$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
固定および透過処理されたラット冠状組織凍結切片を含むスライドを取ります。
疎水性ペンで切片の輪郭を描き、制御された染色環境を作り出します。
切片を湿度チャンバーに移し、後続のステップで試薬や組織が乾燥するのを防ぎます。
切片を血清タンパク質で処理して、非特異的結合部位をブロックします。
バッファーですすぎ、余分な血清タンパク質を除去します。
ミクログリアおよびニューロン上の特定のタンパク質を標的とする一次抗体とインキュベートします。
バッファーで洗浄して、結合していない一次抗体を除去します。
一次抗体に結合する蛍光色素結合二次抗体とインキュベートします。
バッファーで洗浄して、結合していない二次抗体を除去します。その後、二重蒸留水ですすいでください。
蛍光信号を保護するために水性封入剤を塗布し、カバーガラスを置き、密封します。
蛍光顕微鏡で切片を画像化し、免疫標識ミクログリアとニューロンを視覚化します。
スライドの端を乾かし、パップペンでスライドの端の周りに撥液性の境界線を作り、液体を均一に覆い、エッジの影響を軽減します。次に、PBS中の300マイクロリットルの血清を各スライドに加えて、切片をブロックします。血清は、二次抗体が産生される種からのものでなければなりません。この場合、ロバの血清が使用されました。
不
均一な染色を避けるために、ブロッキング溶液がスライドの端まで伸び、組織を完全に覆っていることを確認してください。スライドを湿度チャンバーに入れ、室温で1時間インキュベートします。インキュベーション中に、一次抗体を調製します。IBA1抗体(1〜5,000)および汎ニューロン抗体(1〜500)をPBS中の1%ロバ血清の混合物に希釈します。
ブロッキング溶液を取り除き、目的の両方の抗体を含む300マイクロリットルの抗体溶液を加えます。すべてのスライドを湿度チャンバーに入れ、摂氏4度で一晩インキュベートします。翌朝、スライドをPBSで5分間3回洗浄します。
蛍
光二次抗体混合物を、両方をPBS中の1%ロバ血清で1〜250に希釈することにより調製します。各スライドに300マイクロリットルの混合物を追加します。そして、スライドを室温で60分間、軽くて密閉された湿度チャンバーに入れます。次に、スライドをPBSで5分間3回洗浄します。そして最後に、二重蒸留水ですすいでください。PBSで洗浄中はスライドを光から保護してください。
各スライドに蛍光シグナル強度を維持するのに役立つ水性封入剤を数滴加えます。次に、スライドをカバースリップし、綿の先端のアプリケーターを使用して残っている気泡を取り除きます。取り付け媒体をスライドに密閉し、セクションの乾燥を防ぐために、端をマニキュアでコーティングします。スライドは、摂氏4度のホイルで包まれた軽くて密閉された容器に保管する前に、光から保護された箱で1時間平らに乾燥させます。