$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
まず、麻酔をかけたトランスジェニックゼブラフィッシュの幼虫をアガロースに固定化し、麻酔液の入ったペトリ皿に入れます。
詳細なイメージングのために2つの光子を使用する2光子レーザー顕微鏡の下に配置します。
脳の最上層と最下層に焦点を当てて、画像の境界を設定します。
レーザー治療前にさまざまな深さで画像をキャプチャしてニューロンを観察します。
関心領域のフォーカスを調整し、フレーム サイズを調整してニューロンのフォーカスを絞り込みます。
ニューロンを選択し、2光子レーザーを使用して照射します。
レーザーは局所的な熱を誘導し、周囲の組織への損傷を最小限に抑えながら神経細胞の死を引き起こします。画像をキャプチャします。
治療前と治療後の画像を比較して、蛍光の変化を評価します。
ニューロンをより深い平面に再集中させ、照射を繰り返して、関心領域のすべてのニューロンを治療します。
画像を再キャプチャし、処理前の画像と比較します。レーザー治療後の蛍光の喪失は、ニューロンのアブレーションの成功を確認します。
アガロース包埋幼虫を2光子レーザー走査顕微鏡下に置き、顕微鏡システムを起動します。画像取得ソフトウェアを開き、[レーザー]タブで[オン]ボタンをクリックしてレーザーをオンにします。レーザーのステータスがビジーからモードロックに変わるのを待ちます。
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チャネル]タブで、レーザーの波長をEGFPアブレーションの場合は880ナノメートル、GcAMPアブレーションの場合は800ナノメートルに設定します。レンズリボルバーを手動で動かして、20倍対物レンズを選択します。次に、[検索] タブをクリックします。GFPをクリックして光路を変更し、蛍光を目で直接見ます。ゼブラフィッシュの幼虫の脳を視野の中央に配置します。次に、[取得]タブをクリックして2光子顕微鏡に戻り、レーザー出力とゲインを設定します。
アブレーション前の状態の記録として、[Z-Stack]をクリックして[Z-Stack]オプションを選択します。そして、幼虫の脳の腹側端に焦点を合わせた後、最初に設定ボタンをクリックして下限を設定します。そして、脳の一番背側の表面に焦点を合わせた後、最後に設定ボタンをクリックして上限を設定します。最後に、[実験の開始] ボタンをクリックして、Z-Stack 画像取得を実行します。
次に、レンズリボルバーを手動で動かして63倍対物レンズを選択します。次に、[検索]タブをクリックして、落射蛍光顕微鏡に切り替えます。目で切除する細胞を中央に配置します。次に、[取得]タブをクリックして、レーザー走査顕微鏡に戻ります。
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取得モード]タブで、フレームサイズを256 x 256に設定します。[ライブ] をクリックして、目的のニューロンを観察します。次に、最も背側から始めて、切除する細胞に焦点が合っている焦点面を見つけます。Regions関数を使用して、各ニューロンの直径の約1分の1の細胞サイズの小さな円形領域をROIとしてマークします。
スキャン
速度を 256 x 256 ピクセルあたり 13.93 秒に設定すると、これはピクセルあたり約 200 マイクロ秒、またはハーフミクロンあたり 200 マイクロ秒のレーザー滞留時間に相当します。また、反復サイクルを4回の繰り返しに設定します。「実験の開始」をクリックして、時系列関数と漂白関数を実行します。アブレーション前の画像とアブレーション後の画像を時系列サイクルで比較し、標的細胞の蛍光が消えていることを確認します。
次に、焦点面を少し深く移動し、アブレーションされていないセルが表示される次の焦点面を選択します。先ほど示したように漂白機能を実行し、目的の神経構造のすべての細胞がアブレーションされるまでこのプロセスを繰り返します。アブレーション後、細胞に蛍光が消えていないか確認し、必要に応じてレーザー照射を繰り返します。