Name: 唾液腺器官培養の遺伝子改変と再結合 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-28T12:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 29 s
Description: 学ぶマウス胎生期顎下唾液腺の上皮細胞をアデノウイルスベクターで遺伝子改変する方法。上皮と間葉の分離・再結合技術を用いて、分枝形態形成におけるタンパク質機能を解析できます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

著者らは、有益なコメントや原稿の批判的な読みのための博士ディアドラネルソンに感謝したいと思います。この作品は、アルバニー大学、ニューヨーク州立大学にNIHの助成DE019244、DE019197、DE021841とML​​に、F32DE02098001 SJSへ、そしてC06 RR015464によって賄われていた。

プロトコルは、 図1に示した4つの主要な手順が含まれています。すべての手順が完全に詳細に記載されています。アデノウイルスの構築およびウイルス精製は解剖上皮初歩の遺伝形質で使用するための臓器摘出の前に実行する必要があります。アデノウイルスを扱うときは、すべての標準的なBSL-2の安全上の予防措置に従うべきである。 1。マウス胚性顎下腺（SMG）の収穫と顕微解剖<ol><li>胎生13日目のマウス胚の頸椎脱臼や収穫列（E13、3-5上皮芽）制度の動物実験委員会によって承認され、次の手順に続いて、CO 2ナルコーシスを使用してタイムアウト妊娠雌マウス（非近交系の系統のCD-1またはICR）を、安楽死させる委員会。膣栓の発見の日は、E0として指定されています。始まったばかりクレフトを持つ単一の主芽と茎がある場合には唾液腺もE12の段階で収穫し、培養することができる開始します。この前のステージにサブマシンガンは、ここで示されたものとは異なる培養条件が必要です。 </li><li>フェノールレッド（Life Technologies社）および100 U / mlのペニシリン、100μg/ mlストレプトマイシン（ペン連鎖球菌を欠いたDMEM /ハムF12培地（F12）25mlを充填した無菌の10cmの組織培養皿に胚の文字列を転送する、ライフテクノロジーズ）。 </li><li>滅菌メス（＃11ブレード）や鉗子（＃5、ファイン科学ツール、11252から20）を使用して、DMEM/F12 +ペン連鎖球菌の25ミリリットルを含む別々の10cm皿に嚢から胚を取り除く。 </li><li>ちょうど下顎下の斜めのカットで胚の頭部を切断。 </li><li>上顎下のカットを使用した透過光ベース（ニコンSMZ645または同等品）を装備するステレオ解剖顕微鏡下で頭から下顎を分離します。ガラスの余分な部分の上に直接ではなく、顕微鏡ベースのガラス成分に組織を置く。 </li><li> DMの3ミリリットルに下あごを収集無菌35mmの組織培養皿の中EM/F12 +ペン連鎖球菌。 </li><li>舌がスライスの底面にありますが、12時00時の位置に向かって指しているので、解剖顕微鏡ステージ上顎骨スライスを置きます。 </li><li>シザリング動きの2つの交差したピンセットの片側を使って、下顎のスライスの下1/3を削除し、破棄します。 </li><li>右（右利きの場合）にスライス90°回して、ピンセットではさみカットを使用して、途中でスライスに下顎骨スライスの先頭部分（舌を切断せずに）切る。 </li><li>離れて余分な組織をはがし、下にサブマシンガンを露出させるためにそれを削除します。舌の付け根付近各側に1つあるでしょう。 </li><li>舌でティッシュを押したままにする鉗子の1ペアを使用して、舌からSMGを離れていじめるために他の鉗子を使用しています。他の腺について、この手順を繰り返します。 </li><li>新しい無菌の35ミリメートル組織にDMEM/F12 +ペン連鎖球菌の3ミリリットルに顕微唾液腺を収集培養皿。注意：以前に2,8を説明するように、接続され小さい舌下腺（1芽）と共に大きく顎下腺は（3-5上皮芽）、4と実行手順4.1、4.3、および4.4のステップにスキップすることにより無傷で培養することができる。 </li></ol> 2。上皮性原基の分離をSMG <ol><li>場所5（またはそれ以上）のハンクス平衡塩溶液（HBSSはCa + +やMg + +のを欠いて 、200μlを含むガラス底、直径50mmのマイクロウェルディッシュ（マテック株式会社、P50G-1.5-14-F）の中に唾液腺Life Technologies社）を0.4％含有する（v / v）のディスパーゼ（Life Technologies社、カタログ番号17105から041）と、37℃で15分間インキュベート℃、 </li><li>インキュベーション後、200μlの滅菌ピペットチップを用いて、慎重に腺を乱すことなくディスパーゼソリューションを吸引します。直ちにディスパーゼを中和するために5パーセントを含むDMEM/F12培地200μlの（w / v）BSAを（DMEM/F12-BSA、0.22μmのフィルターで滅菌済み）を追加します。 </li> &lt;liは&gt;解剖顕微鏡下では、細かいヒント（＃5 Dumostar、ファイン科学ツール、11295から20）とピンセットを使って、優しく上皮をそのままにしておくように注意しながら、SMGの上皮芽やダクト周りから緩めの間充織を分離。 </li><li> DMEM/F12-BSAメディアやそっとでプリウェット滅菌200μlのピペットチップはDMEM/F12 +ペン連鎖球菌の200μlを含む新しい50mm径のマイクロウェル皿に上皮初歩を移します。滑らかなエッジを持つ高品質の200μlのピペットチップを使用しています。 </li><li>間葉片が含まれている皿の中で、舌下腺、デ​​タッチされた顎下腺のつぼみを含む、任意の非間葉組織を捨てる。 </li></ol> 3。上皮初歩のアデノウイルス感染<ol><li>得られた溶液の力価は1×10 8〜10 9 PFUsなるようにマイクロチューブにDMEM/F12 +ペン連鎖球菌に興味のあるアデノウイルスを希釈することにより、ウイルス感染の媒体の200μlを加える。ザ異なるウイルスに要する最適な力価は変わる場合があります。塩化セシウム（セシウム）に精製された最適な取り込み効率のためのウイルス調製物を使用することが重要です。 </li><li> 5上皮初歩を含む皿からメディアを取り出します。すぐにすべての回で基礎が濡れ保ち、感染メディアの200μlを添加する。ウイルスを処理し、汚染されたピペットチップの処分に必要な予防措置を取る。 10％漂白剤溶液を用いて、任意のウイルスに汚染された表面を消毒してください。 </li><li>くっつくのを防ぐし、それらがプレートの底に沈殿できるように鉗子で互いに離れ上皮初歩を移動します。室温で1時間ウイルスメディアの初歩をインキュベートする。彼らが近くに一緒に移動した場合のインキュベーションの間に、基礎を分離します。過度の揺れや動きが腺が一緒に凝集することができます。 </li><li>インキュベーション後、そっと、ウイルス含有培地を除去し、適切に廃棄し、rを混乱させないように注意しながらudiments。 DMEM/F12 +ペン連鎖球菌の200μlを添加する。この洗浄は、少なくとも2回以上繰り返すとDMEM/F12 +ペン連鎖球菌メディア200μlと交換してください。これらの洗浄は強く上皮に添付されていない任意のウイルスを除去し、間充織の感染を防ぐために重要です。 </li><li> DMEM/F12 200ml中で20分間、2％（v / v）のマトリゲル（BD Biosciences社、356231）を含有する上皮初歩をインキュベートする。我々は、マトリゲルでこの短いインキュベーションは、初期培養期間中に既存裂の退縮を最小限に抑えますが、マトリゲルへの暴露が望まれていない場合は、このステップを省くことができますを見つける。 </li></ol>再結合サブマシンガンの4。 エクスビボ文化<ol><li>ノッチ（小カット）の上に、プリウェット200μlのピペットチップを用いて、各原基を、一つずつ置く13ミリメートル、0.1μmの培地を200μl（浮かんNucleporeトラックエッチメンブレンフィルター（ワットマン）ガラス底マイクロウェルプレートに5初歩/フィルタ）。培地次のとおりです。DMEM/F12 +ペン連鎖球菌は、50μg/ mlのトランスフェリンおよび150μg/ mlのアスコルビン酸を含む、前述のように2,8は 。トランスフェリンは生存を刺激することが知られており、唾液腺や他の器官外植片9の分枝形態形成されています。アスコルビン酸の添加は、SMGは分岐を刺激することが示されている図10は、それが代謝経路（例えば、コラーゲン線維の形成11時プロリン水酸化など）の多くの水酸化反応における補因子として作用することが知られ、また、他の臓器の外植片におけるフィブロネクチンおよびラミニン産生を刺激される12。 </li><li>各上皮原基を追加した後、できるだけフィルターの上にできるだけ多くのメディアを取り出します。小さいメディアは初歩の配置を行い、はるかに容易に間充織間フィルターの上にあまりにも多くのメディアは、フィルタがシンクすることがあります。余分なメディアをピペットチップでまたは先端間のメディアを把持する鉗子を使用することによって、削除することができます。 </li><li>あちこち由来間葉片を置きメートル上に三から四腺および/または各上皮性原基の周りに。離れて初歩から間葉の動きを避けるために、腺を取り囲んでいる余分なメディアを取り出します。有益ではありませんが、あまり上皮原基の成長に有害であることができるより多くの腺由来間葉。 </li><li>必要に応じて、48 -72時間37℃加湿インキュベーター（95％空気/ 5％CO 2）内で再結合サブマシンガンをインキュベートする。 </li><li>明視野および/または蛍光0時間でのライブ腺の画像（必要な場合）、組換え後2時間およびに4Xまたは5X倍率の対物レンズを使用してデジタルカメラを装着し、倒立正立、またはステレオの光学顕微鏡でその後は24時間を取得するビューの1つのフレームに再結合された全体の腺をキャプチャします。唾液腺の画像は、明の設定や（完全に自動化された顕微鏡では不可能である）光路内の途中に配置され、適切な位相リングのいずれかを使用して最高のコントラストを示す。標準位相コントラストは、noです腺が厚いとコントラストを作成するので、トン必要。 </li><li>希望の時点では、再結合されたサブマシンガンが良いで細胞を維持することにより、内部細胞構造を維持するために5％（w / v）スクロースを（含む1X PBS中2％パラホルムアルデヒド（PFA）製の固定液で20分間固定することができます等浸透圧性の状態）。固定剤が完全に固定した後に削除された場合は4％PFA、2％とは違ってPFAは、GFPシグナルのかなりの量を保存します。腺を4℃の暗所で1×PBSで1週間まで保存することができる°Cのホールマウント免疫細胞化学と共焦点イメージングが実行されるまで、前述3,6,13-15報告した。理想的には、免疫細胞化学およびイメージングは​​、最高品質の画像を得るために固定した後すぐに実行する必要があります。腺はまた、ウエスタンブロット分析に続いて、SDS-PAGE用のRIPA緩衝液で溶解することができる。 </li></ol>

<ol><li>Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salivary+gland+development%5BTitle%5D)+AND+%22Seminars+in+cell+%26+developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Salivary gland development.</a> Seminars in cell & developmental biology. 18, 237-244 (2007).</li>
<li>Sakai, T., Onodera, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+organ+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Embryonic organ culture.</a> Curr. Protoc. Cell Biol. Chapter 19, Unit 19(2008).</li>
<li>Patel, V. N., Rebustini, I. T., Hoffman, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Salivary+gland+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%22%5BJournal%5D)">Salivary gland branching morphogenesis.</a> Differentiation. 74, 349-364 (2006).</li>
<li>Sequeira, S. J., Larsen, M., DeVine, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+and+growth+factors+in+salivary+gland+development%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+of+oral+biology%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix and growth factors in salivary gland development.</a> Frontiers of oral biology. 14, 48-77 (2010).</li>
<li>Zheng, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transient+detection+of+E1-containing+adenovirus+in+saliva+after+the+delivery+of+a+first-generation+adenoviral+vector+to+human+parotid+gland%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Gene+Med%22%5BJournal%5D)">Transient detection of E1-containing adenovirus in saliva after the delivery of a first-generation adenoviral vector to human parotid gland.</a> J. Gene Med. 12, 3-10 (2010).</li>
<li>Larsen, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+PI+3-kinase+and+PIP3+in+submandibular+gland+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Role of PI 3-kinase and PIP3 in submandibular gland branching morphogenesis.</a> Developmental biology. 255, 178-191 (2003).</li>
<li>Hoffman, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+profiles+of+mouse+submandibular+gland+development%3A+FGFR1+regulates+branching+morphogenesis+in+vitro+through+BMP-+and+FGF-dependent+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Gene expression profiles of mouse submandibular gland development: FGFR1 regulates branching morphogenesis in vitro through BMP- and FGF-dependent mechanisms.</a> Development. 129, 5767-5778 (2002).</li>
<li>Rebustini, I. T., Hoffman, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ECM+and+FGF-dependent+assay+of+embryonic+SMG+epithelial+morphogenesis%3A+investigating+growth+factor%2Fmatrix+regulation+of+gene+expression+during+submandibular+gland+development%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">ECM and FGF-dependent assay of embryonic SMG epithelial morphogenesis: investigating growth factor/matrix regulation of gene expression during submandibular gland development.</a> Methods Mol. Biol. 522, 319-330 (2009).</li>
<li>Partanen, A. M., Thesleff, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transferrin+and+tooth+morphogenesis%3A+retention+of+transferrin+by+mouse+embryonic+teeth+in+organ+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%22%5BJournal%5D)">Transferrin and tooth morphogenesis: retention of transferrin by mouse embryonic teeth in organ culture.</a> Differentiation. 34, 25-31 (1987).</li>
<li>Naka, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modulation+of+branching+morphogenesis+of+fetal+mouse+submandibular+gland+by+sodium+ascorbate+and+epigallocatechin+gallate%5BTitle%5D)+AND+%22In+Vivo%22%5BJournal%5D)">Modulation of branching morphogenesis of fetal mouse submandibular gland by sodium ascorbate and epigallocatechin gallate.</a> In Vivo. 19, 883-888 (2005).</li>
<li>Bornstein, P., Traub, W. The chemistry and biology of collagen. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBornstein%2C+P+%22The+Proteins%22">The Proteins</a>. Neurath, H., Hill, R. L. 4, 3rd, Academic Press. 412-632 (1979).</li>
<li>Zhou, L., Higginbotham, E. J., Yue, B. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+ascorbic+acid+on+levels+of+fibronectin%2C+laminin+and+collagen+type+1+in+bovine+trabecular+meshwork+in+organ+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Effects of ascorbic acid on levels of fibronectin, laminin and collagen type 1 in bovine trabecular meshwork in organ culture.</a> Curr. Eye Res. 17, 211-217 (1998).</li>
<li>Daley, W. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ROCK1-directed+basement+membrane+positioning+coordinates+epithelial+tissue+polarity%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">ROCK1-directed basement membrane positioning coordinates epithelial tissue polarity.</a> Development. 139, 411-422 (2012).</li>
<li>Daley, W. P., Gulfo, K. M., Sequeira, S. J., Larsen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+a+mechanochemical+checkpoint+and+negative+feedback+loop+regulating+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Identification of a mechanochemical checkpoint and negative feedback loop regulating branching morphogenesis.</a> Developmental biology. 336, 169-182 (2009).</li>
<li>Sequeira, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+regulation+of+focal+adhesion+complex+formation+and+salivary+gland+epithelial+cell+organization+by+nanofibrous+PLGA+scaffolds%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The regulation of focal adhesion complex formation and salivary gland epithelial cell organization by nanofibrous PLGA scaffolds.</a> Biomaterials. 33, 3175-3186 (2012).</li>
<li>Nogawa, H., Mizuno, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+control+over+elongating+and+branching+morphogenesis+in+salivary+gland+development%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+embryology+and%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal control over elongating and branching morphogenesis in salivary gland development.</a> Journal of embryology and. 66, 209-221 (1981).</li>
<li>Sakai, T., Larsen, M., Yamada, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibronectin+requirement+in+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Fibronectin requirement in branching morphogenesis.</a> Nature. 423, 876-881 (2003).</li>
<li>Daley, W. P., Kohn, J. M., Larsen, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+focal+adhesion+protein-based+mechanochemical+checkpoint+regulates+cleft+progression+during+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+dynamics+%3A+an+official+publication+of+the+American+Association+of+Anatomists%22%5BJournal%5D)">A focal adhesion protein-based mechanochemical checkpoint regulates cleft progression during branching morphogenesis.</a> Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 240, 2069-2083 (2011).</li>
<li>Knox, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Parasympathetic+innervation+maintains+epithelial+progenitor+cells+during+salivary+organogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Parasympathetic innervation maintains epithelial progenitor cells during salivary organogenesis.</a> Science. 329, 1645-1647 (2010).</li>
<li>Larsen, M., Wei, C., Yamada, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+and+fibronectin+dynamics+during+branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Cell and fibronectin dynamics during branching morphogenesis.</a> J. Cell Sci. 119, 3376-3384 (2006).</li>
<li>Wei, C., Larsen, M., Hoffman, M. P., Yamada, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-organization+and+branching+morphogenesis+of+primary+salivary+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Self-organization and branching morphogenesis of primary salivary epithelial cells.</a> Tissue Eng. 13, 721-735 (2007).</li>
<li>Zheng, C., Baum, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+viral+and+mammalian+promoters+for+use+in+gene+delivery+to+salivary+glands%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">Evaluation of viral and mammalian promoters for use in gene delivery to salivary glands.</a> Mol. Ther. 12, 528-536 (2005).</li>
<li>Hsu, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Viral+gene+transfer+to+developing+mouse+salivary+glands%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Dent.+Res%22%5BJournal%5D)">Viral gene transfer to developing mouse salivary glands.</a> J. Dent. Res. 91, 197-202 (2012).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

ex vivoでの上皮間葉組換え技術は、1981年に初めて16で顎下唾液腺のために公開されていました。このプロトコルでは、再結合された腺のコンテキスト内で上皮細胞の遺伝子発現を操作するためにアデノウイルス感染を用いて、元のメソッドを拡張。感染している細胞の割合は、ウイルスプロモーターの性質、ウイルス力価およびウイルス純度に依存するのに対し、我々は、上皮細胞の割合は、アデノウイルスに感染していることを示している。我々は、それが効率的な上皮伝達にCsCl勾配精製されたウイルスを使用することが必要であることを発見した、の精製は、ここでは説明しません。我々はまた、組換え（データは示していない）の前に間葉細胞に感染することができましたので、間葉系人口の独立した遺伝子操作も可能です。我々は最近、役割を識別するためにこのアデノウイルストランスフェクション/組織組換え法を用いて極性タンパク質は、PAR-1Bため、唾液腺の開発における上皮による基底膜の配置の制御インチキナーゼデッドPAR-1bはアデノウイルスと野生型のPAR-1bのアデノウイルスは上皮初歩を感染させるために、本 ​​研究で使用されて13...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td>フェノールレッドを含まないDMEM /ハムF12培地</td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 21041-025 </td><td></td></tr><tr><td>ペニシリンおよびストレプトマイシン</td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 15070-163 </td><td> 10X株式</td></tr><tr><td>ディスパーゼ</td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 17105-041 </td><td> -20Cで単一使用アリコートを凍結</td></tr><tr><td> BSA </td><td>シグマ</td><td> A2934-100G </td><td>フラクションV、低エンドトキシン</td></tr><tr><td>アデノX-GFP </td><td> BD Biosciences社</td><td> 8138から1 </td><td>高力価（1×10 10 pfu / ml）をする必要があります。セシウム精製ウイルスは、このアッセイにおいて、カラム精製ウイルスよりも効果的です。 </td></tr><tr><td> 16％パラホルムアルデヒド</td><td&gt;電子顕微鏡学</td><td> 15710 </td><td> 5％スクロース（w / v）を含むPBS中2％に希釈</td></tr><tr><td> 1Xリン酸緩衝食塩水（PBS） </td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 70011-044 </td><td> 10Xストックから調製</td></tr><tr><td>ハンクス液</td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 14175095 </td><td>全くカルシウムなし、マグネシウム、無フェノールレッド</td></tr><tr><td>トランスフェリン</td><td>シグマ</td><td> T8158 </td><td> 25ミリグラム/ DMEM/F12メディアにおけるミリリットル原液。 -20Cでシングルユースのアリコートを凍結</td></tr><tr><td> L-アスコルビン酸（ビタミンC） </td><td>シグマ</td><td> A4403 </td><td> -20CでDMEM/F12 media.Freezeシングルユースのアリコートで75 mg / mlの原液</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 表1。組み換えプロトコルをSMGに必要な試薬のリスト。 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></TD&gt; <td></td></tr><tr><td> 10センチメートル滅菌したプラスチック製の皿</td><td>コー​​ニング</td><td> 430167 </td><td>非組織培養処理プレートを使用することもできます。 </td></tr><tr><td>透過光ベース付きステレオ解剖顕微鏡</td><td>ニコン</td><td> SMZ645 </td><td>顕微鏡を解剖し、あらゆるステレオ、透過光のベースを持っていることを使用することができます。 </td></tr><tr><td> 35ミリメートルの組織培養皿</td><td>ファルコン</td><td> 353001 </td><td>非組織培養処理プレートを使用することもできます。 </td></tr><tr><td>直径50mmのマイクロウェル皿</td><td>マテック株式会社</td><td> P50-G-1.5-14F </td><td></td></tr><tr><td> Nucleporeトラックエッチメンブレンフィルター</td><td>ワットマン</td><td> 110405 </td><td>直径13mm、0.1mmの細孔径</td></tr><tr><td>広視野蛍光顕微鏡</td><td>カールツァイス、米国</td><td>アクシオオブザーバーZ1 </td><td>任意の蛍光顕微鏡（直立、Invertedまたはステレオ解剖顕微鏡）添付されたデジタルカメラで低倍率でGFPの発現をモニターするために使用することができます。 </td></tr><tr><td>共焦点顕微鏡</td><td>ライカマイクロシステムズ</td><td> TCS SP5 </td><td>共焦点顕微鏡は、詳細なセル構造を参照してくださいする必要があります。任意の共焦点顕微鏡を使用することができます。 </td></tr><tr><td>時限妊娠雌マウス、ひずみのCD-1またはICR </td><td>チャールズリバー研究所</td><td></td><td>胚は13日（0日として指定されたプラグインの発見の日を含む）に収穫されます。 </td></tr><tr><td>メスの刃＃11 </td><td>ファイン科学ツール</td><td> 10011から00 </td><td></td></tr><tr><td>スカルペルハンドル＃3 </td><td>ファイン科学ツール</td><td> 10003から12 </td><td></td></tr><tr><td>デュモン＃5鉗子INOX合金、0.05ミリメートルX 0.02ミリメートル</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 11252から20 </td><td>胚から腺を収穫するための理想的な</td></tr><tr><td&gt;デュモン＃5鉗子dumostar合金、0.05ミリメートルX 0.01ミリメートル</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 11295から20 </td><td>ファインヒントは上皮から間葉を除去するために必要とされる。タングステン針を使用することもできます。 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 表2機器組プロトコルをSMGで使用されます。 </td></tr></tbody></table>

唾液腺器官培養の遺伝子改変と再結合

Genetic Modification and Recombination of Salivary Gland Organ Cultures

分枝形態形成することは、多くの臓器の開発中に発生し、マウス胎児の顎下腺（SMG）は、分枝形態形成の研究のための古典的なモデルである。 -最終的に口腔1に、それぞれ、唾液を生産し、変更/輸送するために役立つ腺やダクトの複雑な分岐鎖のネットワークを生じさせるために、上皮芽とダクト形成のステップを反復開発SMGでは、このプロセスが含まれます3。細胞および分子イベントがコーディネートされている方法が、これらの細胞によって産生される間葉細胞、成長因子や細胞外マトリックスを含む上皮関連基底膜と間葉コンパートメントの側面は、、、、分岐メカニズムに不可欠な貧弱4を理解して残っている。分子メカニズムの研究では、上皮の形態形成の進歩の発達メカニズムの理解を推進し、可能レーゲナーへの洞察を提供ative医学的アプローチ。このような研究は、唾液上皮の遺伝子操作のための効果的な方法が不足しているため妨げられてきた。現在、アデノウイルス形質導入は 、in vivo 5 で成人腺上皮細胞を標的とするための最も効果的な方法を表しています。しかし、胚外植片に、緻密間葉と上皮細胞を取り巻く基底膜は、上皮細胞へのウイルスのアクセスを妨げている。間充織が削除された場合は、上皮はアデノウイルスを用いてトランスフェクトすることができ、および上皮初歩はマトリゲルまたはラミニン-111 6,7の存在下で分岐形態形成を再開することができます。間葉フリー上皮原基の成長はまた、可溶性増殖因子と追加の補充を必要とし、それをそのまま腺8で発生したような完全に分岐形態形成を再現していません。ここでは、トランスフェクトされたeの上皮細胞と文化のアデノウイルス形質導入を容易にする技術を説明関連した間充織とpithelium。胚のサブマシンガン、間葉の除去、およびGFP含有アデノウイルスによる上皮のウイルス感染の顕微解剖に続いて、我々はそのままSMG腺構造をrecapitulatingと分枝形態形成、上皮が自発的に感染していない間充織と再結合することを示している。蛍光タグ付きアデノウイルスコンストラクトが使用されている場合、遺伝的に修飾された上皮細胞集団は簡単に、標準的な蛍光顕微鏡法を使用して監視できます。ここで説明された組織の組換え方法は、現在、トランスジェニック動物の生成を必要としない複雑な3次元組織構築物内に野生型または変異型ベクターを用いた上皮細胞のトランスフェクションのための最も効果的かつアクセス可能な方法である。

主要な実験手順のフローを図1に概説されています。無傷のSMGは、隔離された原基上皮、およびそれに対応する間充織の例を図2に示す。ときに指示された時間のために培養されたex vivoで分岐形態形成を継続して受ける組み換えられたサブマシンガンの明視野像を図3に示す。上皮GFPを発現している48時間成長させ再結合腺が図4に示されている。組換えサブマシンガンの共焦点イメージが固定され、撮像された免疫細胞化学続く文化の中で72時間後に、 図5に示されています。上皮マーカー、E-カドヘリンは、GFP発現周囲の間充織から上皮細胞集団の境界が設定されます。上皮の周囲に局在基底膜タンパク質、パールカンの検出は、再結合された腺の基底膜の少なくとも部分的な再構成を示しています。Figure 6。副交感神経顎下神経節神経突起伸長を受け、以前に実証されるように組換え培養における...

遺伝的に全体の内の上皮細胞を操作する技術<em&gt; ex vivoで</emウイルスの遺伝子導入を用いて&gt;培養胚マウス顎下腺（サブマシンガン）が記述されている。この方法では、自発的にアデノウイルスベクターを用いた上皮初歩の分離及び感染後再結合する上皮と間充織をSMGの生得的な能力を活用しています。

Branching  morphogenesis occurs during the development of many organs, and the embryonic  mouse submandibular gland (SMG) is a classical model for the ...

この手順の全体的な目標は、アデノウイルスコンストラクトを使用して、マウス、胚性顎下唾液腺の上皮における所望のタンパク質の発現を変化させることである。これは、胚の13日目に胚を採取し、顎下唾液腺を解剖することによって達成されます。次に、上皮原始を周囲の間葉から分離し、ウイルスを含む培養物に浸します。原液を洗浄した後、培地をマトリゲル含有培地でインキュベートし、3つの間葉と組み合わせて、標的タンパク質レベルのex vivo培養の変化と分岐形態形成への影響を免疫化学および標準顕微鏡または西洋血液分析を使用して分析できます。この技術により、複雑な臓器の1つの組織コンパートメントのみを遺伝子改変し、トランスジェニック生物を作製することなく、再構成された全臓器のエクスプランの変化をモニターすることができます。この手法が既存の方法よりも優れている点は、上皮コンパートメント内で野生型または優性ネガティブタンパク質の発現を可能にすることです。標準的な手順に従って、まず13個の胚を25ミリリットルの培地で10センチメートルの皿に採取します。次に、鉗子を使用して、胚を袋から取り出し、透過光ベースのステレオスコープの下にペン連鎖球菌を用いた25ミリリットルのD-M-E-M-F 12を含む10センチメートルの皿に胚を移し、胚をきれいなガラス片の上に置きます。次に、下顎または下顎のすぐ下に角度のある切り込みを入れて胚の頭を分離し、上顎の下の切り込みを使用して下顎を分離します。次に、下顎骨を3ミリリットルのD-M-E-M-F 12に移し、ペン連鎖球菌を塗布して35ミリメートルの組織培養皿に入れます。次に、片方の下顎骨をステージ上のガラスプレートに戻し、舌がガラスに触れて12時の位置を指すように配置します。交差した2つの鉗子の片側をはさみ動作で使用して、下顎骨の下3分の1を取り外して廃棄します。次に、下顎骨を利き手の方向に90度回転させ、はさみの動きで下顎骨の上部を切り抜きます。次に、余分な組織を剥がし、組織の下のSMGを露出させます。両側の舌の付け根の近くに両側に1つずつあります。一方の鉗子を使用して舌の隣の組織を押さえ、もう一方のペアを使用してSMGを舌から遠ざけます。この時点で、大きい方のSMGと隣接する舌下腺は、周囲の間葉と無傷で培養することができます。それ以外の場合は、次のセクションに進みます。まず、少なくとも5つの唾液腺植物を、200マイクロリットルのHBSSとディスペーストを塗布したガラス底の50ミリメートルマイクロウェルディッシュに入れます。腺を摂氏37度で15分間インキュベートします。次に、200マイクロリットルのピペットチップを使用して、すぐに腺を乱さずにディスペースト溶液を慎重にアスプします。200マイクロリットルのD-M-E-M-F 12培地をBSAで追加します ディスパスを中和するには、細い先端を持つ5番の鉗子のペアを使用して、緩んだ間葉組織を舌下腺から大きくなめの顎芽と管から穏やかに分離します。上皮をできるだけ無傷のままにしておくように注意してください。次に、D-M-E-M-F 12 BSAメディアのチップに滑らかなエッジプリを備えた高品質の200マイクロリットルピペットチップを選択します。次に、メカイフリーの上皮原始を、200マイクロリットルのD-M-E-M-F 12と連鎖球菌ペンを含む新しい直径50ミリメートルのマイクロウェルディッシュに静かにピペットで取り出します。最後に、間葉片を含む皿で、非間葉系組織を捨てます。これには、舌下腺と剥離した顎下腺の芽が含まれます。残りの間葉を取っておきます。.まず、塩化セシウム勾配精製ウイルス調製物から、最適な力価濃度で200マイクロリットルの感染培地を調製します。次に、解剖顕微鏡で、5つの上皮原始を含む皿から培地を取り出します。次に、200マイクロリットルの感染培地をすばやく追加し、鉗子を使用して原液を常に濡らし続けます。上皮原始を互いに離して、それらがくっつくのを防ぎ、皿の底に落ち着くようにします。次に、原液をウイルス培地中で室温で1時間インキュベートし、乱れを最小限に抑えます。15分ごとに基本をチェックして、それらが互いに接近していないことを確認します。必要に応じて、鉗子でそれらを分離します。解剖顕微鏡下でのインキュベーション後、ウイルス培地を静かに取り出し、原液を乱さないように注意しながら適切に廃棄します。次に、200マイクロリットルの新鮮なメディアでルーディメントを2回洗います。これらの洗浄は、上皮に付着している弱いウイルスを除去し、間葉の感染を防ぐために重要です。200マイクロリットルの培地で培地で2回目の洗浄を行った後、再び2%マトリゲルを続け、原始的なものが一緒に凝集しないように注意します。次に、Prewitt 200 μLピペットチップを使用して室温で20分間ルーディメントをインキュベートし、ガラス底マイクロウェルプレートの200マイクロリットル培養培地に浮かんでいるノッチ付きメンブレンフィルターの上に5つのルーディメントを置きます。ピペットチップまたは鉗子を使用して、フィルターの上部から余分な媒体を取り除き、フィルターが沈まないようにし、上皮原始が所定の位置に留まるようにします。次に、各上皮原始の周りの3つから4つの腺から派生したすべてのマイネピースを配置し、それらが直接接触していることを確認します 3つから4つの腺からの間葉と単一のウイルス感染した上皮原始との組み換えは、再結合した顎下唾液腺の成長と発達にとって重要です。次に、間葉が原始から離れないように、腺を囲む余分な媒体を取り除きます。次に、概説された手順を使用して、加湿インキュベーターで再結合腺を2〜3日間インキュベートします。無傷の胚性SMGを単離し、DYSペース治療後、上皮原始を周囲の間葉から除去しました。明視野イメージングにより、組換えされたSMGは分岐形態形成を継続していることが明らかになりました。ex vivoで培養した場合。示された時間については、処理後48時間成長した腺をA GFPと組み合わせました。アデノウイルスは上皮でのみGFPを発現しました。私たちはSMGを組み合わせて固定し、染色し、画像化しました。72時間後、いくつかのマーカーを使用しました。核はdpiによって染色され、本明細書における赤で書かれた上皮マーカーecoは、周囲の間葉から上皮細胞集団を画定する。上皮細胞は、上皮の周辺に局在するシアン中の基底膜タンパク質ペランのアデノウイルスGFP検出により、組換え腺の基底膜の少なくとも部分的な再構成が存在することを示しています。DPIの共焦点投影(青)とベータ3チューブリン(赤)は、組換え培養において、間葉内の副交感神経節がURI伸長を受け、腺を神経支配することを示しています。このビデオを見れば、胚性顎下唾液腺培養技術についてよく理解することができます。上皮から間葉を除去すること、および間葉とウイルス感染した上皮との再結合は、どちらも困難なステップであることが証明される可能性があります。しかしながら、この手順は、上皮細胞に適用されるウイルスコンストラクトを用いてタンパク質発現を変化させることを可能にする。アデノウイルス感染のみが、構成的に活性または優勢な陰性タンパク質を上皮に追加して、特定のタンパク質の操作が胚性顎下唾液腺の成長と発達をどのように変化させるかを決定することを可能にします。

genetic-modification-recombination-salivary-gland-organ

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

マウス唾液腺由来の幹細胞の単離のため最適化されたプロトコルが記述されています。方法は、酵素と機械的な消化を採用しており、幹細胞の特性を持つ細胞を含むsalispheresの分離を可能にします。...

マウス唾液腺幹細胞の単離

このビデオでは、唾液腺に由来する三次元スフェロイドである唾液球を培養するためのプロトコルを紹介しています。唾液球は、罹患したヒト患者の唾液腺からの唾液産生に対する頭頸部がんの影響を評価するためにさらに使用できます。...

唾液腺組織からの唾液球の培養:ヒト唾液腺由来上皮細胞からの唾液球の開発方法

涙腺（LG）は、ビジョンと眼の健康を維持するために必要な涙の水性成分を生成し、分岐器官である。ここでは、LG電子の開発に関与するシグナル伝達経路を解読するネズミLG郭清およびex vivo培養技術を説明しています。...

マウス涙腺を操作する

ピロカルピン刺激次を介してマウス唾液機能的アセスメント分別放射線

3次元 organotypic 培養を用いて唾液腺の形態や機能マーカーを可視化することで、放射線後の組織損傷のメカニズムについて、新たな知見を得ることができます。ここで説明されているのは、電離放射線への曝露の前に、培養、照射、染色、50 ~ 90 μ m...

顎下および耳下腺唾液腺からの Organotypic 培養の放射線治療は生体内特性をモデル化する

一次ヒト唾液腺由来上皮細胞を分離・培養する方法を提示する.これらの細胞は唾液上皮起源の遺伝子発現パターンを示し、エンゲルブレス・ホルム・スウォーム腫瘍細胞に由来する基塩膜マトリックス上の唾液圏として、または処理された培養皿上の単層として増殖することができる。...

唾液圏または単層としての体外増殖のためのヒト唾液腺からの唾液上皮細胞の単離

唾液腺は、遺伝子治療の組織標的部位として、特に遺伝子導入によるワクチン接種の領域において提案されている。逆行性の耳下腺注入を利用した非ヒト霊長類モデルにおける遺伝子導入を実証する。...

ベクター化遺伝子導入のための非ヒト霊長類におけるステンセンダクトによる逆行性耳下腺注入

免疫蛍光イメージングは、複雑で時間依存の生物学的プロセスを1つのスナップショットで観察する能力に制約があります。この研究は、精密にカットされたマウスの顎下腺スライスで実施されたライブイメージングアプローチの概要を説明します。このアプローチにより、ホメオスタシス中の細胞間相互作用や再生・修復の過程をリアルタイムで観察することができます。...

唾液腺における細胞間相互作用の Ex Vivo Live Cell Imaging(英語)

蚊の中腸と唾液腺には、熱帯熱マラリア原虫やデング熱ウイルスのようなベクトルの病原体のためのキーエントリーと出口ポイントです。このビデオでは、ネッタイシマカ蚊から中腸と唾液腺を除去するために解剖のテクニックを示します。...

AEから中腸と唾液腺の解剖。ネッタイシマカ蚊

PDMSデバイスの作製と表面改質

学ぶマウス胎生期顎下唾液腺の上皮細胞をアデノウイルスベクターで遺伝子改変する方法。上皮と間葉の分離・再結合技術を用いて、分枝形態形成におけるタンパク質機能を解析できます。

唾液腺器官培養の遺伝子改変と再結合

さらに動画を探す