0 閲覧数 • 4:31 分 • April 28th, 2025
再水和されたフィブリンゲル包埋、固定、および透過処理された患者由来の罹患線維血管組織を取ります。この組織には、内皮細胞と周皮細胞を備えた不規則な血管新生構造が含まれています。
非特異的抗体結合を防ぐために、組織をブロッキング溶液で処理します。
内皮細胞および周皮細胞上の表面タンパク質を標的とする一次抗体とインキュベートします。
バッファーですすぎ、結合していない抗体を除去し、バッファーでインキュベートします。
バッファー洗浄後、蛍光色素結合二次抗体とインキュベートして一次抗体に結合させます。
バッファーで洗浄して余分な抗体を除去し、バッファー中でインキュベートします。
バッファー洗浄後、核色素を加えて細胞核を染色します。緩衝液と脱イオン水ですすぎ、結合していない色素を除去します。
組織を顕微鏡スライドに移します。
封入剤を塗布し、速硬化封入材を含むカバーガラスでシールします。
自然乾燥後、スライドを低温で保管してください。次に、落射蛍光顕微鏡で組織を画像化し、血管新生構造内の内皮細胞と周皮細胞の空間的配置を視覚化します。
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p style='background-color:#ffffff;line-height:1.38;margin-bottom:0pt;margin-top:0pt;padding:0pt 0pt 12pt;' dir='ltr'>プレートを支柱に傾け、液滴を500マイクロリットルのブロッキング溶液で室温で2時間インキュベートします。テキストプロトコルに従って一次抗体混合物を調製します。次に、丸縁のスパチュラを使用して、液滴を丸底の96ウェルプレートに移します。液滴を液滴あたり30マイクロリットルの一次抗体混合物で摂氏4度で一晩インキュベートします。翌日、液滴をウェルあたり2ミリリットルの洗浄液を含む12ウェルプレートに移します。液滴を5分間の洗浄を3回洗います。次に、液滴を30分間の9回の洗浄で洗浄します。
翌日、液滴をPBSで3回すすいでください。テキストプロトコルに従って、適切な蛍光色素結合二次抗体混合物を調製します。前述のように、液滴を丸底の96ウェルプレートに移します。そして、プレートを30マイクロリットルの二次抗体混合物とともに、光から保護して室温で4時間インキュベートします。
4時間後、液滴をウェルあたり2ミリリットルの洗浄液を含む12ウェルプレートに移します。まず、液滴を5分間の洗浄を3回洗います。次に、液滴を30分間の洗浄を4回洗浄します。
翌日、液滴を洗浄液で30分間5回、PBSで30分間3回すすぎます。翌日、前述のように液滴を丸底96ウェルプレートに移します。液滴をHoechst核染色剤で室温で30分間対比染色します。液滴をウェルあたり2ミリリットルのPBSを含む12ウェルプレートに移します。そしてPBSで3回すすいでください。
次に、正方形のカバーガラスの端に沿って、急速硬化の取り付け媒体の狭い層を塗布します。そして1分間乾かします。次に、液滴を脱イオン水を含む12ウェルプレートのウェルに浸してすすぎます。そして液滴を顕微鏡スライドに移します。
次に、15マイクロリットルの非硬化性退色防止封入剤を液滴に塗布します。カバーガラスを液滴の上にそっと置き、取り付け媒体をスライドに向けます。そして落ち着かせてください。
スライドを室温で2時間乾燥させ、摂氏4度で一晩保管します。最後に、20倍または40倍の対物レンズで光学セクショニング機能を備えた正立落射蛍光顕微鏡でスライドを画像化します。
本記事では、蛍光顕微鏡を用いて患者由来の病変線維血管組織をイメージングするためのプロトコルについて詳述します。この手法では、特定の抗体を使用して、新生血管構造内の内皮細胞およびペリサイトを可視化します。
この免疫蛍光染色プロトコルにより、患者由来の線維血管組織における内皮細胞およびペリサイトの詳細な空間マッピングが可能となり、増殖性糖尿病網膜症研究におけるターゲット検証をサポートします。フィブリンゲル内で新生血管構造を維持することで、本手法は血管新生経路のメカニズム的なリスク低減のための疾患関連システムを提供します。このアプローチは、分子マーカーを構造的な病理に結びつけることで、前臨床段階のターゲット選択における予測の信頼性を高めます。
この手法は、ターゲットの同定からリード最適化に至る創薬のプロセスに適合し、機能解析に先立つイメージングベースのバリデーションを提供します。
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最終更新:22 8月 2026