0 閲覧数 • 3:28 分 • April 28th, 2025
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p style='background-color:#ffffff;line-height:1.7999999999999999999;margin-bottom:0pt;margin-top:0pt;padding:0pt 0pt 12pt;' dir='ltr'>貪食活性を示すミクログリア様細胞を含むマルチウェルプレートを取ります。核を標識するために核染色でインキュベートします。
アクチン重合阻害剤をネガティブコントロールウェルに追加します。
インキュベーション中、阻害剤はアクチンフィラメントに結合し、アクチン重合と食作用を阻害します。
プレートを低温に維持し、pH感受性色素標識ヒトシナプトソーム(神経シナプス終末の単離フラグメント)を追加します。
プレートを低温で遠心分離して、細胞とシナプトソームの相互作用を促進しますが、早期取り込みを防ぎます。
プレートを生細胞イメージングシステムに移します。
テストウェルでは、シナプトソームは貪食され、リソソームと融合してファゴリソソームを形成します。リソソームの酸性環境が色素を活性化し、蛍光を発します。
時間が経つにつれて、テストウェルでは、より多くのシナプトソームが飲み込まれ、蛍光がさらに増加します。
しかし、ネガティブコントロールウェルでは、アクチン重合が阻害され、シナプトソームの取り込みが妨げられます。結果として得られる最小の蛍光は、アクチンを介した食作用に対する蛍光依存性を確認します。
アッセイ当日、ウェルあたり40マイクロリットルの培地を除去し、10マイクロリットルの核染色液を加えます。プレートを2時間インキュベートします。標識されたシナプトソームを氷上で解凍し、水超音波処理器を使用して1分間穏やかに超音波処理します。繰り返しますが、すぐにシナプトソームを氷の上に置きます。標識シナプトソームとIMG完全培地を培地50マイクロリットルあたり1マイクロリットルのシナプトソームで希釈します。
ネガティブコントロールの場合、IMG完全培地中に60マイクロモルのサイトカラシンDを調製して、アクチン重合を阻害し、食作用を阻害します。次に、この溶液を各ウェルに10マイクロリットルを加えて最終濃度10マイクロモルにし、30分間インキュベートします。インキュベーターからプレートを取り出し、摂氏10度で10分間インキュベートします。プレートを氷の上に維持し、シナプトソームを含む培地50マイクロリットルを加えます。
プレートを摂氏10度で3分間270回gで遠心分離し、画像取得までプレートを氷上に保持します。プレートをライブセルイメージングリーダーに挿入し、分析するウェルを選択します。次に、20倍の対物レンズを選択します。次に、焦点、発光ダイオード、またはLEDの強度積分時間と、明視野と青色チャンネルのゲインを調整します。シナプトソームの蛍光は、最初の時点で無視できるはずです。
ウェルごとにモンタージュで取得する個々のタイルの数を選択します。井戸の中央に16枚のタイルを取得し、井戸全体の約5%を画像化します。温度を摂氏37度に設定し、イメージングに必要な時間間隔を設定します。
本研究では、ライブセルイメージングシステムを用いて、ミクログリア様細胞の食作用を調査します。食作用のメカニズムを解明するため、アクチン重合阻害がシナプトソームの取り込みに及ぼす影響を解析します。
ヒトシナプトソームとミクログリア様細胞を用いた定量的なライブセル食作用アッセイは、神経変性疾患のパイプラインに関連する神経免疫メカニズムを調査するための堅牢なプラットフォームを提供します。このアプローチは、ヒトに関連するシステムにおいてアクチン依存的な食作用機能を単離することで、メカニズム的なリスク低減とターゲットの検証を可能にします。本アッセイは、神経炎症およびシナプス維持研究における初期段階のポートフォリオ決定に対する予測的な信頼性を支持します。
この生細胞アッセイは、初期探索からリード化合物同定までの過程に位置づけられ、神経生物学におけるターゲットバリデーションおよびメカニズム研究に有用なデータを提供します。
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最終更新:29 8月 2026