Name: カプセル化された細胞凝集体の中で低酸素シグナルの追跡 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-12-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 14 s
Description: 学ぶPEGハイドロゲル封入細胞凝集体における低酸素シグナルの追跡法。マウスインスリノーマ細胞を用いて低酸素誘導因子活性を蛍光顕微鏡で可視化し、再生医療や糖尿病治療への応用可能性を探る。

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寛大にMIN6細胞を供給するためのコロラド大学、ボルダーのクリスティAnseth研究室に感謝します。このプロジェクトの資金は、NSFによって提供されています。

1。 PEGDMの合成と光活性PEGDMのマクロマー溶液の調製<ol><li>硬質プラスチック製のキャップで40mlのガラス製バイアル瓶にPEGの2Gを（線形、10,000 Da）の重量を量る。 </li><li>無水メタクリル酸の約308μL追加し、緩くバイアルをキャップ。 </li><li>電子レンジ標準の国内電子レンジで2分の高オンバイアル。さらに5分間高い上にマイクロ波し、耐熱手袋、徹底的にボルテックスバイアルを身に着けている。 </li><li>簡潔にバイアルは手袋で処理されるのに十分冷まします。それを暴露すると徐々にバイアルを旋回しながら、塩化メチレンを追加。解決策は、必要に応じてサンプルをボルテックス、明確かつ均質に表示されるように十分な追加。 2 mLの - 使用される塩化メチレンの合計量は1.5でなければなりません。 </li><li>コー​​ルド200mLにPEGDMを沈殿させる、ソリューションを滴下してジエチルエーテルを撹拌する。 </li><li>真空ろ過によってPEGDMを収集し、それが乾燥することができます。 </li><li>十分な量のPEGDMを溶かすの脱イオン水（通常100 -150 mL）で。 </li><li>千Daの分子量カットオフ値を持つ透析チューブに5日間脱イオン水に対して解決策を透析。 1日1回水を交換してください。 </li><li>分注し-80℃で適切な容器と凍結にソリューション℃で一晩。精製された白色PEGDMの粉末を得た4日間のソリューションを凍結乾燥。 ° C使用しないときは4で粉を保管してください。 </li><li>光活性PEGDM溶液を調製するには、まず、脱イオン水でイルガキュア2959を溶解して0.5重量％の光開始剤のストック溶液を調製。渦解と暗闇の中で保管してください。 </li><li> 10重量％のPEGDMとハンクス平衡塩類溶液（HBSS）0.025重量％イルガキュア2959溶液を調製します。 PEGDMの溶解を確実にするために徹底的にボルテックス。我々は通常、同時に、このソリューションの1mLのを準備。 </li><li> 1.8 mLのマイクロ遠心チューブに0.2μmのシリンジフィルターを通してそれをフィルタリングすることにより解決策を滅菌する。アルミホイルにチューブを巻きますし、4℃で保存</li></ol> 2。文化、感染症、およびMIN6細胞の凝集<ol><li> MIN6細胞を37で加湿環境で10％FBS、7mmのグルコース、100ユニット/ mLのペニシリン/ストレプトマイシン、及び0.5μg/ mLのamphotercin B℃、5％CO 2を添加したRPMI 1640培地中で培養されています。 </li><li>処理された培養フラスコの表面から細胞を解除するには、37で細胞をリンス、培地を吸引除去° C、カルシウム/マグネシウムを含まないHBSS、HBSSを吸引し、37 ° Cトリプシン- EDTA溶液2 mlを加え、細胞を許可する3分間インキュベートする。 </li><li>しっかりと細胞がフリーノックするフラスコの側面をJARファイルにまとめ、その後、37の8 mLを加え° C培地と精力的に気泡を導入しないように注意しながら上下に細胞懸濁液をピペットで。 </li><li>滅菌15 ml遠心チューブに細胞をピペッティングし、血球計算盤またはプロシージャを数え、他の細胞を用いて細胞数を実行します。 </li><li>メーカーで細胞を感染させる準備にウイルスは、最初に感染される細胞の総数を決定し、感染の希望多重度（MOI）（セル50〜100感染粒子）を達成するために必要なウイルス懸濁液の体積を計算する。 </li><li>慎重に1.8 mLのマイクロ遠心チューブにHBSSのプレ分注し、ボリュームにウイルス懸濁液の適正量をペッティングにより、HBSSでウイルスを希釈する。 HBSSウェルあたりの凝集細胞を50μLが適当である。 </li><li>ピペット6ウェル懸濁培養プレートのウェルに加え40万の細胞を達成するために必要な量をし、そのチューブを上下にそれらをペッティングにより細胞を分散させる。 </li><li>所望のMOIを達成するために各ウェルに希釈したウイルスの適切なボリュームを追加します。 </li><li> 1.7 mLの全量をもたらすために各ウェルに培地を追加。 </li><li>インキュベーター内部のオービタルシェーカー上でプレートを置きます。培地は優しく井戸（〜100 rpm）で周りに洗うように、低設定でシェーカーを設定します。凝集して細胞を許可する24〜36時間のTE。 75〜175μmのおおよその直径を持つ凝集体が形成されるべきである。 </li></ol> 3。 PEGDMの細胞のカプセル化<ol><li>細胞は、分散（ステップ2.4​​）または以下の集約（ステップ2.10）としてカプセル化されることがあります。ヒドロゲル前駆体PEGDMソリューションが液体であるため、細胞が架橋ハイドロゲルの形成に先立って解決する傾向がある。セトリングがそのようなより大きな凝集体と同様に、急速に発生が予想されている場合、それは細胞がゲルの中心面に沈殿するように二つのステップでヒドロゲルを生成するために有益であるかもしれません。分散した細胞の適切なワンステップのハイドロゲルの合成手順が示されている（ 図2）およびツーステップ手順（3.2〜3.9）以下同様に（ 図3）と詳細表示されます。 </li><li>ハイドロゲルは、1 mLのプラスチック製の注射器のオフテーパ状先端をカットして、ラックに端を開く配置することによって形成されるの容器を作成します。 </li><li>光活性PEGDMのピペットで20μLのでボリュームが全体のプランジャーの表面を覆うことを確認してプランジャーの上に注射器の開放端にlution。平坦な液体表面を達成するために小さな単位でプランジャーを調整します。 </li><li>ラックと位置ヒドロゲルの架橋を可能にするために約8分間UVランプ（波長365nm、〜7 MW / cm 2）の下のラックにピペットを置きます。この時間の間に、細胞の調製を開始することができる</li><li>ピペットで1.8 mlのマイクロ遠心チューブに細胞/骨材の希望数を含むボリュームを、キャップ、そして5分間、130 gでチューブを遠心する。 </li><li>マイクロピペッタを使用して、慎重にチューブの先端で細胞ペレットを乱すことなくメディアを取り出してください。メディアのヘッドがペレットに近づくにつれて、それは、細かいを使用して10μLピペットチップ役立ちます。 </li><li>ゆっくりと光活性PEGDMの溶液20μLに細胞ペレットを再懸濁します（凝集体を扱う場合広口ピペットチップを使用）し、目の上に注射器に細胞懸濁液を追加eは、以前にハイドロゲルの部分を架橋。 </li><li>ハイドロゲルの構築を完了するために、UV光のさらに8分に注射器を公開。終了すると、細胞が完全に円筒状のハイドロゲル（ 図3）内にカプセル化されるべきである。 </li><li>シリンジからと簡単にゲルを洗浄するために24ウェルプレートのウェル中のHBSSを1 mLにハイドロゲルを取り出します。希望の条件の下で24ウェルプレートと文化のウェルに培地1 mLにゲルを移す。 </li></ol> 4。低酸素状態の追跡<ol><li>任意の時点で文化、画像中の細胞は低酸素シグナル伝達の開始を追跡するために蛍光顕微鏡を使用して。あなたがマルチウェルプレートの画像ができるイメージングや顕微鏡ステージ上に配置する前に、顕微鏡のスライドにゲルを転送されているものに応じて。 DSレッドのピーク励起は556nmで実現し、発光ピークは586nmで発生します。排出量はかなり激しいですので、退色はを観測していない問題があることがED。蛋白質の生産と最初の信号検出の開始の間のタイムラグは約12時間です。信号は、個々のシグナル伝達の細胞を識別するのに十分な固有のものですが、解像度は細胞内シグナルの局在を決定するには不十分かもしれません。シグナル伝達細胞では、信号は通常は細胞質全体に均一に観察される。これは増加した蛋白質の発現、全体的なタンパク質の蓄積、または遅延タンパク質の成熟に起因するかどうか我々はまだ完全に決定していないのに信号強度はまた、低酸素への長時間曝露と増やすことができます。 </li></ol> 5。代表的な結果 PEGハイドロゲル内にカプセル化されたMIN6凝集体の代表例を図4に示されています。架橋ゲルは、反応が実行された容器の形状を取って、全体に固体になります。滑らかな外側表面を有するゲルは、異物の再の予防を支援するために注入するための望ましいsponse。ゲル内で、細胞の凝集体は完全にマトリックスで囲まれ、均一に良い栄養素の輸送を可能にするために配布される必要があります。 MIN6凝集体における低酸素シグナルの代表画像を図5に描かれている。マーカーのウイルスに感染して同一のMIN6集計は、画像キャプチャの前に44時間を20％O 2（5A）または1％O 2（図5b）のいずれかで培養した。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig1.jpg"> 図1当社の低酸素マーカーのシステムの活動の概略図。 DSレッドDR遺伝子と上流のHREのプロモーターのアデノウイルス挿入がHIF - 1の制御下に蛍光タンパク質の低酸素誘導性の製造を可能にする。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig2.jpg"> 図2 CRにMIN6細胞を分散したのシングルステップのカプセル化のための手続きフローチャートPEGDMハイドロゲルをosslinked。それぞれのゲルの場合は、分散した細胞は光活性PEGDMのマクロマー溶液の40μlの懸濁される。これは、首を切ら1mLの注射器内に配置され、ハイドロゲルは、10〜12分後に365nmのUV光の下で形成される。完了すると、ハイドロゲルのディスクは、注射器から取り出し洗浄し、インキュベーションのための媒体を充填したウェルプレートに配置されます。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig3.jpg"> 図3。架橋PEGDMハイドロゲルに集約されたMIN6細胞のデュアルステップカプセル化のための手続きのフローチャート。それぞれのゲルの場合は、ハーフゲルは最初の8分間の光活性PEGDMのマクロマー溶液の20μLのUV架橋により形成される。 MIN6凝集体は、慎重に前もって形成された半ゲルの上に追加された光活性マクロマーのソリューションの追加の20μLに懸濁されている。完全なゲルが完全に内側にカプセル化された凝集体に紫外線照射の追加の8分によって形成されるゲルの平面。 <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig4.jpg"> 図4 20倍の倍率下で40μlのハイドロゲルのイメージ。 MIN6集計（〜40万総細胞）は、明確にゲル内に見られている。ハイドロゲルの直径は、（バー= 1mm）の約6ミリメートルである。 <img alt="図5" src="/files/ftp_upload/3521/3521fig5.jpg"> 図5。PEGDMヒドロゲルに集約されたMIN6細胞のシグナル蛍光低酸素症。 44時間20％O 2でカプセル化し、インキュベーションに置かれた細胞は2％44時間のためのO 2でインキュベートしてカプセル化された細胞は明らかに、ユビキタスな信号を表示しながら低酸素シグナルを（）表示されません。 （バー=100μmの）（B）。

<ol><li>Kelly, W., Lillehei, R., Merkel, F., Idezuki, Y., Goetz, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Allotransplantation+of+the+pancreas+and+duodenum+along+with+the+kidney+in+diabetic+nephropathy%5BTitle%5D)+AND+%22Surgery%22%5BJournal%5D)">Allotransplantation of the pancreas and duodenum along with the kidney in diabetic nephropathy.</a> Surgery. 61, 827-837 (1967).</li>
<li>Shapiro, J. A. M., Ricordi, C., Hering, B. J., Auchincloss, H., Lindblad, R., Robertson, R. P., Secchi, A., Brendel, M. D., Berney, T., Brennan, D. C., Cagliero, E., Alejandro, R., Ryan, E. A., DiMercurio, B., Morel, P., Polonsky, K. S., Reems, J., Bretzel, R. G., Bertuzzi, F., Froud, T., Kandaswamy, R., Sutherland, D. E. R., Eisenbarth, G., Segal, M., Preiksaitis, J., Korbutt, G. S., Barton, F. B., Viviano, L., Seyfert-Margolis, V., Bluestone, J., Lakey, J. R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((International+trial+of+the+Edmonton+Protocol+for+islet+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Eng.+J.+Med.%22%5BJournal%5D)">International trial of the Edmonton Protocol for islet transplantation.</a> N. Eng. J. Med.. 355, 1318-1330 (2006).</li>
<li>Sun, A. M., O'Shea, G. M., Goosen, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injectable+microencapsulated+islet+cells+as+a+bioartificial+pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22Appli.+Biochem.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Injectable microencapsulated islet cells as a bioartificial pancreas.</a> Appli. Biochem. Biotechnol. 10, 87-99 (1984).</li>
<li>Iwata, H., Amemiva, H., Matsuda, T., Takano, H., Hayashi, R., Akutsu, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+microencapsulated+islets+in+agarose+gel+as+bioartificial+pancreas+by+studies+of+hormone+secretion+in+culture+and+by+xenotransplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Evaluation of microencapsulated islets in agarose gel as bioartificial pancreas by studies of hormone secretion in culture and by xenotransplantation.</a> Diabetes. 39, 224-225 (1989).</li>
<li>Zhang, W. J., Laue, C., Hyder, A., Schrezenmeir, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purity+of+alginate+affects+the+viability+and+fibrotic+overgrowth+of+encapsulated+porcine+iselt+xenografts%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Purity of alginate affects the viability and fibrotic overgrowth of encapsulated porcine iselt xenografts.</a> Transplant Proc. 33, 3517-3519 (2001).</li>
<li>Lin-Gibson, S., Bencherif, S., Cooper, J. A., Wetzel, S. J., Antonucci, J. M., Vogel, B. M., Horkay, F., Washburn, N. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+and+characterization+of+PEG+dimethacrylates+and+their+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22Biomacromolecules%22%5BJournal%5D)">Synthesis and characterization of PEG dimethacrylates and their hydrogels.</a> Biomacromolecules. 5, 1280-1287 (2004).</li>
<li>Weber, L. M., He, J., Bradley, B., Haskins, K., Anseth, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PEG-based+hydrogels+as+an+in+vitro+encapsulation+platform+for+testing+controlled+%CE%B2-cell+microenvironments%5BTitle%5D)+AND+%22Acta.+Biomater%22%5BJournal%5D)">PEG-based hydrogels as an in vitro encapsulation platform for testing controlled β-cell microenvironments.</a> Acta. Biomater. 2, 1-8 (2006).</li>
<li>Weber, L. M., Lopez, C. G., Anseth, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+PEG+hydrogel+crosslinking+density+on+protein+diffusion+and+encapsulated+islet+survival+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+A%22%5BJournal%5D)">Effects of PEG hydrogel crosslinking density on protein diffusion and encapsulated islet survival and function.</a> J. Biomed. Mater. Res. A. 90, 720-729 (2009).</li>
<li>Bryant, S. J., Anseth, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hydrogel+properties+influence+ECM+production+by+chondrocyte+photoencapsulated+in+poly%28ethylene+glycol%29+hydrogels%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res%22%5BJournal%5D)">Hydrogel properties influence ECM production by chondrocyte photoencapsulated in poly(ethylene glycol) hydrogels.</a> J. Biomed. Mater. Res. 59, 63-72 (2001).</li>
<li>Bryant, S. J., Nuttelman, C. R., Anseth, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytocompatibility+of+UV+and+visible+light+photoinitiating+systems+on+cultured+NIH%2F3T3+fibroblasts+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomater.+Sci.+Polymer+Edn%22%5BJournal%5D)">Cytocompatibility of UV and visible light photoinitiating systems on cultured NIH/3T3 fibroblasts in vitro.</a> J. Biomater. Sci. Polymer Edn. 11, 439-457 (2000).</li>
<li>Dionne, K. E., Colton, C. K., Yarmush, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+oxygen+on+isolated+pancreatic+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Trans.+Am.+Soc.+Artif.+Intern.+Organs%22%5BJournal%5D)">Effect of oxygen on isolated pancreatic tissue.</a> Trans. Am. Soc. Artif. Intern. Organs. 35, 739-741 (1989).</li>
<li>Dionne, K. E., Colton, C. K., Yarmush, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+hypoxia+on+insulin+secretion+by+isolated+rat+and+canine+islets+of+Langerhans%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Effect of hypoxia on insulin secretion by isolated rat and canine islets of Langerhans.</a> Diabetes. 42, 12-21 (1993).</li>
<li>De Groot, M., Schuurs, T. A., Keizer, P. P. M., Fekken, S., Leuvenink, H. G. D., van Schilfgaarde, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+of+encapsulated+rat+pancreatic+islets+to+hypoxia%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Response of encapsulated rat pancreatic islets to hypoxia.</a> Cell Transplant. 12, 867-875 (2003).</li>
<li>Fancy, M. L., Topiwala, R., Sahai, P., S,, Blanchette, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlating+hypoxia+with+insulin+secretion+using+a+fluorescent+hypoxia+detection+system%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+B%22%5BJournal%5D)">Correlating hypoxia with insulin secretion using a fluorescent hypoxia detection system.</a> J. Biomed. Mater. Res. B. 97, 148-155 (2011).</li>
<li>Webb, J. D., Coleman, M. L., Pugh, C. W. H. ypoxia <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((hypoxia-inducible+factors+%28HIF%29%2C+HIF+hydroxylases+and+oxygen+sensing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Mol.+Life+Sci%22%5BJournal%5D)">hypoxia-inducible factors (HIF), HIF hydroxylases and oxygen sensing.</a> Cell. Mol. Life Sci. 66, 3539-3554 (2009).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

ここで紹介するメソッドは、非生理的条件の最小限の使用とPEGハイドロゲル中の細胞のカプセル化のための迅速かつ簡単な技術を提供しています。 PEGは、その生体適合性と修正を容易にするために非常に有用な封止材料を表します。光活性溶液中でPEGの比率の単純な変化は、例えば、孔径によって、機械などの圧縮率などのプロパティ、およびトランスポートのプロパティを調整することができる。また、PEGを簡単に側鎖の付加によって変更されます。 PEGハイドロゲルは、従って、in vitroでの研究のための有望な臨床デバイスと柔軟なプラットフォームの両方を表す PEG -カプセル化された細胞の低酸素状態を追跡するための方法も提示されている。このメソッドは、低酸素症検出の簡略化のためと目的の細胞を犠牲にする必要性を回避するのに便利です。テクニックは、その私たちを作る様々な条件で細胞のさまざまな種類のに適用してもよい幅広いefulness。例えば、幹細胞の分化のための手がかりとして、低酸素は、幹細胞の微量培養に追跡することができる。しかし、このメソッドは、分散した細胞は、後で集約されているセルのシステムまたはシステムを分散させるために適用することができます。また、蛍光シグナルの検出には大きいか密度の高い組織では難しいかもしれません。

<table border="1"><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（省略可能 </td></tr><tr><td> PEG </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 309028 - 500G </td><td></td></tr><tr><td>メタクリル酸無水物</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 276685 - 100ML </td><td></td></tr><tr><td>マイクロ波</td><td>エマーソン</td><td> MW8784SB </td><td></td></tr><tr><td>ボルテックス</td><td>サイエンティフィックインダストリーズ</td><td> SI - A236 </td><td></td></tr><tr><td>塩化メチレン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> D65100 - 1L </td><td></td></tr><tr><td>ジエチルエーテル</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 346136 - 1L </td><td></td></tr><tr><td>透析チューブ</td><td>スペクトラム</td><td> 132640 </td><td></td></tr><tr><td></td><td>研究所</td><td></td><td></td></tr><tr><td>冷凍庫</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td&gt;凍結乾燥機</td><td> Labconco </td><td> 7670521 </td><td></td></tr><tr><td>真空ポンプ</td><td>ウェルチ</td><td> 8917Z - 01 </td><td></td></tr><tr><td>イルガキュア2959 </td><td>チバガイギー</td><td> 029891301PS04 </td><td></td></tr><tr><td> HBSS </td><td> Mediatech </td><td> 21から022 - CV </td><td></td></tr><tr><td>シリンジフィルタ</td><td> VWR </td><td> 28145-477 </td><td></td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td> Mediatech </td><td> * </td><td> *カスタム製剤</td></tr><tr><td> FBS </td><td> PAA研究所</td><td> A15 - 351 </td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン - ストレプトマイシン</td><td> Mediatech </td><td> 30から002 - CI </td><td></td></tr><tr><td>アムホテリシンB </td><td> Mediatech </td><td> 30から003 - CF </td><td></td></tr><tr><td>インキュベーター</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td> 3597 </td><td> NAPCOシリーズ8000 WJ W / O2抑制</td></tr><tr><td>トリプシンEDTA </td><td> Mediatech </td><td> 25から052 - CI </td><td></td></tr><tr><td>オービタルシェーカー</td><td> VWR </td><td> 12620-926 </td><td></td></tr><tr><td> UVランプ</td><td>三洋電機Denri </td><td> FLR40SBLB / M </td><td> two 40W、365nmのブラックライトブルーUV電球を保持しています</td></tr><tr><td>遠心</td><td>エッペンドルフ</td><td> 5811 000.010 * </td><td> *注文番号。 モデル5810 R </td></tr><tr><td>顕微鏡</td><td>ニコン</td><td> TI - ND6 - PFS </td><td> 556nm励起/ 586nm発光のためのフィルタセットを持つ</td></tr></table>

カプセル化された細胞凝集体の中で低酸素シグナルの追跡

Tracking Hypoxic Signaling within Encapsulated Cell Aggregates

1型糖尿病では、自己免疫による膵β細胞の破壊がインスリン産生の喪失と、潜在的に致死的な高血糖を招きます。外因性インスリン注射に代わる治療選択肢として、機能的な膵組織の移植が研究されてきました1,2。このアプローチは、より自然で長期的な正常血糖の回復を可能にする期待があります。拒絶反応を防ぐためには、ドナー組織を宿主の免疫系から保護する必要があり、カプセル化はその目的を達成するための手法の一つです。
アルギン酸3やアガロース4などの生物由来材料は、カプセル構築の伝統的な選択肢となってきましたが、炎症や線維性過剰増殖5を誘発し、栄養素や酸素の輸送を妨げる可能性があります。一方、合成ポリエチレングリコール（PEG）ベースのハイドロゲルは、非分解性で機能化が容易であり、高純度で入手可能で、細孔径を制御でき、極めて高い生体適合性を有しています6,7,8。さらなる利点として、PEGハイドロゲルは、非生理的な温度を適用する必要のない単純な光架橋反応によって迅速に形成できます6,7。そのような手順をここに記述します。架橋反応において、光開始剤である1-[4-(2-Hydroxyethoxy)-phenyl]-2-hydroxy-2-methyl-1-propane-1-one（Irgacure 2959）のUV分解によりフリーラジカルが生成され、これがジメタクリレート化PEG（PEGDM）のビニル炭素-炭素二重結合を攻撃し、鎖末端での架橋を誘発します。架橋は10分以内に完了します。このようにして構築されたPEGハイドロゲルは、細胞を良好に支持することが示されており7,9、低濃度の光開始剤と短時間のUV照射は、封入された組織の生存能や機能に悪影響を与えません10。本研究では後述する方法でPEGをメタクリレート化していますが、PEGDMはSigmaなどのベンダーから直接購入することも可能です。
カプセル化に伴う必然的な結果として、細胞が血管ネットワークから隔離されます。そのため、栄養素、特に酸素の供給が減少し、拡散によって制限されます。この酸素利用能の低下は、インスリン分泌能が酸素に強く依存しているβ細胞に特に影響を及ぼす可能性があります11-13。また、カプセルの組成と形状も、酸素の拡散速度と拡散距離に影響を与えます。したがって、本稿ではPEGカプセル内の低酸素細胞を同定する手法についても記述します。組換えアデノウイルスを細胞に感染させることで、細胞内の低酸素誘導因子（HIF）パスウェイが活性化された際に蛍光信号を発生させることができます14。HIFは低酸素に対する転写応答の主要な調節因子であるため、低酸素シグナリングを検出するための理想的な標的マーカーとなります15。このアプローチにより、低酸素細胞を簡単かつ迅速に検出することが可能です。簡潔に述べると、このアデノウイルスは、低酸素応答配列（HRE）トリマーの制御下に赤色蛍光タンパク質（Clontech社製 Ds Red DR）の配列を有しています。低酸素条件下でHIF-1が安定化すると、蛍光タンパク質の転写が促進されます（図1）。このウイルスの構築に関する詳細は、以前に報告されています15。ウイルスは、3.4 x 1010 pfu/mLの濃度で、1.5 mL遠心チューブに150 μLずつ分注し、10%グリセロール中で-80°Cで保存されています。
当研究室の以前の研究により、凝集体として封入されたMIN6細胞は、20%酸素下での4週間の培養期間を通じて生存能を維持することが示されています。2%または1%酸素下で培養したMIN6凝集体では、エチジウムブロミド染色による壊死細胞の兆候（生存率は依然として約85-90%）に加え、20%酸素下の細胞と比較して形態的な変化が認められました。20%酸素下で見られた凝集体の滑らかな球状の形態は失われ、凝集体はより無秩序な細胞集団のように見えました。低酸素ストレスは生存能の著しい低下を引き起こしませんが、グルコース刺激インスリン分泌15で測定されるMIN6の凝集および機能に明らかに影響を及ぼしています。また、20%および1%酸素下で封入された細胞のウェスタンブロット分析では、低酸素条件下で培養した細胞においてHIF-1αの有意な増加が示されており、これはDsRed DRタンパク質の発現と相関しています。

架橋PEGハイドロゲル中の細胞の写真 - カプセル化する方法について説明する。カプセル化されたマウスインスリノーマ（MIN6）集合内の低酸素シグナルが蛍光マーカーシステムを用いて追跡されます。このシステムは、ハイドロゲル骨格と細胞表現型の変化と低酸素シグナル伝達の相関関係にあるセルの連続検査が可能になります。

1型糖尿病では、膵β細胞の自己免疫的な破壊によりインスリン産生能が失われ、潜在的に致死的な...

この手順の目的は、PEG封入細胞凝集塊における低酸素に対する細胞応答をモニタリングすることです。まず、分散させた細胞にマーカーウイルスを感染させ、シェーカーで培養して凝集塊を形成させます。次に、リニアPEGを機能化し、PEG DMプライマーを精製します。次に、細胞凝集体をPEG DMハイドロゲルに封入します。最後に、ハイドロゲルをさまざまな酸素条件下で培養し、低酸素マーカー信号を蛍光モニターします。これにより、生存している封入細胞凝集体内における低酸素誘導因子の活性部位と範囲を、単純な蛍光顕微鏡で視覚化することができます。この手法は、3D培養内のどこで低酸素状態が発生し、それが細胞の生存や機能にどのような影響を与えるかといった、細胞カプセル化および細胞ベースの治療薬送達分野における重要な疑問への回答に役立ちます。凝集組織やカプセル化組織において低酸素状態が大きな影響を及ぼすため、この技術の意義は、再生医療アプローチや、糖尿病などのホルモン欠乏症の治療にまで及びます。低酸素誘導因子1（HIF-1）の活性は、ベータ細胞からのインスリン分泌の著しい低下と相関することが示されており、これが初代膵島を分散させ、擬似膵島として再形成させる試みを促進しています。凝集体の直径を縮小させます。当社のマーカーは、緩んだ封入物質内の細胞レベルでの凝集体における低酸素誘導因子活性を示すことができます。PEGは、優れた移行特性、細胞適合性、および機能的に修飾しやすいことから、カプセル材料として選定されました。40 mLのガラスバイアルに2 gのPEGを量り取り、約308 µLのメタクリル酸無水物を加えて、ハードプラスチックキャップでバイアルを軽く閉じます。標準的な家庭用電子レンジを用い、強モードで2分間加熱します。次に、耐熱手袋を着用してバイアルを十分にボルテックスし、さらに強モードで5分間加熱します。バイアルを扱いやすい温度まで短時間冷却した後、バイアルを回転させながらキャップを開けます。塩化メチレンをゆっくりと加え、溶液が透明で均質になるまで、必要に応じてサンプルのボルテックスミキシングを行います。次に、撹拌した冷エチルエーテル 200 milliliters に溶液を滴下し、PEG dm を沈殿させます。次に、吸引ろ過によってPEG DMを回収し、乾燥させます。PEG DMが乾燥したら、約100から150 millilitersの脱イオン水に溶解させます。その後、分画分子量1000 Daltonsの透析チューブを用い、脱イオン水に対して5日間透析を行います。溶液を適切な容器に分注し、-80°Cで一晩凍結させます。その後、溶液を4日間凍結乾燥させ、処理した培養フラスコの表面から細胞を遊離させるための精製された白色のPEG DM粉末を作製します。まず、培地を吸引し、37°Cのカルシウム・マグネシウムフリーHBSSで細胞を洗浄し、HBSSを吸引します。次に、37 °Cに温めたトリプシンおよびEDTA溶液を2 mL加え、細胞を37 °Cで3分間インキュベートします。その後、フラスコの側面を強く叩いて細胞を剥離させ、37 °Cに温めた培地を8 mL加え、細胞懸濁液を激しくピペッティングして混ぜ合わせます。この際、気泡が入らないように注意してください。細胞懸濁液を滅菌済みの15 mL遠心チューブに移した後、ヘモサイトメーターで細胞数を計測し、感染させる全細胞数を決定します。6ウェル懸濁培養プレートの各ウェルに、1ウェルあたり400,000個の細胞となるように必要な量の細胞懸濁液を分注します。次に、感染させる細胞あたりのHBSS 50 µLを1.8 mLマイクロ遠心チューブに分注します。続いて、調製したHBSSに適切な量のウイルス懸濁液を慎重にピペットで加えます。次に、目的のMOIとなるように、希釈したウイルスを適切な量ずつ各ウェルに添加し、続いて各ウェルの全量が1.7 millilitersになるように培地を添加します。最後に、プレートをインキュベーター内のオービタルシェーカーに設置し、培地がウェル内で穏やかに流れるよう、シェーカーを約100 RPMの低速に設定して、細胞を24から36時間凝集させます。まず、1 milliliterのプラスチック製注射器の先端を切り落とし、開口部を上にしてラックに配置して、ハイドロゲルを形成させるための容器を作成します。次に、光活性化PEG DM溶液 20 µLを、プランジャーの上にシリンジの開口端からピペットで注入し、溶液がプランジャー表面全体を覆っていることを確認します。プランジャーをわずかに調整して、液面を平らにします。その後、ピペットをラックに戻し、ハイドロゲルの架橋を行うため、ラックをUVランプの下に約8分間配置します。この間に、目的の細胞数および凝集体を含む容量をピペットで 1.8 mL マイクロ遠心チューブに分注します。チューブにキャップをし、細胞と凝集体を 130 ×g で 5 分間遠心分離します。次に、マイクロピペットを用いて、チューブ底部の細胞ペレットを乱さないように注意しながら、上清を慎重に取り除きます。メディアヘッドがペレットに近づいたら、より細い10 µLのピペットチップを使用して、細胞凝集塊が完全に包接されるようにしながら、ゲル前駆体溶液全体に均一に分散させます。ここがこの手順で最も難しい部分です。このステップを行う際は、ペレットを慎重に再懸濁し、転送するように注意してください。次に、細胞ペレットを20 µLの光活性PEG DM溶液で穏やかに再懸濁します。口径の広いピペットチップを使用して、架橋済みハイドロゲル部分の上のシリンジ内に細胞懸濁液を加え、シリンジにさらに8分間UV光を照射してハイドロゲルの構築を完了させます。完了すると、細胞は円筒形のハイドロゲル内に完全に封入されます。最後に、24ウェルプレートの1つのウェルにHBSSを1 mL、別のウェルに培地を1 mLずつ加えます。次に、シリンジからハイドロゲルをHBSSの中へ押し出し、ゲルを短時間洗浄します。その後、ゲルを培地へと移し、目的の条件下でプレートを培養します。培養中の任意の時点で、蛍光顕微鏡を用いて細胞をイメージングし、低酸素シグナリングの開始を追跡することができます。24ウェルプレートを顕微鏡ステージに置き、ハイドロゲルを含むウェルを対物レンズの中心に合わせます。このシグナルは個々のシグナリング細胞を特定できるほど十分な特異性を有していますが、細胞内でのシグナルの局在を決定するには解像度が不十分な場合があります。シグナリング細胞において、シグナルは通常、細胞質全体に均一に観察されます。この図は、ゲルセル内のPEGハイドロゲルに封入されたminx凝集体の代表例を示しています。ここで示されているように、栄養輸送を効率化するため、凝集体はマトリックスに完全に封入され、均一に分散している必要があります。架橋ゲルが全体的に固形であり、反応を行った容器の形状に従っていることに注目してください。この図では、PEG DMハイドロゲル内で凝集したmin six細胞における代表的な低酸素シグナルの蛍光像を示しています。左側の画像は、カプセル化後に20% oxygenで44時間インキュベートした細胞であり、低酸素シグナルは示していません。一方、右側の画像は、カプセル化後に2% oxygenで44時間インキュベートした細胞であり、明確で普遍的なシグナルを示しています。低酸素状態は、他の細胞種においても追跡可能です。この図は、カプセル化された間葉系幹細胞凝集塊における代表的な低酸素シグナリングを示しています。一番左の図に見られるように、2% oxygenの12時間後では蛍光シグナルは検出されませんが、中央の図に見られるように、2% oxygenの24時間後にはより顕著になります。そして最終的に、右の図に見られるように、本手順に従い2% oxygenで96時間後には高度に発現しています。低酸素シグナリングと細胞表現型の相関を明らかにするために、ELISAや分泌タンパク質の解析、細胞生存率アッセイなどの他の手法を実施することができます。このような展開により、本技術は、組織工学や細胞ベースの治療薬デリバリー分野の研究者が、スキャフォールドや封入材料内における細胞の生存機能や分化を探索するための道を開く可能性があります。

tracking-hypoxic-signaling-within-encapsulated-cell-aggregates

Research

JoVE Journal

Bioengineering

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薬物治療後の腫瘍凝集体内の局所細胞密度の非破壊的評価

学ぶPEGハイドロゲル封入細胞凝集体における低酸素シグナルの追跡法。マウスインスリノーマ細胞を用いて低酸素誘導因子活性を蛍光顕微鏡で可視化し、再生医療や糖尿病治療への応用可能性を探る。

カプセル化された細胞凝集体の中で低酸素シグナルの追跡

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