Name: 骨髄移植によるマウス大腸炎における免疫および非免疫細胞からの遺伝子発現の機能的役割を差別化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-01T12:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 43 s
Description: 学ぶ骨髄移植を用いたマウス大腸炎におけるlyin抗菌ペプチドの抗炎症効果と免疫応答制御メカニズム。フローサイトメトリーと組織学的解析で移植成功を検証し、炎症性腸疾患治療への応用可能性を探索する。

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この作品は、カリフォルニア大学ロサンゼルス校（UCLA）-CUREセンター、クローン病とアメリカのキャリア開発賞（＃2691）と健康NIDDK K01研究所（DK084256）本町ワイクーンへの資金の大腸炎財団からパイロットとフィージビリティスタディの助成金によって賄われていた。 骨髄照射操作がバーナード·レヴィンとエイズ研究ヒト/マウスキメラ中核施設のためのUCLAのセンターのスコット·キッチンの援助を受けた。フローサイトメトリー操作はUCLAのベクトル·コア施設によって支援された。

1。前あなたスタート技術的な考慮事項<ol><li>対応するCD分子とマウスはマウスの主要ベンダーから購入することができますので、我々は実験のためにC57/BL6野生型マウスとノックアウトマウスの両方を使うことをお勧めします。 </li><li>それは、骨髄移植後の野生型マウスとノックアウトマウス由来のドナー細胞を追跡するのは困難であるので、それは野生型マウスを表すためにCD45.1マウスを使用する必要があります。 （CD45.1 C57/SJL WTマウスジャクソン研究所の株式＃002014）。 </li><li>ほとんどのマウスコロニーがCD45.2です。私たちのノックアウトマウスは、CD45.2遺伝子型（：ジャクソン研究所株式＃000664交互CD45.2 WTマウスソース）に属しています。 CD45.1またはCD45.2遺伝子型の決定は、このプロトコルのセクション7で説明したように、骨髄や末梢血のフローサイトメトリーを用いて行うことができる。 </li><li>照射後のマウスは、免疫力を損なわれている。病原体フリー施設でマウスをおいてください。 </li><li>照射装置の動作は、特別なセキュリティを必要とするclearanceとトレーニング。訓練および承認プロセスに時間を節約するために、それは照射装置を操作することができる資格を持つ技術者による実験室と協力するのが最善です。 </li><li>多くの機関は、経験豊富な技術者とフローサイトメトリー実験室を持っています。フローサイトメトリーの動作に問題を最小限に抑えるために、それはあなたが開始する前に、経験豊富な技術者を使ってフローサイトメトリー実験計画を議論することをお勧めします。 </li><li>マウス（各群10匹）、このように割り当てられていた： </li></ol><table border="1"><tbody><tr><td> グループ </td><td></td><td> 受信者への骨髄ドナー </td><td> 治療 </td></tr><tr><td> A </td><td> BMの交換</td><td> CD45.1 WTにCD45.2 KO </td><td> DSS大腸炎</td></tr><tr><td> B </td><td></td><td></td><td>水の正常なコントロール</td></tr><tr><td> C言語</td><td> BMの交換</td><td> CD45.1 WTにCD45.2 KO </td><td> DSS大腸炎</td></tr><tr><td> D </td><td></td><td></td><td>水の正常なコントロール</td></tr><tr><td> E </td><td>ごまかし</td><td> CD45.1 WTにCD45.1 WT </td><td> DSS大腸炎</td></tr><tr><td> F </td><td></td><td></td><td>水の正常なコントロール</td></tr><tr><td> G </td><td>ごまかし</td><td> CD45.2 KOへCD45.2 KO </td><td> DSS大腸炎</td></tr><tr><td> H </td><td></td><td></td><td>水の正常なコントロール</td></tr></tbody></table>実験プロトコルの*簡単な例を図1に示します。 2。レシピエントマウス照射<ol><li>マウスは飼育と無菌施設に保管されています。フィルタ付きのオートクレーブ処理照射パイでマウスを置きます。照射パイの各スロットに1マウスを置きます。照射器にパイを置き、ターンテーブルとパイが回っていることを確認してください。 </li><li>エアーポンプの電源を入れ換気のために。照射装置のドアを閉じてロックします。 </li><li> 10分（放射線源及び半減期に応じて）約1,000ラド（10グレイに相当）をマウスに照射します。この時点から、放射線照射したマウスは免疫不全で、感染に弱い免疫を持っています。照射後、パイを取り出して、動物施設におけるバイオセーフティキャビネットへの輸送のための無菌の容器に入れる。感染の機会を最小限にするために外部環境にマウスを近づけないようにしてください。 </li><li>バイオセーフティキャビネット内で、（ - 水100ml当たり3.12ミリリットルをケージあたり4匹sulfatrim懸濁液と新しい滅菌水を追加）オートクレーブした寝具を使用してオートクレーブしたマウスのケージにマウスを移す。 </li><li>抗生物質は光感受性であるためアルミホイルで水のボトルを包む。ケージにそれをロードする前によくsulfatrimソリューションボトルを混ぜてシェイク。 </li></ol> 3。ドナー骨髄の抽出<ol><li>二酸化炭素またはisoflur持つマウスを生け贄に捧げるインピーダンスその後1:200ライゾール溶液中に浸す。肌を濡らし、オープン骨を切開し、70％エタノールでマウスをスプレーしてください。 </li><li>滅菌のための70％エタノール中で解剖器具を浸す。 </li><li>バイオセーフティキャビネット内郭清を行う。筋肉や靭帯を取り付けるから無料上腕骨、大腿骨、脛骨と腓骨の骨を露出させ、無菌の解剖器を使用します。 </li><li>赤色骨髄を表示するために骨の両端を切り開く。ピンセットで骨を保持します。シャーレに3mlの注射器と25G針で冷PBSで赤色骨髄を洗い流す。より骨髄細胞を生成するために骨の両端からフラッシュします。 </li><li>繰り返し吸引と吐出によって赤色骨髄プラグを壊すために6ミリリットルのシリンジと18G1 / 2の注射針を使用しています。 50mlのFalconチューブで骨髄を転送します。 </li><li> 4℃で5分間のために1800回転で骨髄をスピンダウン5から10秒間ボルテックスすることにより上清、ペレットを再懸濁しを破棄します。 </li><li>滅菌水で10倍のRBC溶解緩衝液で希釈します。広告D 1X RBC溶解バッファー（ドナーマウスあたり5ml）、5秒間再びボルテックスし、室温で正確に3分間保つ。 </li><li> 3分後、溶解及び混合を停止するには、20ミリリットル冷PBSでチューブを埋める。新しい50mlファルコンチューブに直接40μmのセルストレーナーを介してコンテンツを注ぐ。 </li><li> 5mlのPBSで元のチューブを洗浄し、同様にセルストレーナーに転送されます。 PBSおよびミックスで50mlに水を補充して下さい。 </li></ol> 4。骨髄ドナー細胞をカウント<ol><li>エッペンドルフチュー​​ブ、エッペンドルフチュー​​ブとミックスに骨髄懸濁液100μlにトリパンブルーの100μlを添加する。血球計数器に染色された細胞混合物をピペット。 </li><li>細胞の量は、16の正方形でファルコンチューブ=非染色細胞数×2（トリパンブルーの希釈に起因する）×10,000×50ミリリットルの総リビング骨髄細胞数によって計算され</li><li> 4℃で5分間、2,000 rpmで50ミリリットルのファルコンチューブに骨髄細胞をスピンダウン</li><li>上清を取り除きます。基づい総細胞数で、1mlあたり1×10 8個の細胞をPBSでペレットを再懸濁</li></ol> 5。レシピエントマウスに注入<ol><li>熱パッド上と温暖ランプの下で、レシピエントマウスを温める。拘束中のレシピエントマウスを置きます。静脈内に100から200μlにマウスあたり1×10 7個の細胞を注入します。 </li><li>ドナー骨髄の注入は、照射後4から24時間の間に行わなければなりません。 </li><li>ケージあたり4注射したマウスについていく。病原体フリー動物施設の最初の4週間の抗生物質で処理した水を用いてオートクレーブしたケージの中に注入されたレシピエントマウスを維持し、マウスは免疫力を取り戻すことができます。衛生状態を維持するために4日毎にはケージ、抗生物質で処理した水や食料を変更します。 </li></ol> 6。大腸炎や大腸炎の評価の誘導<ol><li> 4週間照射と骨髄移植後に、それらの正常を取り戻すために抗生物質を含まない通常の水に切り替えて、さらに2週間のマウスを維持叢を腸。 </li><li> 6週間骨髄注入後、初期の体重を測定します。いくつかのマウスは大腸炎を誘発するために水を自由に摂取を飲んで5％硫酸デキストランを与えられている。一部のマウスでのみ正常対照群として定期的な飲料水を与えられている。 </li><li> 5日後、末梢血を撤回し、ヘパリンコーティングチューブ（バキュテイナー）に転送して、氷の中に保管してください。 1チューブに4匹から血液をプール。 =600μlの細胞染色バッファ300μlの血液300μlのを兼ね備えています。 100μlで5エッペンドルフチュー​​ブ、それぞれに血を分けてください。 </li><li>二酸化炭素又はイソフルランを持つマウスを生け贄に捧げる。巨視的な損傷のスコア（詳細1のための別のJOVEビデオ出版物を参照してください）を評価します。体重変化を測定します。デジタルキャリパーと腸の長さと厚さを測定します。スツールテクスチャを（ハード、ソフトや血）に従ってください。 Hemooccultと便中の潜血を決定します。結腸組織を解剖し、H＆E染色のためにホルマリンで固定します。 </li><li> 1大腿boを解剖するね当たりマウスは、骨髄を​​抽出し、25G針と1mlシリンジ経由冷PBSで骨髄をフラッシュします。プール4骨髄は1管に差し込むと、氷の中に保管してください。 </li><li>全く骨髄プラグが存在しなくなるまでペトリ皿、せん断18G針と5mlシリンジで数回骨髄プラグに骨​​髄を注ぐ。 </li><li> 4℃で5分間1500 rpmでスピンダウン上清を除去し、600μlの細胞染色バッファーで再懸濁する。 100μlで5エッペンドルフチュー​​ブ、それぞれに再懸濁させた骨髄を分ける。 </li></ol> 7。フローサイトメトリーによる骨髄移植の品質検査<ol><li>血液や骨髄＃1-5の各サンプルチューブにラベルを付ける： </li><li>暗闇の中で、それぞれの管のための抗体混合物を準備します。 </li></ol>第1抗体なし 第230μlのFITCアイソタイプコントロール+30μlのPEのアイソタイプコントロール+15μlのCD16/32ブロッキング 第330μlのFITC CD45.1 AB +15μlのCD16/32ブロッキング ＃4を30μlのPECD45.2 AB +15μlのCD16/32ブロッキング 第530μlのFITC CD45.1 AB +30μlのPE CD45.2 AB +15μlのCD16/32ブロッキング<table border="1"><tbody><tr><td>血液や骨髄のサンプル＃1には何も追加しない</td></tr><tr><td>各血液または骨髄サンプル＃2への抗体混合物＃25μlを追加</td></tr><tr><td>各血液または骨髄サンプル＃3に抗体混合物＃3の3μlを加え</td></tr><tr><td>各血液または骨髄サンプル＃4に抗体混合第43μlを追加</td></tr><tr><td>各血液または骨髄サンプル＃5への抗体混合物＃5μlを加え</td></tr></tbody></table><ol start="3"><li> 30分間氷上で、暗所で保管してください。 </li><li>各チューブに2ミリリットル1X RBC溶解バッファーを追加します。氷上で15分間、暗所で保管してください。 </li><li> 4℃で5分間、1500rpmで細胞をスピンダウン（GH 3.8ローター、1,500回転= 350×g）で上清を除去します。暗い、その後渦簡潔で500μlの細胞染色バッファーでペレットを再懸濁します。 </LI&gt; <li>フローサイトメトリーによる免疫染色された血液や骨髄サンプルでCD45.1（WTを表す）とCD45.2を（KOを表す）を確認してください。 KO CD45.2を表すために、WT CD45.1とPEを表すためにFITCを選択します。 </li><li> FlowJoソフトウェアによってフローサイトメトリーの結果を分析します。ドナーの遺伝子型は、血液や骨髄中の支配的な遺伝子型であるかどうかを判断するのFITC比：PEの比、またはPE：FITCの比率を計算します。 </li></ol>

<ol><li>Kim, J. J., Shajib, M. S., Manocha, M. M., Khan, W. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+Intestinal+Inflammation+in+DSS-induced+Model+of+IBD%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Investigating Intestinal Inflammation in DSS-induced Model of IBD.</a> J. Vis. Exp. (60), e3678(2012).</li>
<li>Ungaro, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+Toll-like+receptor+4+antagonist+antibody+ameliorates+inflammation+but+impairs+mucosal+healing+in+murine+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Gastrointest.+Liver+Physiol%22%5BJournal%5D)">A novel Toll-like receptor 4 antagonist antibody ameliorates inflammation but impairs mucosal healing in murine colitis.</a> Am. J. Physiol. Gastrointest. Liver Physiol. 296, 1167-1179 (2009).</li>
<li>Castagliuolo, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+effects+of+neurokinin-1+receptor+during+colitis+in+mice%3A+role+of+the+epidermal+growth+factor+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Protective effects of neurokinin-1 receptor during colitis in mice: role of the epidermal growth factor receptor.</a> Br. J. Pharmacol. 136, 271-279 (2002).</li>
<li>Koon, H. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cathelicidin+signaling+via+the+Toll-like+receptor+protects+against+colitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Cathelicidin signaling via the Toll-like receptor protects against colitis in mice.</a> Gastroenterology. 141, 1852-1863 (2011).</li>
<li>Lee, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((marrow+cells+in+murine+colitis%3A+multi-signal+analysis+confirms+pericryptal+myofibroblast+engraftment+without+epithelial+involvement%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">marrow cells in murine colitis: multi-signal analysis confirms pericryptal myofibroblast engraftment without epithelial involvement.</a> PLoS One. 6, e11(2011).</li>
<li>Deng, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+cell+therapy+using+bone+marrow-derived+stem+cells%2Fendothelial+progenitor+cells+to+accelerate+neovascularization+in+healing+of+experimental+ulcerative+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Pharm.+Des%22%5BJournal%5D)">New cell therapy using bone marrow-derived stem cells/endothelial progenitor cells to accelerate neovascularization in healing of experimental ulcerative colitis.</a> Curr. Pharm. Des. 17, 1643-1651 (2011).</li>
<li>Valcz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lymphoid+aggregates+may+contribute+to+the+migration+and+epithelial+commitment+of+bone+marrow-derived+cells+in+colonic+mucosa%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Lymphoid aggregates may contribute to the migration and epithelial commitment of bone marrow-derived cells in colonic mucosa.</a> J. Clin. Pathol. 64, 771-775 (2011).</li>
<li>Takaba, J., Mishima, Y., Hatake, K., Kasahara, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+bone+marrow-derived+monocytes%2Fmacrophages+in+the+repair+of+mucosal+damage+caused+by+irradiation+and%2For+anticancer+drugs+in+colitis+model%5BTitle%5D)+AND+%22Mediators+Inflamm%22%5BJournal%5D)">Role of bone marrow-derived monocytes/macrophages in the repair of mucosal damage caused by irradiation and/or anticancer drugs in colitis model.</a> Mediators Inflamm. 2010, 634145(2010).</li>
<li>Bakhautdin, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protective+role+of+macrophage-derived+ceruloplasmin+in+inflammatory+bowel+disease.+%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">Protective role of macrophage-derived ceruloplasmin in inflammatory bowel disease. </a> Gut. , (2012).</li>
<li>Seta, N., Kuwana, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+multipotent+progenitors+from+human+circulating+CD14%2B+monocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Hematol%22%5BJournal%5D)">Derivation of multipotent progenitors from human circulating CD14+ monocytes.</a> Exp. Hematol. 38, 557-563 (2010).</li>
<li>Crain, B. J., Tran, S. D., Mezey, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transplanted+human+bone+marrow+cells+generate+new+brain+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Transplanted human bone marrow cells generate new brain cells.</a> J. Neurol. Sci. 233, 121-123 (2005).</li>
<li>Finnberg, N. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+imaging+and+antitumor+effects+of+GFP%28%2B%29+bone+marrow-derived+cells+homing+to+syngeneic+mouse+colon+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">High-resolution imaging and antitumor effects of GFP(+) bone marrow-derived cells homing to syngeneic mouse colon tumors.</a> Am. J. Pathol. 179, 2169-2176 (2011).</li>
<li>Duran-Struuck, R., Dysko, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+bone+marrow+transplantation+%28BMT%29%3A+providing+optimal+veterinary+and+husbandry+care+to+irradiated+mice+in+BMT+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Assoc.+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Principles of bone marrow transplantation (BMT): providing optimal veterinary and husbandry care to irradiated mice in BMT studies.</a> J. Am. Assoc. Lab Anim. Sci. 48, 11-22 (2009).</li>
<li>Chen, B. J., Cui, X., Sempowski, G. D., Domen, J., Chao, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cell+dose+correlates+with+the+speed+of+immune+reconstitution+after+stem+cell+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cell dose correlates with the speed of immune reconstitution after stem cell transplantation.</a> Blood. 103, 4344-4352 (2004).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

この骨髄移植のアプローチは、大腸炎の免疫学研究、感染症、癌、肥満や他の病気のために適している。この骨髄移植実験は、目的遺伝子が両方の骨髄由来と非骨髄由来細胞と目的遺伝子がいずれの集団からの細胞によって病気を媒介することが疑われるで発現した場合に必要とされる。例えば、抗菌ペプチドカテリシジンは、急性大腸炎を調節することが示されている。しかし、それは、上皮細胞や免疫細胞（マクロファージなど）の両方で表されます。その後、我々はマウスの急性大腸炎を調節する細胞のどの集団を定義するために骨移植を使用していました。大腸炎の重症度が有意に骨髄移植を介した骨髄カテリシジン遺伝子型の変更後に変更されていました。その後、我々は、DSSに対応して変調急性大腸炎に重要な役割を果たしている骨髄由来細胞で発現したカテリシジンを締結することができます。 骨ミリアンペアrrow由来の細胞は、典型的には赤血球、白血球、血小板が含まれています。骨髄移植は、これらの細胞ではなく、他の遺伝子型を変更します。横方向に言えば、この実験は、非骨髄由来の細胞に対する骨髄由来細胞における目的遺伝子の役割を区別することができます。し...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td>細胞染色バッファ</td><td> Biolegend </td><td> ＃420201 </td></tr><tr><td> 10X RBC溶解バッファー</td><td> Biolegend </td><td> ＃420301 </td></tr><tr><td> FITC標識マウスアイソタイプコントロール</td><td> Biolegend </td><td> ＃400207 </td></tr><tr><td> PEのマウスアイソタイプコントロール</td><td> Biolegend </td><td> ＃400211 </td></tr><tr><td> PE抗マウスCD45.2 </td><td> Biolegend </td><td> ＃109807 </td></tr><tr><td> FITC抗マウスCD45.1 </td><td> Biolegend </td><td> ＃110705 </td></tr><tr><td>抗マウスCD16/32ブロッキング</td><td> Biolegend </td><td> ＃101301 </td></tr><tr><td> 40μmのセルストレーナー</td><td> Fisherbrand </td><td> ＃22363547 </td></tr><tr><td> PBS 1X </td><tD&gt; MPバイオメディカル</td><td> ＃1860454 </td></tr><tr><td>ヘパリン</td><td> Fisherbrand </td><td> ＃BP2425 </td></tr><tr><td> Sulfatrim（SMZ） </td><td> Qualitest </td><td> NC9242720（漁師） </td></tr><tr><td>ライゾールIC </td><td> Andwin科学</td><td> NC9745686（漁師） </td></tr><tr><td> Vaccutainer </td><td> BD </td><td> ＃8000813 </td></tr><tr><td>マウス制止</td><td>トリーサイエン</td><td> ＃テレビ-150 </td></tr><tr><td>照射器</td><td> JLシェパード·アンド·アソシエイツ</td><td>私は68Aマーク</td></tr><tr><td>フローサイトメーター</td><td> BD </td><td> BD FACSCanto II </td></tr><tr><td>フローサイトメーターの試験管</td><td>ファルコン</td><td> ＃352052 </td></tr><tr><td>デジタルノギス</td><td> Fisherbrand </td><td> 14-648-17 </td></tr><tr><td>ヘモカルトICT </td><td>ベックマン·コールター</td><td> G0328QW </td></tR&gt; </tbody></table>

骨髄移植によるマウス大腸炎における免疫および非免疫細胞からの遺伝子発現の機能的役割を差別化

Differentiating Functional Roles of Gene Expression from Immune and Non-immune Cells in Mouse Colitis by Bone Marrow Transplantation

大腸炎の開発における遺伝子の役割を理解するために、我々は、野生型マウスと大腸炎に目的遺伝子欠損ノックアウトマウスの応答を比較した。目的遺伝子は、骨髄由来の細胞とホストの非骨髄由来細胞の両方で発現される場合、ただし、それは、骨髄由来の細胞と非骨髄に目的の遺伝子の役割を区別することが可能である骨髄移植技術によって誘導された細胞。マウスの骨髄由来細胞の遺伝子型を変更するには、レシピエントマウスのオリジナルの骨髄を照射して破壊され、その後、別の遺伝子型の新しいドナー骨髄に取って代わられた。野生型マウスのドナー骨髄をノックアウトマウスに移植したとき、我々は骨髄由来の細胞における野生型遺伝子の発現とノックアウトマウスを生成することができます。あるいは、時のノックアウトマウスドナー骨髄は目的遺伝子を発現せず、野生型レシピエントマウスは、野生型マウスに移植した骨髄由来の細胞を作製した。しかし、骨髄移植は100％完全ではありません。そこで、レシピエントマウスと骨髄移植の成功におけるドナー骨髄由来の細胞の割合を追跡するために、ドナーとレシピエント細胞のマーカーとして分化（CD）の分子のクラスタ（CD45.1とCD45.2）を利用。 CD45.2遺伝子型を持つCD45.1遺伝子型とノックアウトマウスと野生型マウスを用いた。レシピエントマウスの照射後、異なる遺伝子型のドナー骨髄細胞をレシピエントマウスに注入した。新しい骨髄がその免疫を引き継ぐために再生したときに、マウスは大腸炎を誘導する化学剤（デキストラン硫酸ナトリウム、DSSの5％）でチャレンジした。ここで我々はまた、マウスでは大腸炎を誘導し、骨髄由来の細胞から発現対象の遺伝子の役割を評価するための手法を示した。骨由来の細胞から目的遺伝子は、疾患の発症に重要な役割を（例えば大腸菌などに再生される場合TIS）、骨髄移植によるレシピエントマウスの表現型を大幅に変更することができます。大腸炎の実験の最後に、血液や骨髄中の細胞を骨髄由来がCD45.1とCD45.2に対する抗体と存在の彼らの量的比率を用いて標識したフローサイトメトリーにより、骨髄移植の成功を評価するために使用することができる。成功した骨髄移植はレシピエントマウスの骨髄や血液の両方で受信者の遺伝子型以上のドナー遺伝子型（CD分子マーカーの任期で）の大半を示すべきである。

目的遺伝子は、大腸炎の開発の間に免疫細胞で重要な役割を果たしている場合には、骨髄を​​介して異なる遺伝子型の骨髄を受けたマウスは、移植（KOまたはKOにWTとWTは）DSS大腸炎への応答変化があるはずです。大腸炎の重症度を決定するための最も重要なパラメータの1つは、結腸組織のH＆E染色である。結腸組織構造の変化や炎症の徴候を定量的に、H＆E組織像のスコアリングシステムで評価することができる。 DSS大腸炎モデルのため、H＆E組織像のスコアの基準は、ここに2を発見することができます。あるいは、化学物質誘発性大腸炎はまた、ニトロベンゼンスルホン酸（TNBS）によって誘導することができる。 TNBS腸炎誘導し、H＆E組織学採点基準の方法は前の刊行物3に記載されています。グループ間の組織学的スコアの差はスチューデントの t-検定により分析することができる。 マウスはかなり持っているかもしれ改善または偽骨髄移植（WTまたはKOにKOにWT）を持つマウスと比較した場合、大腸炎を悪化させた。目的遺伝子は、骨髄由来細胞を介して大腸炎にお...

骨髄移植は、骨髄由来細胞の遺伝子型を変更する方法を提供します。目的の遺伝子が骨髄由来細胞と非骨髄由来細胞の両方で発現されている場合は、骨髄移植では、非骨髄由来細胞の遺伝子型を変更することなく、異なる遺伝子型に骨髄由来細胞を変更することができます。

大腸炎の発症におけるある遺伝子の役割を理解するため、野生型マウスと目的遺伝子欠損ノックアウトマウスの応答を比較した...

このビデオで実演する実験の全体的な目的は、抗菌ペプチドlysinが、マウスにおけるデキストラン硫酸誘発結腸炎の改善に役割を果たすかどうかを評価することです。これは、野生型マウスからの骨髄を放射線照射したlysin欠損マウスおよびノックアウトマウスに注入し、またノックアウトマウスからの骨髄を放射線照射した野生型マウスに注入することによって行われます。移植された骨髄により、レシピエント内でドナーの遺伝子型を持つ新しい血球が生成されます。その後、レシピエントマウスにデキストラン硫酸を投与し、4週間後に大腸炎を誘導します。移植の成功はフローサイトメトリーによって検証し、結腸組織の損傷は組織学的解析により評価します。その結果、ノックアウトマウスに野生型骨髄を移植すると大腸炎が改善することが示されました。逆に、ノックアウト骨髄を野生型マウスに移植すると、大腸炎は悪化します。この手法は、炎症または感染における骨髄由来細胞または非骨髄由来細胞からの遺伝子発現を特定するための重要な疑問を解決するのに役立ちます。野生型マウスとノックアウトマウスの追跡を可能にするため、本実験ではC57BL/6野生型マウスおよびC57BL/6ノックアウトマウスの使用を推奨します。骨髄移植後のドナー細胞。野生型マウスとしてCD 45.1マウスを、ノックアウトマウスとしてCD 45.2マウスを使用します。ここに示すチャートは実験設定を表しており、各グループに5匹のドナーマウスと10匹のレシピエントマウスが割り当てられています。グループAおよびBでは、野生型マウスからノックアウトマウスへ骨髄を移植します。グループAには大腸炎を誘発させますが、グループBには誘発させません。グループCおよびDでは、ノックアウトマウスから野生型マウスへ骨髄を移植し、グループCにのみ大腸炎を誘発させます。グループEおよびFでは、野生型から野生型への移植を行い、グループGおよびHでは、ノックアウトからノックアウトへの移植を行います。放射線照射マウスへの移植に用いるドナー骨髄を調製するため、まずバイオセーフティキャビネット内で、犠牲にしたマウスの骨から骨髄を抽出します。滅菌済みの解剖器具を用いて、上腕骨、大腿骨、脛骨、および腓骨を、付着している筋肉や靭帯から切り離して露出させ、シャーレに移します。骨の両端を切断し、赤色骨髄を露出させます。次に、ピンセットで骨のいずれか1本を保持します。3 mLシリンジと25G針を用い、冷PBSで赤色骨髄を別のペトリ皿へ洗い出します。次に、骨の反対側からも同様に洗い出し、さらに多くの骨髄細胞を回収します。この工程をすべての骨に対して繰り返します。野生型マウスとノックアウトマウスの骨髄をそれぞれ別にプールします。18ゲージの1/2インチ針を装着した6 mLシリンジを用い、吸引と排出を繰り返すことで赤色骨髄プラグを破砕します。その後、セロロジカルピペットを使用して、回収した骨髄を50 mLコニカルチューブに移します。すべての骨髄を移し終えたら、4°Cで740 Gにて5分間遠心分離します。遠心分離後、上清を捨て、5〜10秒間ボルテックスしてペレットを再懸濁させます。ペレットに、ドナーマウス1匹あたり5 mLのXRBC溶血バッファーを加え、再度5秒間ボルテックスし、室温で正確に3分間インキュベートします。3分後、各チューブに冷えたPBSを20 milliliters加え、転倒混和して溶解を停止させます。次に、内容物を40 micronのセルストレーナーを通して、新しい50 milliliterコニカルチューブに注ぎます。元のチューブを5 millilitersのPBSで洗浄し、その溶液をセルストレーナーに移します。引き続き、コニカルチューブにフロースルーを回収します。その後、PBSを加えて液量を50 millilitersにし、転倒混和します。次に、ヘモサイトメーターを用いたトリパンブルー排除法により、生存細胞数を測定します。細胞数を算出した後、骨髄細胞を4 °Cで913 ×g、5分間遠心分離します。遠心後、全細胞数に基づいて上清を除去します。ペレットをPBSで再懸濁し、1 × 10⁸ cells/mLに調整します。骨髄細胞を、放射線照射済みのレシピエントマウスに移植する準備が整いました。本実験に使用する野生型およびノックアウトレシピエントマウスには、付属文書の記載通り1000 radの放射線照射を行っています。マウスは病原体フリー施設で飼育・管理されており、照射から4〜24時間後、ドナー骨髄を注入するために、ウォーミングランプの下でヒートパッドを用いてレシピエントマウスを保温します。レシピエントマウスを拘束具に入れ、尾部を70% ethanolで拭いて注入部位を滅菌し、注入を容易にするために局所的な血管拡張を促します。28.5ゲージの針が付いたインスリン用注射器を用い、1×10⁷個の細胞を1～200 µLの液量で、各マウスの尾静脈に注射します。注射後最初の4週間は、注射済みのマウスを最大3匹まで同じケージに入れて飼育してください。注射後のレシピエントマウスは、抗生物質スルファトリメトプリムを含む水を用意し、オートクレーブ滅菌済みのケージで飼育します。これにより、動物が免疫力を回復させる時間を設けます。衛生状態を維持するため、4日ごとにケージの交換、および抗生物質を含む水と飼料の交換を行います。放射線照射および骨髄移植の4週間後、抗生物質を含まない通常の水に切り替え、腸内細菌叢を正常に戻すため、さらに2週間マウスを飼育します。骨髄注入の6週間後、大腸炎を誘発するための初期体重を測定します。大腸炎実験群のマウスに、5%デキストラン硫酸を含む飲水を与えます。5日後、4匹のマウスから末梢血を採取してヘパリンコート済みバキュテナーチューブにまとめ、氷上に置きます。次に、1.5 mLマイクロ遠心チューブ内で、血液 300 µLと細胞染色バッファー 300 µLを混合します。その後、1から5まで番号を付けた5本のフローサイトメトリー用試験管に、氷上で血液を 100 µLずつ分注します。マウスを安楽死させた後、再度体重を測定し、その変化量を算出します。結腸組織を摘出し、H&amp;E染色用にホルマリンに固定します。その後、前述の方法で骨髄細胞を採取します。再懸濁した骨髄を、1から5までラベル付けした5本のマイクロ遠心チューブに、それぞれ100 millilitersずつ分注します。フローサイトメトリー解析の準備として、添付文書の記載に従い、各チューブ用の抗体混合液を暗所で調製します。番号1とラベル付けした血液および骨髄サンプルはコントロールとして使用し、染色は行いません。番号2とラベル付けした血液および骨髄サンプルは、fitzy isotype control、PE isotype control、およびCD 16/32ブロッキング溶液で染色します。これらのアイソタイプコントロールは、一次抗体のサンプル結合の特異性を確認するために使用されます。番号3のラベルが付いたサンプルは、FZ CD 45.1およびCD 16/32で染色されます。ブロッキング溶液である番号4のラベルが付いたサンプルは、CD 45.2およびCD 16/32で染色されます。ブロッキング溶液。単色標識により、血液または骨髄中のドナー細胞またはレシピエント細胞の存在を明らかにすることができます。サンプル5番の標識は、CD 45.1、CD 45.2、およびCD 16/32で染色されます。ここでの二色標識により、血液または骨髄におけるドナー細胞とレシピエント細胞の相対比率が示されます。抗体混合液2および5を、それぞれのサンプルチューブに5 µLずつ加えます。次に、抗体混合液3および4を、それぞれのサンプルチューブに3 µLずつ加えます。すべてのチューブを氷上で30分間インキュベートします。インキュベーション後、各チューブにXRBC lysis bufferを2 mL加えます。その後、サンプルを遮光した状態で氷上でさらに15分間インキュベートします。細胞を350 ×gで4 °C、5分間遠心分離します。遠心後、上清を除去し、ペレットを500 µLの細胞染色バッファーを用いて暗所で再懸濁します。その後、短時間ボルテックスします。次に、免疫染色した血液および骨髄サンプルのフローサイトメトリーを行います。野生型CD 45.1をFZで、ノックアウトCD 45.2をPEで表すように選択してください。フローサイトメトリーの結果は、Flo Joeソフトウェアを用いて解析します。血液および骨髄においてドナー遺伝子型が優性遺伝子型であるかを確認するため、fit E対PE比、またはPE対fit e比を算出します。この画像は、正常な組織像およびDSS大腸炎を呈する結腸のH&amp;E染色像の例を示しています。組織像のスコアリングは、粘膜組織の損傷および粘膜・粘膜下組織への好中球浸潤に基づいて行われます。したがって、組織学的スコアが高いほど大腸炎が重度であることを示し、lyinが大腸炎の予防に役割を果たしているかどうかを検証します。本ビデオで説明した通り、野生型マウスとノックアウトマウスの間で骨髄移植を行いました。その後、組織学的評価を行い、ここに示す通りにスコア化しました。ノックアウトマウスの骨髄を照射した野生型マウスに導入したところ、組織学的スコアが有意に上昇しました。逆に、野生型マウスの骨髄をノックアウトマウスに導入すると、スコアが有意に低下しました。これらのデータは、骨髄由来細胞からの内因性Cが抗炎症作用を持ち、大腸炎を改善することを示しており、これらのマウスにおいて移植が成功したことを裏付けています。移植後、マウスの骨髄および血液を用いてフローサイトメトリーも実施した。ここに示すように、野生型の骨髄はFitz CD 45.1に強く染色されるが、PE CD 45.2には染色されない。一方、ノックアウト骨髄はPEに強く染色されるが、Fitzには染色されない。しかし、移植後、ノックアウト骨髄を移植された野生型マウスの骨髄および血液は、ともにFitzではなくPEに強く染色された。これは、染色された細胞の主要な集団がドナー由来であることを示している。同様に、野生型の骨髄を移植したノックアウトマウスの骨髄および血液では、fitzyは強く染色されましたが、peは染色されませんでした。これにより、染色された主要な細胞集団がドナー由来であることが改めて確認されました。このビデオを視聴することで、骨髄移植実験を実施し、骨髄由来細胞を介して大腸炎を修飾させることができるようになります。

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Research

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