ヒトシナプトソームを用いたミクログリア様細胞の生細胞食作用アッセイ

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p style='background-color:#ffffff;line-height:1.7999999999999999999;margin-bottom:0pt;margin-top:0pt;padding:0pt 0pt 12pt;' dir='ltr'>貪食活性を示すミクログリア様細胞を含むマルチウェルプレートを取ります。

核を標識するために核染色でインキュベートします。

アクチン重合阻害剤をネガティブコントロールウェルに追加します。

インキュベーション中、阻害剤はアクチンフィラメントに結合し、アクチン重合と食作用を阻害します。

プレートを低温に維持し、pH感受性色素標識ヒトシナプトソーム(神経シナプス終末の単離フラグメント)を追加します。

プレートを低温で遠心分離して、細胞とシナプトソームの相互作用を促進しますが、早期取り込みを防ぎます。

プレートを生細胞イメージングシステムに移します。

テストウェルでは、シナプトソームは貪食され、リソソームと融合してファゴリソソームを形成します。リソソームの酸性環境が色素を活性化し、蛍光を発します。

時間が経つにつれて、テストウェルでは、より多くのシナプトソームが飲み込まれ、蛍光がさらに増加します。

しかし、ネガティブコントロールウェルでは、アクチン重合が阻害され、シナプトソームの取り込みが妨げられます。結果として得られる最小の蛍光は、アクチンを介した食作用に対する蛍光依存性を確認します。

アッセイ当日、ウェルあたり40マイクロリットルの培地を除去し、10マイクロリットルの核染色液を加えます。プレートを2時間インキュベートします。標識されたシナプトソームを氷上で解凍し、水超音波処理器を使用して1分間穏やかに超音波処理します。繰り返しますが、すぐにシナプトソームを氷の上に置きます。標識シナプトソームとIMG完全培地を培地50マイクロリットルあたり1マイクロリットルのシナプトソームで希釈します。

ネガティブコントロールの場合、IMG完全培地中に60マイクロモルのサイトカラシンDを調製して、アクチン重合を阻害し、食作用を阻害します。次に、この溶液を各ウェルに10マイクロリットルを加えて最終濃度10マイクロモルにし、30分間インキュベートします。インキュベーターからプレートを取り出し、摂氏10度で10分間インキュベートします。プレートを氷の上に維持し、シナプトソームを含む培地50マイクロリットルを加えます。

プレートを摂氏10度で3分間270回gで遠心分離し、画像取得までプレートを氷上に保持します。プレートをライブセルイメージングリーダーに挿入し、分析するウェルを選択します。次に、20倍の対物レンズを選択します。次に、焦点、発光ダイオード、またはLEDの強度積分時間と、明視野と青色チャンネルのゲインを調整します。シナプトソームの蛍光は、最初の時点で無視できるはずです。

ウェルごとにモンタージュで取得する個々のタイルの数を選択します。井戸の中央に16枚のタイルを取得し、井戸全体の約5%を画像化します。温度を摂氏37度に設定し、イメージングに必要な時間間隔を設定します。

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最終更新:29 8月 2026