器官型マウス海馬スライスにおけるFRETベースセンサーを用いた細胞内ATPダイナミクスのイメージング

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器官型マウス海馬スライスを実験室に固定します。

スライスには、ドナーおよびアクセプター蛍光タンパク質を持つATPセンサーを発現する形質導入ニューロンとアストロサイトが含まれています。

チャンバーを蛍光顕微鏡ステージに置き、酸素化ACSFで灌流します。

スライスがバッファリングされた条件に適応できるようにします。

透過光を使用して、スライスに焦点を合わせ、関心のある領域を特定します。

蛍光モードに切り替え、ドナー蛍光タンパク質を励起して蛍光発光を開始します。

ATPが結合すると、センサーはコンフォメーション変化を起こし、ドナーからアクセプターへの蛍光ベースのエネルギー伝達を可能にし、より長い波長で蛍光を放出します。

ダイクロイックミラーとバンドパスフィルターを使用して、ドナーとアクセプターの放射を分離して分離します。

背景減算のために蛍光のない領域を選択します。次に、標的細胞を特定し、経時的な蛍光を記録します。

FRET比を計算して、細胞内ATPレベルをリアルタイムで監視します。

実験用ACSFを調製し、カルボゲン供給に接続された挿入チューブを通して95%の酸素と5%の二酸化炭素で少なくとも30分間泡立てることにより、7.4のpHを得る。実験中、生理食塩水を泡立てたままにしてください。次に、モノクロメーターの蛍光光源をオンにします。

器官型スライス培養物を実験室に移します。オルガノタイプスライス培養の上にグリッドを置き、フレームを下にして培養物に触れず、糸を上にして膜に触れます。チャンバーを顕微鏡ステージに置き、灌流システムに接続します。

蠕動ポンプを毎分1.5〜2.5ミリリットルの流量でオンにします。灌流システムの漏れがないことを確認してください。透過光を使用して、培養したスライスに焦点を合わせ、実験を行う領域を特定します。

イメージング実験を開始する前に、スライスが生理食塩水条件に適応するまで少なくとも15分待ちます。次に、カメラとイメージングソフトウェアの電源を入れます。ドナー蛍光タンパク質を435ナノメートルで励起します。露光時間を40〜90ミリ秒に設定します。

次に、ダイクロイックミラーとフィルターをビームスプリッターユニットに挿入します。発光イメージスプリッターで500ナノメートルの蛍光発光を分割し、482プラスマイナス16および542プラスマイナス13.5ナノメートルのバンドパスフィルターを使用して、ドナーとアクセプターの蛍光をさらに分離します。

バックグラウンド減算のために、明らかに細胞蛍光を欠いている関心領域を選択します。画面上の画像内の標識組織の単一構造を丸で囲んで、ROIを作成します。全体の記録時間における画像取得の頻度を設定します。30分を超える実験では、光毒性を防ぐために0.2〜0.5ヘルツの取得周波数が推奨されます。その後、録音を開始します。

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最終更新:29 8月 2026