マウス網膜外植片における神経細胞樹状細胞ダイナミクスのタイムラプス共焦点イメージング

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後生きたマウス網膜外植片をメンブレンフィルターに取り付け、共焦点顕微鏡下のインキュベーションチャンバーに入れることから始めます。

網膜をトランスフェクトしてスターバースト無軸介在ニューロンの膜に蛍光タンパク質を発現させる

事前に

濡れたサンプルウェイトを網膜に置き、網膜を安定させます。

チャンバーをバッファーで満たします。

チャンバー内の最適なバッファーの流れと温度を維持し、ニューロンの生存率を維持します。

水浸対物レンズをイメージングチャンバーに配置します。

落射蛍光イメージングを開始します。

対物レンズを通るレーザー光は、無鎖細胞の蛍光タンパク質を励起します。

出された蛍光は同じ対物レンズを通して捕捉され、標識された無鎖細胞の視覚化が可能になります。

イメージング用の明るい蛍光セルを特定します。

イメージングパラメータを設定します。

複数のZ平面で画像をキャプチャして、完全な樹状突起形態の3D視覚化を実現します。

タイムラプスイメージングを実行して、樹状突起の形態の経時的な変化を追跡します。

ライブイメージングインキュベーションチャンバーを組み立て、酸素化されたaCSFで満たします。ポンプと温度コントローラーの電源を入れ、温度が摂氏 34 度を超えないようにします。チャンバー温度が安定するまでに最大1時間かかる場合があります。網膜郭清を開始する前に、インキュベーションチャンバーをセットアップすることをお勧めします。安定したチャンバー温度は、サンプルのドリフトを減らすのに役立ちます。

網膜フラットマウンドを灌流室に移すには、ポンプを停止し、チャンバー内にあるaCSFを取り除きます。次に、網膜フラットマウントを備えたMCEディスクをインキュベーションチャンバーに入れます。サンプルの重りを事前に濡らして表面張力を壊し、それを平らなマウンドの上に置き、サンプルの重みがMCE紙の上に置かれるようにして、サンプルのドリフトを減らします。温めた aCSF をチャンバーに補充し、aCSF を毎分約 1 ミリリットルで循環させます。

25倍の水浸し対物レンズを備えたノーズピースをイメージングチャンバーに配置します。落射蛍光を使用して目的の標識細胞をスクリーニングし、イメージングボリュームを調整して目的の樹状突起の特徴をキャプチャします。

飽和ピクセルと不飽和ピクセルの両方を識別するルックアップ テーブルを使用して、ピクセルが過飽和しないようにレーザー出力を調整します。3Dイメージングボリュームを取得し、希望のフレームレートで取得を繰り返します。イメージングボリュームは、サンプルのドリフトを補正するために、各時点間で調整できます。

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最終更新:1 8月 2026