Name: 大動物モデルにおける心血管デバイス用自家血管内皮前駆細胞播種技術と生体適合性試験 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 49 s
Description: 学ぶ、大動物モデルにおける心血管デバイス用の自家血管内皮前駆細胞播種技術と生体適合性試験の方法。血栓症予防とインプラント性能向上に関する知見を得る。

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著者らは本研究で使用したブタ血清を提供するための画像処理チタンのセクションとジェミニバイオ製品に関する貴重なアドバイスのためにライカマイクロシステムズに感謝します。我々はまた、RC1HL099863 - 01&quot;デバイスを補助循環の生体適合性を向上させるために自家EPCライニング&quot;グラントを通じて、支援のためにNIHに感謝したい。さらに、我々は、アレクサンドラジャンセンの国立科学財団大学院研究フェローシップの支援に感謝しています。我々はまた、外科手術と私たちの研究動物の処理の多くの側面で支援するためにジョージクイック、マイクロウとIanthiaパーカーを感謝したい。スティーブンオーウェンは、私たちのシードデバイスの機械加工の多くの部分で非常に貴重なものとチタン管を切断している。

<ol><li>Achneck, H. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathophysiology+of+bleeding+and+clotting+in+the+cardiac+surgery+patient%3A+from+vascular+endothelium+to+circulatory+assist+device+surface%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Pathophysiology of bleeding and clotting in the cardiac surgery patient: from vascular endothelium to circulatory assist device surface.</a> Circulation. 122, 2068-2077 (2010).</li>
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<li>Ford, J. W., Welling, T. H., Stanley, J. C., Messina, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PKH26+and+125I-PKH95%3A+characterization+and+efficacy+as+labels+for+in+vitro+and+in+vivo+endothelial+cell+localization+and+tracking%5BTitle%5D)+AND+%22J+Surg+Res%22%5BJournal%5D)">PKH26 and 125I-PKH95: characterization and efficacy as labels for in vitro and in vivo endothelial cell localization and tracking.</a> J Surg Res. 62, 23-28 (1996).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

ここで提示細胞播種チタンチューブの方法は、迅速かつ均一endothelializeに医師や科学者を可能に血液を接触させ、移植可能なデバイスの表面を。我々は末梢血サンプルからEPCを分離し、拡大しているので、大きな侵襲的処置は、これらの細胞を回収する必要はありません。また、EPCは自己であるため、セルシードのインプラントへの免疫反応の危険性が除去されます。彼のプロトコルで示さ原則は、チタン管のためだけでなく、心血管医学に利用されている他の多くの生体材料、のために利用することができます。 我々は汚染物質妥協の細胞接着のそのあらゆる接着フィルムを見つけたとして、このプロトコルの重要なステップは、チタン管の念入りな清掃です。さらに、遅い回転速度が（チューブの直径に反比例）播種の過程で不可欠である、そのようなことEPCは徐々に落ち着くとTiのチューブが移動しているように表面に付着することがあります。 注入直前に播種の我々の手法は非現実的なex vivoで培養時間を避けることができます。細胞が個々に付着し、後ですぐに流れの再構築は、次のシートとして塞栓の可能性を回避すること、 生体内でコンフルエントシートを形成する。私たちの先行研究では、EPCはコンフルエント層に成長した後、彼らはさらに内皮シートのすべての可能な脱落を最小限に抑え、彼らはしっかりと付着する細胞外マトリックスを作ることを示している。塞栓剥離の可能性を完全に排除できないものの、それは、デバイス全体の表面の血栓症より多種多様のリスクが低く、この治療法は防ぐように設計されている問題のようです。 低せん断への移植の我々のアプローチは、下大静脈の血栓環境では、血液適合性および装置5,6の血栓症を研究するための最も信頼される大規模な動物モデルのいずれかを利用しています。すべての動物の世話と実験は実験動物の管理と利用のための健康ガイドラインの国立研究所ととのみデューク大学動物実験用の委員会の承認後にしたがって実施されたことに注意してください。 成功した生体材料およびデバイスをテストするには、この注入法を利用するために、それは辛抱強くIVCのセグメントを骸骨になると、デバイスの周囲の出血が&quot;偽腔&quot;に由来していないようにデバイスを挿入するための準備として、すべての静脈の分岐血管を、連結することが重要です。別の重要なステップは、内側のチューブの表面上に細胞がveinotomyの閉鎖中に湿ったままで、再灌流が開始される前にいるようなデバイスの内腔へのDPBSの追加です。デバイスは、それが移植された場所に見つからない場合は、それはIVCの&quot;上流&quot;に移行している可能性があります。 PVCチューブの3 mmのセクションをチューブがしっかりとその現在の場所に固定されるように - これは、静脈の壁を通って、2を介して縫合糸（4 - O Prolene）を配置することによって防ぐことができます。研究者はそうでなければ特許チューブに植後の図8に示すように蛍光あらかじめ標識された細胞を見つけることが困難なはずですが、これは細胞が首尾一貫したシートとして剥離れている可能性があります。これは、チューブと一緒に静脈を固定した後、3 Tiのチューブセクションの周囲の静脈や放電アセンブリの非常に穏やかな解離することによって防ぐことができます。 当社の技術はEPC -播種によって心血管装置の血栓症を防止するための証明の概念を提供します。この技術は、患者自身の血管内皮前駆細胞が並ぶ&quot;生体&quot;インプラントの開発に使用することができます。私たちのブタ動物モデルでの実現可能性調査は、臨床の現場にこの&quot;オーダーメイド医療&quot;の翻訳に向けた最初のステップのために用意されています。

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬 </td><td> 企業名 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント </td></tr><tr><td>アセプロマジン</td><td>ベーリンガーインゲルハイム</td><td> BIC670025 </td><td> NAC＃10280002 </td></tr><tr><td> Alconoxパワード精密クリーナー</td><td> Alconox </td><td> 1104 </td><td></td></tr><tr><td>バルフォア外科トラクター</td><td>アドラー</td><td> N / </td><td></td></tr><tr><td> Baytril </td><td>バイエル</td><td> APVMA 46028/0705 </td><td></td></tr><tr><td>翼状針（19G） </td><td>テルモ</td><td> SV19CLK </td><td></td></tr><tr><td>クロルヘキシジン</td><td> 3M </td><td> 9200 </td><td></td></tr><tr><td>クランプ（45度） </td><td> Aesculap </td><td> FC339T </td><td></td></tr><tr><td> DPBS (-/-) </td><td>ギブコ</td><td> 14190-144 </td><td></td></tr><tr><td> DPBS (+/+) </td><td>ギブコ</td><td> 14040-133 </td><td></td></tr><tr><td> DuraPrep </td><td> 3M </td><td> 8635 </td><td></td></tr><tr><td> EBM - 2培地</td><td>ロンザ</td><td> CC - 3156 </td><td>両方の血清自由かつ完全な増殖培地のベース</td></tr><tr><td> EGM - 2 SingleQuots </td><td>ロンザ</td><td> CC - 3162 </td><td>両方の血清自由かつ完全な増殖培地用EBM - 2と組み合わせて使用</td></tr><tr><td>電気焼灼ツール</td><td> Valleylab </td><td> SurgII - 20 </td><td></td></tr><tr><td>エメリー布</td><td> 3M </td><td> 60-0700-0425-8 </td><td> 240グリット</td></tr><tr><td> Euthasolの安楽死のソリューション</td><td> Virbackアニマルヘルス</td><td></td><td>穴田＃：200〜071 </td></tr><tr><td>フェンタニルパッチ</td><td> Actavis </td><td></td><td> NDC＃67767-120-18 </td></tr><tr><td>フルニキシン</td><td>シェリングプラウ</td><td></td><td> NAC＃：10470183 </td></tr><tr><td>フォーリーカテーテル（16F） </td><td>吟遊詩人</td><td> 730116 </td><td></td></tr><tr><td> HBSS </td><td>シグマ</td><td> H8264 - 500ML </td><td></td></tr><tr><td>ヒートガン</td><td>ミルウォーキー</td><td> 8988〜20 </td><td></td></tr><tr><td>ヘパリン</td><td></td><td></td><td> NDC＃：25021 </td></tr><tr><td> Histopaque - 1077 </td><td>シグマ</td><td> H8889 - 500ML </td><td></td></tr><tr><td>挿管チューブ</td><td> Mallinckrodt </td><td> 86113 </td><td></td></tr><tr><td>イソフルレン</td><td> MWI、メリディアン</td><td></td><td> NDC＃13985-030 </td></tr><tr><td>静脈カテーテル（18G） </td><td>ベクトンディッキンソン- </td><td> 381547 </td><td></td></tr><tr><td>ケタミン</td><td>フォートドッジ</td><td></td><td> NDC＃0856-2013 </td></tr><tr><td>レベル</td><td>スワンソン</td><td> LLA001 </td><td></td></tr><tr><td>ルアーロック先端キャップ</td><td> CMLサプライ</td><td> 909から001 </td><td></td></tr><tr><td> Marcaine </td><td>ホスピーラ</td><td></td><td> NDC＃：0409-1560-10 </td></tr><tr><td> Metzenbaumはさみ</td><td>アドラー</td><td> N / </td><td></td></tr><tr><td>マイクロイントロ（5F） </td><td>ゴールト</td><td> KIT 002から01 </td><td></td></tr><tr><td>モスキート止血鉗子</td><td>アドラー</td><td> N / </td><td></td></tr><tr><td>モーター</td><td> HerbachとRademan </td><td> H1 - 08 </td><td></td></tr><tr><td>オキシモルホン</td><td>遠藤研究所</td><td></td><td> NDC：63481-624-10 </td></tr><tr><td> PKH26色素キット</td><td>シグマ</td><td> PKH26GL - 1KT </td><td></td></tr><tr><td>ブタ血清</td><td>ジェミニバイオ製品</td><td> 100から115 </td><td>完全増殖培地で2％濃度</td></tr><tr><td>ポッツはさみ</td><td>アドラー</td><td> N / </td><td></td></tr><tr><td>正確なビスタスキンステープラー</td><td> 3M </td><td> 3998 </td><td></td></tr><tr><td> PVCチューブ</td><td> McMaster-Carr/Insultab </td><td> 7132K117 </td><td>拡大ID 15.88ミリメートル、 回収されたID 7.95ミリメートル</td></tr><tr><td>アングルミディアムサイズ</td><td>アドラー</td><td> N / </td><td></td></tr><tr><td>手術用メスの刃（＃10-15） </td><td>吟遊詩人</td><td> 373910 </td><td></td></tr><tr><td>シリコンチューブ</td><td>マクマスター - カー</td><td> 51735K26 </td><td> 16.64ミリメートルOD、9.52ミリメートルのID </td></tr><tr><td>シリンジ（5ccの） </td><td>ベクトン-ディッキンソン（BD） </td><td> 309603 </td><td></td></tr><tr><td> Tegaderm </td><td> 3M </td><td> 90001 </td><td></td></tr><tr><td>三方活栓</td><td>ケンドール</td><td> 170060 </td><td></td></tr><tr><td>チタンチューブ</td><td>ティコチタン</td><td> N / </td><td> ½&quot;OD、0.065&quot;壁、0.370&quot;ID、0.1737ポンド/フィートのように指定</td></tr><tr><td>トリプシン</td><td>ロンザ</td><td> CC - 5012 </td><td></td></tr><tr><td>トリプシン中和溶液（TNS） </td><td>ロンザ</td><td> CC - 5002 </td><td> 0.03パーセント</td></tr><tr><td> Vetropolycin </td><td> Pharmadermアニマルヘルス</td><td></td><td> NAC＃：12920110 </td></tr><tr><td> Vicryl縫合糸（3-0） </td><td>エチコン</td><td> J808T </td><td></td></tr><tr><td>水浴ソニケーター</td><td>ブランソン</td><td> B200 </td><td></td></tr></tbody></table>

大動物モデルにおける心血管デバイス用自家血管内皮前駆細胞播種技術と生体適合性試験

Autologous Endothelial Progenitor Cell-Seeding Technology and Biocompatibility Testing For Cardiovascular Devices in Large Animal Model

植込み型心血管系デバイスは、血栓の形成1,2,3のリスクをもたらす人工材料（例えばチタン（Ti）、ポリテトラフルオロエチレン拡大）、から製造されています。我々は、自己血由来のヒトまたはブタ血管内皮前駆細胞（EPC）4にチタンチューブの内側表面を整列する方法を開発した。豚の下大静脈（IVC）においてブタのEPCのコンフルエント層を含むチタンチューブを注入することにより、我々は、大規模なモデル動物の血栓環境における細胞播種面の改善された生体適合性をテストし、変更されていない裸の金属表面とそれを比較5,6,7（ 図1）。このメソッドは、注入から数分以内にデバイスをendothelialize および in vivo でその抗血栓機能をテストするために使用することができます。 末梢血は、50キロヨークシャー豚とEPCは4,8を分離するために培養したその単核細胞分画から得られた。チタンチューブ（9.4 mmのID）には3つの4.5センチメートル縦断面にあらかじめカットし、熱収縮チューブで再組み立てされた。シードデバイスは、チタン管の遅い回転を可能になる、建設された。 我々は、豚に開腹術を行い、腸や膀胱を外部化。シャープと鈍的切開は近右腎動脈の遠位の分岐からIVCを骸骨にするために使用されていました。チタンチューブは、均一な細胞コーティング9を達成するために10 RPH × 30分でEPCサスペンションと回転自家蛍光標識に満ちていた。 100 USP / kgのヘパリンの投与後、IVCと腰静脈の両端をクランプした。 4cmのveinotomyが行われ、デバイスが挿入され、リン酸緩衝生理食塩水で満たされた。 veinotomyが4から0 Prolene実行されている縫合糸で閉じていたとして、あるクランプは解除空気IVCに削除されました。プロシージャの最後で、筋膜が0 - PDS（ポリジオキサノン縫合）で近似された、皮下のスペースは2-0 Vicrylで閉じ、皮膚が閉じホチキス。 3の後に - 21日、豚は、専用バスブロックと固定を植デバイス安楽死させた。チタンチューブは分解し、内部表面は、蛍光顕微鏡で画像化した。 我々は、EPC -シードチューブが特許残ったのに対し、裸の金属Ti管が完全に閉塞ことがわかった。さらに、我々は内部の血液接触面にEPCのコンフルエントな層を示すことができた。 おわり、私たちの技術は、デバイスの血栓症を防ぐために、自家EPCSに注入から数分以内にチタンチューブをendothelializeするために使用することができます。私たちの外科的方法は、最小限の失血とEPC -シードの表面の中断はそのような変更されたデバイスの改良された生体適合性をテストすることができます。

自己細胞とテスト生体適合性とチタンの血液接触生体材料をシードする方法について説明する。このメソッドは、ブタ静脈cavaeに外科的に移植後数分以内に接種した内皮前駆細胞およびチタンチューブを、使用しています。この手法は、他の多くの埋め込み型医用機器に適応可能です。

植込み型心血管デバイスは、人工材料（例：チタン(Ti)、拡張ポリテトラフルオロエチレン）で作製されており、これらは...のリスクをもたらします。

本実験の全体的な目的は、自家血由来の血管内皮前駆細胞を血管インプラントに播種し、大型動物モデルにおける血栓症への治療効果を観察することである。まず、ブタから末梢血サンプルを採取し、後期 outgrowth 豚内皮前駆細胞を単離する。次に、植込み型デバイスを...概念実証研究では、チタンチューブに自家PCを配置しました。その後、このデバイスを豚の下大静脈に移植しました。その結果、対照群および閉塞したベアメタルチューブと比較して、EPCを配置したチタンチューブの開通性が維持されており、血栓症に対する保護効果があることが示されました。デューク大学外科は、画期的かつ革新的な研究の促進に取り組んでいます。以下のプレゼンテーションは、医学を前進させるために私たちがどのように学部や専門分野を越えて連携しているかを示す一例です。EK博士は、血管デバイスの血液接触面に患者自身の前駆細胞をライニングすることで血栓症を防止する、細胞シーティング技術の開発に向けた研究を主導してきました。これらの細胞はインプラントを移植する同一の患者から誘導されているため、免疫系による拒絶反応を回避することができます。今回の成果および本書で述べる手法は、大規模なチーム体制による努力の結果です。外科的移植の手技については、血管外科部門のSean Gage、デューク大学医学部の学生であるWhitney Lane、そして私が実演します。それでは、生物医学工学科の博士課程学生であるAlexander Janssenさんに、細胞播種プロセスの詳細について解説していただきます。ここでは、ブタモデルに植え込む直前に、チタンチューブに血液由来の内皮前駆細胞を播種する方法を実演します。この手法は概念実証として機能し、同様の基本原理をニティノールステントや機械的循環補助装置など、他の多くの植込み型デバイスに適用することが可能です。EPCは、ブタ血液の単核細胞分画を播種することで単離され、通常は約7日後に現れます。それらは典型的な石畳状の形態によって認識できます。培養中のEPCsを総数900万個まで増殖させます。準備したEPCsを無血清培地で2回洗浄し、ラベル化の間および後は光への曝露を制限するように注意してください。次に、蛍光ラベルであるPKH 26で細胞を染色し、添加した溶液量を記録します。細胞を室温で4分間インキュベートします。1分後、色素溶液と同量の豚血清を添加して、標識反応を停止させます。混合溶液を完全成長培地で1対1に希釈します。次に、液体を吸引し、完全成長培地で3回洗浄した後、カルシウムおよびマグネシウム不含DPBSで2回洗浄します。続いて、使用した容量を記録しながら、細胞にトリプシンを加え、37 °Cでインキュベートします。3分間インキュベートした後、顕微鏡を用いて細胞が剥離したかを確認し、剥離していれば、添加したトリプシン中和溶液の2倍量を加えます。トリプシン処理後、細胞懸濁液を1本のチューブにまとめ、ヘモサイトメーターで細胞密度を測定します。最後に、細胞懸濁液を遠心してペレットとし、少なくとも4.5 millilitersの無血清培地で細胞を再懸濁します。豚の手術準備が整ったら、第2乳腺から15番のメスを用いて正中線を切開します。電気メスを用いて、最後から2番目の乳腺まで慎重に切開を進めます。腹壁筋膜まで剥離を行います。蚊針鉗子で腹膜を持ち上げ、メッツェンバウム剪刀で慎重に切開します。膀胱を体外に露出させ、膀胱壁に3-0 Vicrylで巾着縫合を施します。その中心を穿刺切開し、16 Frのフォーリーカテーテルを切開口から挿入します。その後、手術中の尿量を1 mL/kg/hr以上に調整するため、静脈内輸液を行います。次に、拡張した小腸を体外へ出し、2つのbour外科用リトラクターを配置して腹腔の後面を露出し、鋭的および鈍的剥離を用いてIVCを同定します。周囲組織から注意深くIVCを剥離してください。その後、IVCの分枝遠位側から右腎動脈にかけて、血管を骨格化します。下大静脈（IVC）の解剖時には細心の注意を払ってください。IVCに極めて小さな欠損が生じただけでも、急速な出血を招き、動物が失血死する可能性があります。IVCセグメントのすべての側枝を結紮してください。特に、IVCの分岐部の直近にある2本の大きな後腰静脈の解剖と結紮には十分注意してください。多くの場合、後側に大きな腰静脈が存在します。この静脈を遊離するように剥離し、ベッセルループで固定します。次に、手術と並行して、この手順を開始する前にインプラントへのEPCsの播種を開始してください。チタンチューブ組織固定スキャフォールドは、完全に組み立てられ、無菌野で使用可能な状態でなければなりません。ガス滅菌済みのチタンチューブアセンブリを5 ccシリンジに装着します。次に、5 ccシリンジからプランジャーを取り除きますが、廃棄せずに保管してください。シリンジに固定型アリュールキャップを装着します。ピペットを使用して、シリンジにEPC懸濁液を満たします。その後、プランジャーを元に戻します。キャップを取り外し、シリンジのルアー端をアセンブリの開いたシリコンチューブに、ぴったりとはまるまで挿入します。さらに、細胞溶液をゆっくりと送り、ヘッドピースの最上部に到達するまで進めて気泡を取り除きます。次に、ルアーキャップでアセンブリを閉じ、滅菌グローブ内でテープで密封します。このアセンブリ全体を専用のシリンジホルダーに挿入し、37 °Cのインキュベーターに入れます。ゲージを使用してシーティングチャンバーが水平であることを確認し、緩やかに回転させながらアセンブリをインキュベートします。下大静脈（IVC）を結紮した後、ブタ1kgあたり100単位のヘパリンを投与し、手術を続行します。次に、IVCの遠位側と腰静脈を45度の角度で直ちにクランプし、続いて近位側をクランプします。次に、11番のメス刃とポットシザーを用いて、近位側と遠位側のクランプの間に4cmの縦方向の静脈切開を行います。IVC内から血液をすべて排出し、滅菌DPBSで内腔を洗浄します。次に、細胞の乾燥を防ぎ空気を排出するため、EPCを播種したインプラントまたはベアメタルのコントロールをIVCに挿入します。IVCに塩化カルシウムおよび塩化マグネシウムを含むDPBSを満たします。次に、4-0のプロリン連続縫合で静脈切開部を閉鎖し、近位側のクランプを1つ外して、少量の逆流出血により下大静脈（IVC）内の空気を抜きます。出血が止まった後、遠位側のクランプを外してインプラントを固定します。静脈壁を通過するPVCチューブに保持縫合を施します。CT針に装着したOPDSを用いて筋膜を閉鎖します。次いで、2-0 Vicrylを用いて皮下組織を連続縫合で閉鎖します。最後に、皮膚をステープラーで閉鎖します。切開部位に沿って0.25%Marcaineを最大20 milliliters皮下に投与し、疼痛緩和のため、傷口をガーゼとTegadermで覆います。必要に応じて、Flu Nixonとオキシモルホンを皮下に投与します。麻酔を終了し、豚が覚醒したら、その後7日間にわたってケージに戻します。抗菌剤の予防投与としてatriを24時間ごとに投与し、手術前に貼付したフェンタニルパッチが合計3日間剥がれずに貼付されていることを確認する。3日後、埋設したチタン製チューブインプラントを回収し、内表面を観察した。550 nmの励起波長下において、別のチューブに蛍光標識された細胞がコンフルエントな層として認められた。細胞境界を可視化するため、切片細胞を血小板内皮細胞接着マーカーで追加染色した。この手順では、多種多様な染色剤を使用することができる。対照的に、未処理のチタンチューブインプラントは、下大静脈の血栓形成を促進する低剪断応力環境において完全に閉塞する。画像AおよびCに示すように、細胞が播種されたチタンチューブを画像Bに示します。これは、末梢血を用いた我々の単離手順の後、血栓が形成されていない状態を維持していました。EPCは、培養開始から平均7日後に出現します。外科的手術を行う際は、IVCを慎重かつ穏やかに剥離することが極めて重要です。なぜなら、IVCまたはその分枝にわずかな裂傷が生じただけでも、ブタの失血死につながる可能性があるためです。この手順の後、他の血液接触材料を迅速に内皮化させることで、血栓形成を防止できます。例えば、我々のEPCを用いた血管内皮ステントは、血管壁の天然のライニングを模倣し、留置後のステント再狭窄や血栓形成を防止できる可能性があります。当社のクイックシー（Quick See）技術により、手術室やカテーテル室において、患者自身の血液由来の内皮前駆細胞を用いて、数分以内に血管内デバイスにライニングを施すことが可能になります。したがって、長期間のex vivo培養は不要となります。デバイス自体の操作時間が削減され、この技術は臨床現場への導入に向けた実用性を備えることになります。

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Bioengineering

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マウスモデルにおける組織工学血管の生成とグラフト

我々は、単離され、十分に特徴付けられた環境で、in vivoで血管新生を分析するためのモデルとして動静脈（AV）ループの生成のための顕微的なアプローチを説明します。このモデルだけでなく、血管新生の研究のために有用であるだけでなく、最適なエンジニアリングを軸方向に血管および移植組織に適しています。...

血管新生および血管組織工学を研究するための小さな動物モデルにおける動静脈（AV）ループ

現在血管柄付き複合移植の任意の種類は、長期-的-免疫抑制、生活の重要な徴候のサポートが困難に依存します。モデルを提案、新しい豚脛骨 VCA 骨 VCA...

豚脛骨移植外科的血管新生: 新しい大型動物の骨血管複合移植モデル

ここでは、新しい心保護戦略を研究するためにしっかりと確立され、利用されている正頭外核移植の前臨床大型動物(ブタ)モデルについて説明する。...

オルソトピック心臓移植の前臨床ブタモデル

このプロトコルは、心不全をモデル化する梗塞マウスの心外膜に3Dバイオプリントパッチを移植することを目的としている。麻酔、手術胸部開口部、左前下降(LAD)冠動脈の永久結紮、心臓の梗塞領域へのバイオプリントパッチの適用に関する詳細が含まれています。...

心筋梗塞のマウスモデルにおける3次元バイオプリントパッチの移植

ここでは、カフ技術を使用してマウス頸動脈に組織工学的血管移植片を移植するためのプロトコルが提示され、血管組織再生メカニズムを調査するための適切な動物モデルが提供されます。...

カフ法 による マウス頸動脈への組織改変血管移植片の移植

この研究は、大腿動脈の小径移植片を評価するためのブタモデルを示しています。このモデルは、人間の血管動態を模倣し、移植片の開存性、血行動態、血管のリモデリングを包括的に評価します。これは、血管移植片を検査し、ドップラー超音波と血管造影でそれらを監視するための貴重なプラットフォームを提供します。...

小径血管移植片をテストするためのブタモデルでの大腿骨血管移植片移植

学ぶ、大動物モデルにおける心血管デバイス用の自家血管内皮前駆細胞播種技術と生体適合性試験の方法。血栓症予防とインプラント性能向上に関する知見を得る。

大動物モデルにおける心血管デバイス用自家血管内皮前駆細胞播種技術と生体適合性試験

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