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生後のラットの子犬の脳から得られた小脳スライスを培地を含むマルチウェルプレートで入手することから始めます。
培地を取り出し、スライスを細胞質蛍光色素溶液でインキュベートして顆粒細胞(GC)を標識します。
スライスをトランスウェルインサートメンブレンに移し、余分な色素を取り除きます。
インサートを取り外し、ウェルに培地を充填します。次に、インサートを交換し、組織を覆うメディアを追加します。
組織がインサート膜に付着するようにインキュベートします。
プレートを共焦点マクロスコープに取り付けられたインキュベーターに移し、プレートの上にガラスカバーを置きます。
培養条件を設定し、組織をさらにインキュベートしてから、イメージングを開始します。
レーザー照射すると、標識されたGCは蛍光を発します。
タイムラプス画像をキャプチャして、小脳の分子層を通るGCの放射状移動を視覚化します。
イメージングソフトウェアを使用して、GCの移動距離を分析します。
検体をスライスした後、切り捨てられた白いバルブピペットを使用して、HBSSとともに6ウェルプレートに移します。各ウェルに最大3つのスライスをロードします。次に、ロードされた各ウェルの培地を空にした後、10マイクロモルの蛍光色素を含む5ミリリットルのロード溶液を加えます。サンプルを光から保護するために、プレートをホイルで覆います。次に、プレートを35RPMに設定されたミューテーターに置きます。プレートを室温で10分間インキュベートして、色素が細胞に標識できるようにします。
次に、以前と同様に、スライスを3ミクロンの細孔を持つトランスウェルインサートの膜に移します。次に、スライスだけを残して、ローディング媒体を吸引します。次に、インサートとスライスを取り外して、ウェルに 1.9 ミリリットルの DMEM を満たします。次に、インサートを元に戻し、さらに100マイクロリットルのDMEMを追加して組織を覆います。
この製剤を2時間インキュベートすると、顆粒細胞が見えます。蓋のないプレートを、共焦点マクロスコープで一定のガス流で環境チャンバーに移します。次に、共焦点マクロスコープのプレートインサートにガラスカバーを置きます。タイムラプス実験の場合は、続行する前に細胞をチャンバー内でさらに2時間インキュベートさせます。
組織スライス内で移動する顆粒細胞を視覚化するには、488ナノメートルの光で調製物を照らし、2倍の乾式対物レンズを使用します。500〜530ナノメートルの蛍光発光を検出します。ImageJを使用して、タイムラプス動画の画像ごとに、標準偏差モードを使用してZスタック投影を行います。
各画像のコントラストと明るさレベルを調整して、ラベル付けされた顆粒細胞を見やすくします。次に、パーティクル解析メニューから Manual Tracking プラグインを選択します。プラグインを使用して、タイムラプス画像シーケンス全体を通して、ラベル付けされた各セル本体の中心点をクリックします。次に、生の追跡データをスプレッドシートにエクスポートして、さらに分析します。
ImageJからエクスポートされた生の追跡データを、各セルと関連する位置を識別するスマートホーム製ツールで再編成します。プログラムを使用して、各セルの総移動距離と平均移動速度を計算します。