Name: 尾懸垂テスト (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-28T21:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 17 s
Description: 学ぶマウスの尾懸垂テストの実施方法と行動スコアリングの技術。抗うつ薬効果を評価する行動神経科学の標準的手法を習得し、薬理学的研究に応用する。

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本研究では、助成金NIHM R01 MH091816とTDGのR21 MH084043によってサポートされています。

1。材料 1。サスペンションボックス尾懸垂試験（TST）は、彼らの尾で地面からマウスを中断伴います。最も基本的なレベルでは、手順はサスペンションのバーや棚の棚、およびテープが必要です。しかし、実験者は、最適なコントラストを提供するバックグラウンドの使用を考慮する必要があります。さらに、それはテストされている他の動物を観察するからマウスを防ぐための対策を講じるのが賢明です。当研究室では、我々は大きさ（55高さX 60幅× 11.5 cmの深さ）とプラスチック製の特別に製造された尾懸垂ボックス（4時間の日、ボルティモアMD）を、使用してください。お互いを観察したり、相互作用から動物を防ぐために、各マウスは、その独自の3層長方形区画（55高さX 15幅× 11.5 cmの深さ）の中で中断されます。マウスは、この区画の真ん中に懸濁させ、幅と深さはマウスが協力を行うことができないようなサイズに設定されていますされ壁とntact。この設定では、マウスの鼻と装置の床面との間のおおよその距離は20〜25 cmです。私たちは一度に4匹のマウスをテストできるように装置のような4つの同一のコンパートメントがあります。各マウスの尾を中断するために使用されるアルミサスバー（1 cmの高さX 1センチメートル。幅× 60センチの長さ）は、ボックスの上部に位置している。我々は我々の研究室で使用するディメンションは、一般的な基準とみなされるべきである。大規模な近交系マウス系統（例：CD - 1）が使用されている場合例えば、テールサスペンションボックスの個々の区画のサイズを大きくすることができます。 各コンパートメントの一番下に私たちは動物から糞や尿を収集する取り外し可能なアルミのトレイを置きます。我々は、アルビノの動物のための暗い灰色のボックスと他のコートの色のマウスのクリーム色のボックスを使用してください。この取り決めは、私たちより良いコントラストとテストのため、より信頼性の高い行動の得点を与える。 2。テープ<p class=&quot;jove_content&quot;&gt;テープは、マウスの尾やサスペンションのバーの両方にしっかりと付着し、そして（例えばTimeMedラベリングシステム、株式会社、バーリッジIL、1.9センチ幅）テストされるマウスの重量を運ぶのに十分な強さでなければなりません。セッションの終了時に、それが尾から削除される可能性があるのでしかし、テープは過度に粘着性であってはならない。私たちは、テープの17 cmの断片を切り取って、一方の端からマーク2 cmを置きます。残りの15 cmのマウスのサスペンションに使用されていた間、この2cmの部分は、尾部にテープを取り付けるために使用された。 3。タイマー 4。ビデオ録画デバイスビデオカメラと三脚は、（または他の支持構造）が必要である。このテストは通常​​、同時に試験される複数の動物を含んでいるので、ライブスコアが困難になるのでお勧めできません。ビデオカメラは、ハワイ州で記録する必要があります行動スコアリングのために後で使用される高品質の画像をレンダリングするためにGH十分な解像度。常にテストを開始する前に、カメラに十分な記録のメモリがあることを確認してください。我々は、ビデオの簡単な転送を可能にする、物理メディア（すなわちビデオカセット）を使用せずにデジタル記録するビデオカメラを使用。 5。ホワイトノイズ発生器ノイズ発生器は、断続的な環境音にマ​​スクをかける必要があります。ノイズジェネレーターの使用は、特に突然大きな音が潜在的にマウスを驚愕することを聞くことができる実験室環境で推奨されます。我々の実験室での周囲雑音レベルは、（アクティブホワイトノイズ発生器なし）を60 dB程度です。 TSTが行われる場所でアクティブにホワイトノイズ発生器との合計音のレベルは70〜72デシベルです。しかし、これらの図は例として提供されていることに注意すべきである、と各研究室では、選択してください彼らのユニークな環境や状況に応じて右側のノイズレベル。 6。クリーニング用品サスペンションボックスは滅菌溶液（例えばMB - 10、皮肉Laboratories社、ウィルミントン、DE、または類似の）と各セッションの後は十分に拭き取ってください。 7。 Climbstoppers（オプション：使用ひずみに依存） このようなC57BL / 6などのいくつかの背景を、、のマウスは、試験1の間に彼らの尾を登ることができる。ポリカーボネートチューブから4 cmの長さ（FourHourDay株式会社、ボルティモアMDによる）（＃8585K41、マクマスター - カー、サンタフェスプリングスにカットされている明確な中空円筒（4センチ長さ、外径1.6センチメートル、内径1.3センチメートル、1.5グラム） 、CA）が動作2,3を登るような尾を防ぐために、マウスの尾の周りに配置されています。これらのデバイスは、共通のツールや材料を持つ任意の実験室で行うことができます。 2。行動手順<p class="jove_content"&gt;全体的な実験計画は、実験に特有な変数間の適切な相殺を反映している必要があります。例えば、我々の実験で我々は、すべてのTSTセッション（すなわち、4つの治療グループがある場合、それぞれがそれぞれのセッションで表現されます）に等しく、各グループを代表してみてください。また、マウスの位置は、各処置群からのマウスは、各セッションで異なる位置に配置されるような方法で回転される。 <ol><li>の位置にカメラを置きます。カメラは、動物の可能な限り高い解像度を得るためにできるだけ近いはずです。 </li><li>セッション中に使用されるテープの断片は、カットマーク、およびセッションのために準備する必要があります。 </li><li>マウスは、試験室に導入される前に、使用されている場合、ホワイトノイズ発生器を起動します。ホワイトノイズのレベルは、外部ノイズをマスクするために十分なはずです。高音量を回避し、ホワイトノイズと同じレベルのすべての動物のために使用されていることを確認します。 </li><li>持参試験室にimals。動物が存在する部屋や試験室は、同様の環境条件との相互に隣接している場合は、順化期間は必要になる場合があります。そうでなければ、順化の期間（一般的には少なくとも1時間）に試験室に動物を置く。同じ部屋に配置された他の動物は嗅覚と超音波手がかりを感知できることに注意してください。 </li><li>このようなC57BL6 / Jのような尾を、登ることが知られ菌株は、テープを適用する前に、尾の周りの場所のClimbstoppersを使用されている場合。 </li><li>マウスの尾にテープを付着する。テープの著しい先端を使って、テープが尾とバック自体にくっついていることを確認します。テープは、テープの外側に残っている尾の2〜3ミリメートルとテールの一番最後に適用する必要があります。 </li><li>かつてテープの各部分は、ケージの内側の壁にテープの中央部分をスティックマウスの尾部に取り付けられています。これはお互いにテープ片のもつれを防ぐことができます。なお、Cこの方法でonfinementはストレスを引き起こすため、早急に各動物にテープを適用するプロセスを完了することが重要であることができる。 </li><li>すべてのテープが適用されると、録音を開始し、マウスが中断される前にセッションを識別します。 </li><li>治療群間で相殺されるためにサスペンションのバーや棚の上にテープの自由端を置くことによって、動物を一時停止します。全体TSTセッションが得点し、カメラがその時に行動を評価するためにできないことにつながる妨害されるため、カメラのビューを妨げないような方法でマウスをサスペンド。すべてのテープの両端がそれぞれのマウスのスラックの同じような長さとサスペンションのバーや棚に平行にハングアップしていることを確認してください。 </li><li>セッションの終了（通常は6分である）で、彼らのhomecageに動物を戻すと、慎重にゆっくりとそれを引っ張って各尾からテープを削除する。そうすることがマイクに痛みを引き起こす可能性があるので尾からテープをリッピングしないでください。E. </li><li>彼らのコロニーの部屋にマウスを返した後にコレクショントレーから糞便玻璃と尿を破棄し、消毒液で装置を拭いてください。 </li></ol> 3。行動分析<ol><li>一般的に、TSTは長さが6分を最初から最後までです。他の広く使用されている抗うつ効果の手続き、強制水泳試験とは異なり、セッション全体がスコアリングされ。これは、マウスは以前TSTでマニフェスト不動する傾向があることを見つける一般的な原因です。 </li><li>私たちのラボでは、カメラからの分析が行われているPCに直接ビデオファイルをアップロードする。 </li><li>行動の分析中に携帯電話が測定される各マウスが費やす時間。それは直接不動時間を測定することは可能ですが、我々はそれが容易ではなく、そのような動きの欠如よりも活発な動きを検出し測定することを発見した。 </li><li> TST行動分析の最も重要な側面は、動きの一貫性のある識別です善意のモビリティとして記録されているの。特にセッションの開始時にマウス、、公然と逃げる関係しているマニフェストの行動。これらは装置の壁とサスペンションバー、ボディの強い揺れ、そして実行に似て手足の動きの情報を表示しようとして含まれています。これらの動きは明らかにモビリティを構成する。その後、これらの行動治まると微妙になる。前脚に限定されていますが、後ろ足の関与なしにモビリティとしてカウントされていない我々の研究室の小さな動きで。さらに、以前のモビリティの試合で得た勢いを原因とするスイングのような振動と振り子はまた、モビリティとしてカウントされません。 </li><li>私たちのラボでは、時間の測定（Xnoteストップウォッチ、dnSoft研究グループ）のための画面上のストップウォッチのソフトウェアを使用してください。二つの独立したストップウォッチは、画面上で使用されています。時の行動分析期間が終了する第一ストップウォッチは360秒とアラートからオブザーバをダウンカウントします。第二STO時間は、モバイル過ごしたオブザーバー-措置によってpwatch制御さ。特定のストップウォッチのソフトは、画面上にキーボードがストップウォッチを制御できるように、機能を起動および停止するキーを割り当てる機能を持っています。代わりに通常のキーボードの、我々​​は一般的にストップウォッチを制御するために&quot;ゲームパッド&quot;として知られている入力デバイスを使用してください。 </li><li>画面上でテストされた、現在複数のマウスがある場合、それは彼らの動きが観察者の気をそらすことがないように他の動物をカバーすることをお勧めします。これは、別のプログラムのウィンドウを使用するか、物理的に紙と画面上の他のマウスを覆うことによって行うことができます。 </li><li>特定のマウスの経過モビリティの時間の合計は、分析前のセッションが完了するまで表示されている場合に発生するいくつかのバイアスがあるかもしれません。画面上のストップウォッチを使用する場合、我々はすべてがストップウォッチの秒の小数をカバーするために示唆している。ストップウォッチをカバーすることによって観察者は、唯一のストップウォッチがあるかどうかを知っている合計時間が経過し、従ってあらゆるバイアスの影響を受けないことを知っていないオンまたはオフにいずれかの時点でですが。このアプローチのオブザーバを用いて、動物のグループの割り当てにブラインドしながら、それぞれの動物の移動性のレベルの一般的な考えを持っていないでしょう。 </li><li>者間の信頼性試験は、試験動物からデータを収集を開始する前に、すべての新しい観察のために実施されるべきである。彼または彼女が得点している間私たちの研究室では各々の新しい観察は、最初に経験豊かな観測者を監視します。新しいオブザーバーは不動の機動性を区別するために十分な信用を得るの後、彼らはその後、経験豊かな観測者が視聴して誤りがあれば指摘してリアルタイムで得点。このフェーズが正常に完了すると、新たなオブザーバーは、我々は訓練の目的のために当研究室で維持しているTSTビデオの特定のセットを分析します。者間の相関の高いレベルは、経験豊富な観察で得られた後にのみ調査官は、実際のTSTのビデオを分析していません実験。我々は、アーカイブ、これらのトレーニングの分析からのデータは、実験室の内部標準を構成する。我々は、彼らがモビリティ（と不動）の行動を表現し、男女間の不動時間を意味する方法で菌株間の違いを観察している。新しい系統、性別、または遺伝子改変マウスモデルが実験室で試験されている場合は、再度信頼性のこのタイプの分析を行うことが必要です。 </li></ol> 4。代表的な結果我々は、様々なマウス系統におけるリチウムの治療（図1）3〜抗うつ薬のような応答を評価するためにTSTを使用している。この実験の実験の詳細はできますから、2011年3公開されています。 <img src="/files/ftp_upload/3769/3769fig1.jpg" alt="図1" /> 図1、5つの近交系マウスにおける慢性的なリチウムの投与後に尾懸垂試験において無動時間。マウスは、グループの家でしたD、ケージあたり4匹。リチウム治療群のマウスは、3週間で4 g / kgの塩化リチウムを含むリチウム順子を受けた。対照動物は、塩化リチウムなく同一の食品を受け取りました。 **：P &lt;0.01、***：P &lt;0.001で有意な、対応のないt検定を示す。データは平均± SEMとして表される。各菌株のグループごとにnは:10 - 12匹。 （図3から再生された）。 この例では、食品に配信慢性リチウムの有意な治療効果は、C57BL/6JとDBA/2J系統で観察される。他の3株では、不動時間に統計的に有意な減少が観察されなかった。これらのデータはまた、他の抗うつ薬4月8日に観察されているように慢性リチウム治療に抗うつ薬のような応答が依存する株であることを示している。

<ol><li>Mayorga, A. J., Lucki, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limitations+on+the+use+of+the+C57BL%2F6+mouse+in+the+tail+suspension+test%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">Limitations on the use of the C57BL/6 mouse in the tail suspension test.</a> Psychopharmacology (Berl). 155, 110-112 (2001).</li>
<li>Dao, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mood+Disorder+Susceptibility+Gene+CACNA1C+Modifies+Mood-Related+Behaviors+in+Mice+and+Interacts+with+Sex+to+Influence+Behavior+in+Mice+and+Diagnosis+in+Humans%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Mood Disorder Susceptibility Gene CACNA1C Modifies Mood-Related Behaviors in Mice and Interacts with Sex to Influence Behavior in Mice and Diagnosis in Humans.</a> Biological Psychiatry. 68, 801-810 (2010).</li>
<li>Can, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antidepressant-like+responses+to+lithium+in+genetically+diverse+mouse+strains%5BTitle%5D)+AND+%22Genes%2C+Brain+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Antidepressant-like responses to lithium in genetically diverse mouse strains.</a> Genes, Brain and Behavior. 10, 434-443 (2011).</li>
<li>Bai, F., Li, X., Clay, M., Lindstrom, T., Skolnick, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intra-+and+interstrain+differences+in+models+of+%22behavioral+despair%22%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacol.+Biochem.+Behav%22%5BJournal%5D)">Intra- and interstrain differences in models of "behavioral despair".</a> Pharmacol. Biochem. Behav. 70, 187-192 (2001).</li>
<li>Cervo, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genotype-dependent+activity+of+tryptophan+hydroxylase-2+determines+the+response+to+citalopram+in+a+mouse+model+of+depression%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Genotype-dependent activity of tryptophan hydroxylase-2 determines the response to citalopram in a mouse model of depression.</a> J. Neurosci. 25, 8165-8172 (2005).</li>
<li>David, D. J., Renard, C. E., Jolliet, P., Hascoet, M., Bourin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antidepressant-like+effects+in+various+mice+strains+in+the+forced+swimming+test%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">Antidepressant-like effects in various mice strains in the forced swimming test.</a> Psychopharmacology (Berl). 166, 373-382 (2003).</li>
<li>Dulawa, S. C., Holick, K. A., Gundersen, B., Hen, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+chronic+fluoxetine+in+animal+models+of+anxiety+and+depression%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropsychopharmacology%22%5BJournal%5D)">Effects of chronic fluoxetine in animal models of anxiety and depression.</a> Neuropsychopharmacology. 29, 1321-1330 (2004).</li>
<li>Lucki, I., Dalvi, A., Mayorga, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensitivity+to+the+effects+of+pharmacologically+selective+antidepressants+in+different+strains+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">Sensitivity to the effects of pharmacologically selective antidepressants in different strains of mice.</a> Psychopharmacology (Berl). 155, 315-322 (2001).</li>
<li>Steru, L., Chermat, R., Thierry, B., Simon, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+tail+suspension+test%3A+a+new+method+for+screening+antidepressants+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">The tail suspension test: a new method for screening antidepressants in mice.</a> Psychopharmacology (Berl). 85, 367-370 (1985).</li>
<li>Can, A., Dao, D. T., Arad, M., Terrillion, C. E., Piantadosi, S. C., Gould, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Mouse+Forced+Swim+Test%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">The Mouse Forced Swim Test.</a> J. Vis. Exp. 58, 3791-3638 (2012).</li>
<li>Porsolt, R. D., Bertin, A., Jalfre, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+despair+in+mice%3A+a+primary+screening+test+for+antidepressants%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Int.+Pharmacodyn.+Ther%22%5BJournal%5D)">Behavioral despair in mice: a primary screening test for antidepressants.</a> Arch. Int. Pharmacodyn. Ther. 229, 327-336 (1977).</li>
<li>Porsolt, R. D., Anton, G., Blavet, N., Jalfre, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioural+despair+in+rats%3A+a+new+model+sensitive+to+antidepressant+treatments%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Behavioural despair in rats: a new model sensitive to antidepressant treatments.</a> Eur. J. Pharmacol. 47, 379-391 (1978).</li>
<li>Crowley, J. J., Blendy, J. A., Lucki, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain-dependent+antidepressant-like+effects+of+citalopram+in+the+mouse+tail+suspension+test%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology+%28Berl%29%22%5BJournal%5D)">Strain-dependent antidepressant-like effects of citalopram in the mouse tail suspension test.</a> Psychopharmacology (Berl). 183, 257-264 (2005).</li>
<li>Karolewicz, B., Paul, I. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Group+housing+of+mice+increases+immobility+and+antidepressant+sensitivity+in+the+forced+swim+and+tail+suspension+tests%5BTitle%5D)+AND+%22European+Journal+of+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Group housing of mice increases immobility and antidepressant sensitivity in the forced swim and tail suspension tests.</a> European Journal of Pharmacology. 415, 197-201 (2001).</li>
<li>Lad, H. V., Liu, L., Paya-Cano, J. L., Fernandes, C., Schalkwyk, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+traits+for+the+tail+suspension+test%3A+automation%2C+optimization%2C+and+BXD+RI+mapping%5BTitle%5D)+AND+%22Mammalian.+Genome%22%5BJournal%5D)">Quantitative traits for the tail suspension test: automation, optimization, and BXD RI mapping.</a> Mammalian. Genome. 18, 482-491 (2007).</li>
<li>Liu, X., Gershenfeld, H. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+differences+in+the+tail-suspension+test+and+its+relationship+to+imipramine+response+among+11+inbred+strains+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Psychiatry%22%5BJournal%5D)">Genetic differences in the tail-suspension test and its relationship to imipramine response among 11 inbred strains of mice.</a> Biol. Psychiatry. 49, 575-581 (2001).</li>
<li>Ripoll, N., David, D. J., Dailly, E., Hascoet, M., Bourin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antidepressant-like+effects+in+various+mice+strains+in+the+tail+suspension+test.%5BTitle%5D)+AND+%22Behav.+Brain.+Res.%22%5BJournal%5D)">Antidepressant-like effects in various mice strains in the tail suspension test.</a> Behav. Brain. Res.. 143, 193-200 (2003).</li>
<li>Mineur, Y. S., Belzung, C., Crusio, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+unpredictable+chronic+mild+stress+on+anxiety+and+depression-like+behavior+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Behav.+Brain.+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of unpredictable chronic mild stress on anxiety and depression-like behavior in mice.</a> Behav. Brain. Res. 175, 43-50 (2006).</li>
<li>Thierry, B., Stéru, L., Simon, P., Porsolt, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+tail+suspension+test%3A+Ethical+considerations%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology%22%5BJournal%5D)">The tail suspension test: Ethical considerations.</a> Psychopharmacology. 90, 284-285 (1986).</li>
<li>Cryan, J. F., Mombereau, C., Vassout, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+tail+suspension+test+as+a+model+for+assessing+antidepressant+activity%3A+review+of+pharmacological+and+genetic+studies+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Biobehav.+Rev%22%5BJournal%5D)">The tail suspension test as a model for assessing antidepressant activity: review of pharmacological and genetic studies in mice.</a> Neurosci. Biobehav. Rev. 29, 571-625 (2005).</li>
<li>O'Leary, O. F., Cryan, J. F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aO%27Leary%2C+OF+%22Mood+and+Anxiety+Related+Phenotypes+in+Mice%22">Mood and Anxiety Related Phenotypes in Mice</a>. Gould, T. D. 42, Humana Press. 119-137 (2009).</li>
<li>Detke, M. J., Johnson, J., Lucki, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+and+Chronic+Antidepressant+Drug+Treatment+in+the+Rat+Forced+Swimming+Test+Model+of+Depression%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Clinical+Psychopharmacology%22%5BJournal%5D)">Acute and Chronic Antidepressant Drug Treatment in the Rat Forced Swimming Test Model of Depression.</a> Experimental and Clinical Psychopharmacology. 5, 107-112 (1997).</li>
<li>Rupniak, N. M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+depression%3A+challenges+from+a+drug+development+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Animal models of depression: challenges from a drug development perspective.</a> Behavioural Pharmacology. 14, 385-390 (2003).</li>
<li>Strekalova, T., Steinbusch, H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aStrekalova%2C+T+%22Mood+and+Anxiety+related+phenotypes+in+mice%3A+Characterization+using+behavioral+tests%22">Mood and Anxiety related phenotypes in mice: Characterization using behavioral tests</a>. 42, 153-176 (2009).</li>
<li>Bartolomucci, A., Fuchs, E., Koolhaas, J. M., Ohl, F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBartolomucci%2C+A+%22Mood+and+Anxiety+related+phenotypes+in+mice%3A+Characterization+using+behavioral+tests%22">Mood and Anxiety related phenotypes in mice: Characterization using behavioral tests</a>. 42, 261-275 (2009).</li>
<li>Samuels, B. A., Hen, R. Mood and Anxiety related phenotypes in mice: Characterization using behavioral tests. 63, 107-121 (2011).</li>
<li>Juszczak, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+usage+of+video+analysis+system+for+detection+of+immobility+in+the+tail+suspension+test+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology+Biochemistry+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">The usage of video analysis system for detection of immobility in the tail suspension test in mice.</a> Pharmacology Biochemistry and Behavior. 85, 332-338 (2006).</li>
<li>Crowley, J. J., Jones, O. 'L. eary, F, O., Lucki, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+tests+for+measuring+the+effects+of+antidepressants+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology+Biochemistry+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Automated tests for measuring the effects of antidepressants in mice.</a> Pharmacology Biochemistry and Behavior. 78, 269-274 (2004).</li>
<li>Gould, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Involvement+of+AMPA+receptors+in+the+antidepressant-like+effects+of+lithium+in+the+mouse+tail+suspension+test+and+forced+swim+test%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropharmacology%22%5BJournal%5D)">Involvement of AMPA receptors in the antidepressant-like effects of lithium in the mouse tail suspension test and forced swim test.</a> Neuropharmacology. 54, 577-587 (2008).</li>
<li>Gould, T. D., Dao, D. T., Kovacsics, C. E. Mood and Anxiety related phenotypes in mice: Characterization using behavioral tests. Gould, T. D. 42, Humana Press. (2009).</li>
</ol>

著者は、利害の衝突を宣言しません。

Steru らによるTSTの開発9は、以前開発した強制水泳試験10月12日影響を受けていた。 TSTマウスの強制水泳試験、似ては避けられないが適度にストレスの多い状況に置かれている。エスケープ関連行動の欠如が不動とみなされます。強制水泳試験と同様に、TSTはテスト最良の薬の抗うつ効果を評価するための検証だけでなく、環境への神経生物学的、および遺伝的操作の影響13-18を評価するために使用されます。強制水泳試験とは対照的に、TSTに水19の水没による低体温症の危険性はない。実験者は、強制水泳試験とTSTが同様の一応のある間、それらの感度及び性能の様々な重要な違いがあることを念頭に置く必要がありますし、つのテストの結果は、必ずしも他に複製されないことがあります。違いはbの優秀な説明については、etweenこれら2つのテストは以下の参照4,20,21を参照してください。ほとんどの抗うつ薬は、患者の臨床的に有意な効果を発揮するために数週間かかるものの、抗うつ薬は、そのTSTに影響し...

<ul><li>テープ</li><li>タイマー</li><li>ビデオカメラ</li><li>ホワイトノイズ発生器（オプション） </li><li> Climbstoppers（オプション、使用される菌株に応じて） </li></ul>

尾懸垂テスト

The Tail Suspension Test

尾懸垂試験は、潜在的な抗うつ薬のスクリーニングに有用なマウスの行動テストで、うつ病に関連する行動に影響を与えないことが予想されている他の操作の査定。マウスは、それがエスケープまたは近くの表面に保持できないような位置に、テープで彼らの尾によって停止されています。このテスト中は、通常は6分間持続時間で、結果として得られるエスケープ指向の振る舞い​​が定量化されています。尾懸垂試験は、将来の抗うつ薬化合物のハイスループットスクリーニングのための創薬に有用なツールです。ここでは、発生する可能性があると、それらを回避する方法を潜在的な問題についての追加重点を置いて、このテストの実施に必要な詳細を説明します。我々はまた、広く使用されているC57BL / 6とテールクライミング動作を解決する、いくつかのマウス系統では、このテストは役に立たないレンダリングする共通の問題を、提供しています。具体的には、小さなプラスチックを通してマウスの尾を渡すことによって、テール登山行動を防ぐ前のサスペンションのシリンダー。最後に、どのように手動でこのテストで明らかにされている行動を獲得するために我々詳細。

尾懸垂試験は、マウスにおける薬物治療の抗うつ効果を評価するための実験手順として検証されます。マウスは、6分間その尾によって中断され、エスケープ関連の行動が評価されています。我々は、尾懸垂試験の実施に使用される手順を説明します。

テイルサスペンション試験は、潜在的な抗うつ薬のスクリーニングや、その他の操作の評価に有用なマウスの行動試験であり、...

尾懸垂試験は、さまざまな実験的操作による抗うつ効果を予測するために用いられる一般的な行動試験です。この動画では、本試験の手順を実演します。尾懸垂試験はマウスにおいて妥当性が確認されており、より大型の齧歯類には推奨されません。尾懸垂試験では、マウスを尾で吊り下げます。マウスを6分間吊り下げた状態で保持し、その間の被験体の行動を記録します。6分間のテスト期間が終了したら、被験体の尾からテープを取り除きます。テスト完了後、視覚的な記録をコンピューターまたはビデオモニターに転送します。解析のため、観察者はマウスが6分間のセッション全体でもがいていた時間を測定します。抗うつ作用を持つ化合物は、マウスが抗う（struggling）時間を増加させます。これは、不動時間が短縮されることで反映されます。例えば、補助的な抗うつ薬として臨床的に有用な気分安定薬であるリチウムが、尾懸垂試験において不動時間を減少させたことを報告しています。こんにちは。私はボルチモアにあるメリーランド大学医学部精神科、Todd Gould博士の研究室のSeanです。こんにちは、同じ研究室のChantelです。このビデオでは、尾懸垂試験の実施方法とスコアリングについて説明します。尾懸垂試験は、抗うつ治療の潜在的な有効性を評価するために用いられます。それでは、実験室へ移動して、実験の手順を説明しましょう。必須ではありませんが、ここでは特別に設計された尾懸垂用ボックスを使用します。この試験では、尾懸垂ボックスを4つのコンパートメントに分割し、各マウスをそれぞれ独立して配置します。この仕切りにより、試験中にマウス同士が互いを視認することを防ぎます。ただし、棚やその他の構造物を使用してマウスを吊るすことも可能です。尾懸垂試験ボックスの寸法は、マウスが縁に届いて掴まることができないように選択します。実験を開始する前に、十分な量のテープ断片を切り、尾への接着に使用する部分に印を付けておきます。当研究室では、17 centimeterのテープ断片を使用します。このテープ断片の端から2 centimeterの箇所に印を付け、ここを尾への接着に使用します。この2 centimeterの範囲の中央に尾を配置します。尾懸垂試験装置とビデオカメラを配置します。動物を導入する前に、前の被験体による臭いを中和するため、装置内を滅菌溶液で十分に洗浄してください。当研究室では、色の点を除いてすべて同一の、2種類の異なる尾懸垂試験装置を使用しています。アルビノマウスの場合、ビデオ録画にはダークグレーのボックスが良好なコントラストを提供します。色の濃いマウス系統には、白いボックスが適しています。ホワイトノイズマシンを起動してください。断続的な音を遮断する必要があります。マウスを処置室に連れていき、環境に慣らしてください。室内の条件は一定に保ち、騒音や照度の変化、その他の妨げとなる要因がないようにしてください。この期間は通常、少なくとも1時間とします。順化期間が終了したら、特定のマウス系統が自分の尾に登るのを防ぐために、テストを進行させることができます。尾懸垂テストでは、尾の上に配置するプラスチック製シリンダーを使用します。これらのシリンダーは、テスト中に尾の基部に配置されます。当研究室では、長さ4 cm、直径1 cm、重量1.5 gのプラスチック製シリンダーを使用しています。登攀を防止するためにプラスチック製シリンダーを使用する場合は、テープを貼る前に尾に配置してください。尾の先端から2〜3 mmだけ外に出るようにして、テープを貼付します。マウスをホームケージに入れた状態で、尾にテープを貼り付けてください。テープの印がついた端を使用し、テープが尾に密着し、さらにテープ同士が重なって固定されていることを確認してください。テープを貼付した後、異なる個体に貼ったテープが絡まり合わないよう、各マウスをケージの壁面に固定します。この操作は迅速に行ってください。さもなければ、マウスに不必要なストレスを与えることになります。動物を吊り下げる前に録画を開始してください。テープの自由端を吊り下げバーに掛け、動物を吊り下げます。この際、治療群間でカウンターバランスをとった順序で、かつカメラの視界を妨げないように配置してください。マウスは1匹ずつ吊り下げるため、個体によってテストの開始時間がわずかに異なります。各マウスの懸垂期間の開始と同時に、正確にスコアリングを開始してください。カメラの視野を遮らないことが重要です。尾懸垂セッション全体を通じてスコアリングを行うため、カメラの視野が遮られるとデータの欠落につながる可能性があります。すべてのテープの端が吊り下げバーに対して垂直であり、緩みの長さが均一であることを確認してください。被験者ごとにタイマーを開始します。尾懸垂試験の時間は6分間です。6分間のテスト時間が経過したら、各マウスの尾の端からテープを取り除き、ホームケージに戻します。テスト終了時に、被験体情報をビデオ記録してください。マウスをコロニー室に戻した後、テストボックスを徹底的に洗浄し、滅菌溶液で拭き上げてください。テストが完了しましたので、行動のスコアリングについて説明します。尾懸垂テストのスコアリングにおいて通常評価される唯一の変数は、動物が不動であった時間です。不動時間を算出するために、マウスが動作していた時間を測定し、それを6分間のテスト時間から差し引きます。テストの全6分間をスコアリングします。まず、評価対象ではないマウスを覆い、各マウスの測定時間において観察者が1匹の動物だけに集中できるようにします。活動性は、ゲームパッドデバイスで制御する画面上のストップウォッチで測定します。ここでは、ご覧のように、同時に制御される2つの独立した画面上のストップウォッチが表示されています。1つ目のストップウォッチは360秒からカウントダウンし、観察者に試験時間を知らせます。2つ目のストップウォッチは、被験者が活動的に動いている時間を測定します。見ての通り、2つ目のストップウォッチは1つ目のストップウォッチに覆われており、観察者にはミリ秒の小数点以下のみが見えるようになっています。これにより、観察者はストップウォッチが作動しているかを確認できますが、スコアリングが完了するまで総移動時間を見ることはできません。これは、観察者のバイアスが結果に影響を与えるのを防ぐために行います。マウスは、特にセッションの開始時に、脱出に関連する行動を示します。これらの行動には、装置の壁や懸垂バーに到達しようとする試み、強い身体の震え、および走行に似た肢の動きが含まれます。これらの動きは明らかに運動能を示しています。しかし、試験が進むにつれて、動きはよりわずかなものになります。当研究室では、後肢の動きを伴わず、前肢のみに限定された小さな動きは移動としてカウントしません。また、前回の移動時の慣性によって生じる振り子のような揺れも、移動とはみなしません。それでは、実際の尾懸垂試験セッションにおけるスコアリングを確認しましょう。一般的に報告されるのは、移動時間ではなく不動時間です。不動時間は、360秒の試験時間から総移動時間を差し引くことで算出できます。スコアリング。テールサスペンション試験にはトレーニングと習熟が必要です。内部ラボ基準を確立し、新しい観察者が高い信頼性に達するまでトレーニングを行うことが重要です。本論文では、尾懸垂試験の実施方法とスコアリングについて説明します。今後の実験の成功を願っています。

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