0 閲覧数 • 3:47 分 • July 8th, 2025
脳細胞と浸潤免疫細胞を含む灌流虚血性マウス脳組織を取ります。
ストレーナーで組織をみじん切りにし、バッファーですすいでください。
濾液を遠心分離し、上清を廃棄します。
ペレットを消化酵素溶液に再懸濁し、微量遠心チューブに移します。
消化酵素が細胞外マトリックスを分解し、細胞を緩めるためにインキュベートします。
懸濁液をろ過し、DNaseを含むバッファーですすぎ、汚染DNAを除去します。
次に、DNaseフリーバッファーで洗浄します。
濾液を遠心分離し、上清を廃棄します。
細胞を密度勾配培地に再懸濁します。次に、内容物を新しいチューブに移して混合します。遠心分離機で成分を密度で分離します。
ミエリンと破片を含む上清を取り除きます。
ペレットをDNaseフリーバッファーに再懸濁します。新しいチューブに移し、再度遠心分離します。
上清を廃棄して、密度勾配媒体を十分に除去します。
最後に、さらなる分析のために細胞をバッファーに再懸濁します。
5ミリリットルのシリンジのプランジャー端を使用して、脳組織の断片を100ミクロンの細胞ストレーナーに通し、カルシウムとマグネシウムを含む氷冷HBSSでストレーナーを継続的にすすぎます。次に、均質化された組織を氷の上に置きます。
すべてのサンプルが処理されたら、細胞懸濁液をスピンダウンします。そして、上清を慎重に捨てます。ペレットを1ミリリットルの消化バッファーに再懸濁します。次に、細胞懸濁液を2ミリリットルのチューブに移します。
そして、摂氏37度でゆっくりと連続回転して細胞をインキュベートします。1時間後、細胞懸濁液を70ミクロンの細胞ストレーナーでふるいにかけます。そして、DNaseを含む3ミリリットルの洗浄バッファーでフィルターを完全にすすいでください。次に、15ミリリットルのDNaseフリー洗浄バッファーでストレーナーを洗浄します。セルをスピンダウンし、上清を捨てます。
細胞破片とミエリンを除去するには、細胞を5ミリリットルの室温25%密度勾配培地に再懸濁し、細胞懸濁液を15ミリリットルのチューブに移します。細胞とグラジエントを十分に混合し、穏やかなピペッティングを繰り返します。次に、細胞溶液をスピンダウンします。
分離の最後に、ペレットを乱さずにミエリンコートと上清を注意深く吸引します。そして、細胞を10ミリリットルのDNaseフリー洗浄バッファーに再懸濁します。細胞を15ミリリットルのチューブに移し、再び回転させ、ペレットを100マイクロリットルのコールドウォッシュバッファーに再懸濁します。
本記事では、灌流後の虚血マウス脳組織から脳細胞を単離するための詳細なプロトコルについて説明します。この手法では、組織の細断、酵素消化、および密度勾配遠心分離を含む複数の工程を経て、さらなる解析のための純粋な細胞懸濁液を得ます。
虚血マウス組織から生存可能な免疫細胞および脳細胞を単離することで、脳卒中研究における神経炎症標的のメカニズム的なリスク低減が可能になります。本プロトコルは、機能解析のための精製された細胞集団を提供することで標的の妥当性確認をサポートし、パスウェイ解析における曖昧さを軽減します。この手法は、疾患に関連する免疫浸潤細胞の再現性のある単離を保証することで、初期探索における予測の信頼性を高めます。
この手法は、ターゲットの検証から前臨床プロファイリングに至るまでの創薬コンティニュアムに統合されており、虚血性損傷モデルにおける免疫に焦点を当てたスクリーニングおよび機序の追跡調査を可能にします。
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最終更新:29 8月 2026