0 閲覧数 • 3:40 分 • April 28th, 2025
器官型マウス海馬スライスを実験室に固定します。
スライスには、ドナーおよびアクセプター蛍光タンパク質を持つATPセンサーを発現する形質導入ニューロンとアストロサイトが含まれています。
チャンバーを蛍光顕微鏡ステージに置き、酸素化ACSFで灌流します。
スライスがバッファリングされた条件に適応できるようにします。
透過光を使用して、スライスに焦点を合わせ、関心のある領域を特定します。
蛍光モードに切り替え、ドナー蛍光タンパク質を励起して蛍光発光を開始します。
ATPが結合すると、センサーはコンフォメーション変化を起こし、ドナーからアクセプターへの蛍光ベースのエネルギー伝達を可能にし、より長い波長で蛍光を放出します。
ダイクロイックミラーとバンドパスフィルターを使用して、ドナーとアクセプターの放射を分離して分離します。
背景減算のために蛍光のない領域を選択します。次に、標的細胞を特定し、経時的な蛍光を記録します。
FRET比を計算して、細胞内ATPレベルをリアルタイムで監視します。
実験用ACSFを調製し、カルボゲン供給に接続された挿入チューブを通して95%の酸素と5%の二酸化炭素で少なくとも30分間泡立てることにより、7.4のpHを得る。実験中、生理食塩水を泡立てたままにしてください。次に、モノクロメーターの蛍光光源をオンにします。
器官型スライス培養物を実験室に移します。オルガノタイプスライス培養の上にグリッドを置き、フレームを下にして培養物に触れず、糸を上にして膜に触れます。チャンバーを顕微鏡ステージに置き、灌流システムに接続します。
蠕動ポンプを毎分1.5〜2.5ミリリットルの流量でオンにします。灌流システムの漏れがないことを確認してください。透過光を使用して、培養したスライスに焦点を合わせ、実験を行う領域を特定します。
イメージング実験を開始する前に、スライスが生理食塩水条件に適応するまで少なくとも15分待ちます。次に、カメラとイメージングソフトウェアの電源を入れます。ドナー蛍光タンパク質を435ナノメートルで励起します。露光時間を40〜90ミリ秒に設定します。
次に、ダイクロイックミラーとフィルターをビームスプリッターユニットに挿入します。発光イメージスプリッターで500ナノメートルの蛍光発光を分割し、482プラスマイナス16および542プラスマイナス13.5ナノメートルのバンドパスフィルターを使用して、ドナーとアクセプターの蛍光をさらに分離します。
バックグラウンド減算のために、明らかに細胞蛍光を欠いている関心領域を選択します。画面上の画像内の標識組織の単一構造を丸で囲んで、ROIを作成します。全体の記録時間における画像取得の頻度を設定します。30分を超える実験では、光毒性を防ぐために0.2〜0.5ヘルツの取得周波数が推奨されます。その後、録音を開始します。
本記事では、有機培養マウス海馬スライスにおいて、蛍光共鳴エネルギー転移(FRET)を用いて細胞内ATPレベルをリアルタイムでモニタリングする方法について解説します。この手法では、ドナーおよびアクセプター蛍光タンパク質を備えたATPセンサーを発現させた、導入後のニューロンおよびアストロサイトを使用します。
生体脳組織における細胞内ATP動態のモニタリングにより、細胞のエネルギー状態と機能的結果を関連付けることで、神経治療ターゲットのメカニズム的なリスク低減が可能になります。このFRETベースのアプローチは、生理的条件下でのニューロンおよびグリア細胞の代謝を定量的なリアルタイムリードアウトとして提供することで、初期創薬段階におけるターゲット検証を支援します。本手法は、組織構造を維持しながら、薬理学的または遺伝学的な摂動に応答したATP変動の経時的な評価を可能にするため、前臨床モデルにおける予測の信頼性を向上させます。
この手法は、初期のターゲット検証から前臨床プロファイリングに至る創薬の連続的なプロセスに適合し、リアルタイムのATPモニタリングによって作用機序の解明と細胞毒性評価の両方を行うことができます。
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最終更新:29 8月 2026