショナルな連続性を向上させます。
本手法は、ターゲットのバリデーションから前臨床イメージングに至るまでの創薬プロセスの連続性に統合されており、表現型スクリーニングで得られたヒット化合物の超微細構造的な確認を可能にし、組織病理学的な忠実度に基づくGo/No-go判断基準をサポートします。
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最終更新:29 8月 2026