Name: 移植筋前駆細胞を標的とする分子イメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-27T08:54:00.000+00:00
Duration: 9 min 24 s
Description: 学ぶ筋芽細胞移植の評価法。トリプルフュージョンリポーター遺伝子とバイオルミネセンスイメージングを用いて、C2C12細胞をマウス後肢に移植し、非侵襲的に細胞の生存と統合を追跡する手法です。

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著者はfluc/mrfp/sr39tkレポーター遺伝子の贈り物をSanjivガンビールに感謝したいと思います。この作品は、カナダの幹細胞ネットワーク（SCN）とジェシーの旅財団によって資金を供給された。

1。 C2C12筋芽細胞の維持と伝播<ol><li>プレート75cm 2フラスコでC2C12筋芽細胞および10％の最終濃度になるようにウシ胎児血清（FBS）を添加した高グルコースダルベッコ改変イーグル血清（HG-DMEM）中で細胞を維持。これは筋芽細胞の人口を激減させるように細胞がいつでもコンフルエントになることを許可しないようにしてください。媒体は、隔日に変更する必要があります注：常に暖かい培地を37℃にして、使用する前に水浴のC。 </li><li>筋芽細胞が約80％コンフルエントになったときに、新しいフラスコに継代細胞。培地を吸引します。トリプシン阻害血清を含む培地のすべてのトレースを削除する4〜5ミリリットルハンクス平衡塩溶液（HBSS）で細胞を洗浄します。簡単に言えば2〜3ミリリットル0.25％（w / v）のフラスコから付着筋芽細胞を解離するトリプシン-EDTA溶液で細胞層を洗浄してください。 5分間37℃でインキュベーター内でトリプシンと場所フラスコを吸引します。 </li><li>このインキュベーション中にるには、HG-DMEM/10％FBS培地9mlの持つ新しいフラスコを準備します。トリプシン処理後、培地内のすべてのセルのコレクションを確実にするために細胞やピペット4-5回に完全培地10 mlを加える。新しいフラスコに細胞懸濁液1 mlを加え、37℃、5％CO 2中でインキュベート℃、 </li></ol> 2。 C2C12細胞トランスフェクション<ol><li>一度細胞がコンフルエントに50％に達しており、Invitrogenからメーカーの指示に従ってトランスフェクション。簡単に言えば、4.5ミリリットルのOPTI-MEM培地で90μlのリポフェクタミン2000試薬を組み合わせています。別のチューブに、4.5ミリリットルのOPTI-MEMで36μgのCMV-trifusionレポーター遺伝子DNAを兼ね備えています。各チューブは5分を組み合わせて、待つことにフリックします。穏やかに混合し、正確に30分間室温でインキュベートし、両方のチューブの内容を結合注：第二のフラスコものみリポフェクタミンおよびOPTI-MEMはネガティブコントロールとして機能するように、受信トランスフェクトしていないセルに対して設定する必要があります。 </li><li> C2C12細胞から培地を除去し、15.5を追加新鮮HG-DMEM/10％FBS培地1ml。 20mlの総容積を持って来るために、トランスフェクション培地を追加します。 </li><li>細胞は37℃で少なくとも20時間一晩トランスフェクトすることができ℃、 </li><li>翌日、トランスフェクション培地を吸引し、10ミリリットルHG-DMEM/10％FBSを追加します。 </li><li>倒立蛍光顕微鏡下で細胞を見る。明視野および赤色蛍光画像（; 607分の584 nmのMRFP元/全角TRITCフィルターキューブを使用）の両方をキャプチャします。トランスフェクション効率を生成するために、ビューの複数のフィールドの明るいフィールドの下で見た細胞の総数で割った蛍光下で観察し、RFPを発現している細胞の数をカウントします。 </li></ol> 3。細胞生存/ MTTアッセイの評価<ol><li> 24ウェルプレートでのトランスフェクションは、プレートの各ウェルに1×10 5 C2C12細胞の前に一日。細胞はHG-DMEM/10％FBS中500μlの体積に播種する必要があります。 </li><li>翌日、前述のように一晩トランスフェ芽。トランスフェクションreagenについては、メーカーの提案に従う24ウェルプレート用のトンボリューム。コントロールとしてのみリポフェクタミン（DNAなし）で井戸のセットをインキュベートする。その適切なトランスフェクションが行われたことを確認するために蛍光で細胞を見る。 </li><li> HG-DMEM/10％FBS中5 mg / mlのチアゾリルブルーテトラゾリウムブロミド（MTT）を用いてトランスフェクション培地でインキュベート筋芽細胞を取り除きます。トランスフェクトされた井戸の8にD-ルシフェリンを追加し、4時間37℃でインキュベートする。 </li><li>井戸からメディアを取り出します。各ウェルに180μlのイソプロパノールを添加することにより、青色ホルマザン結晶を可溶化する。 15分間37℃で振とうする。 </li><li> 96ウェルプレートに沈殿物、ピペット溶液の回避および575 nmの吸光度を読み取る。 </li></ol> 4。移植のための筋芽細胞の調製<ol><li> 、培地を除去HBSSで筋芽細胞を洗浄し、1.1で説明したように、細胞をトリプシン処理。 </li><li>完全培地4mlに細胞を再懸濁する。 </li><li>血球計を使用して、10 6芽細胞を含むボリュームを生成する細胞を数える。ピペットVOL滅菌済みの1.5mlマイクロチューブに梅。 〜10％のトランスフェクション効率と、これらの値は、100,000ルシフェラーゼ発現細胞は、移植後のGE ExploreOptixスキャナで検出可能であることを示している。 </li><li> 10 6 C2C12細胞を含む、15μlの最終噴射量を達成する。必要であれば、1分間2,000 rpmでマイクロチューブを遠心します。ピペットで注意深く上清を吸引します。 HG-DMEMにFBSを欠く15μlの中に細胞を再懸濁する。 </li></ol> 5。細胞移植<ol><li>イソフルラン2パーセント/ 2％O 2でマウスを麻酔。背側後肢エリアから毛をむしる。イソフルラン1.5パーセント/ 2％のO 2で麻酔を維持します。 </li><li> C2C12筋芽細胞をよく懸濁していることを確認します。腹臥位でマウスを使って、後肢を拡張し、30°の角度で腓腹筋の外側頭に直接細胞を注入するためにインスリン注射器を使用しています。右後肢とトランスフェクトしていない筋芽細胞のintにトランスフェクトされた筋芽細胞を注入対側（左）後肢をO。 </li><li>ベースライン生物発光スキャンを実行：すばやく腹臥位でマウスを敷設、光スキャナのステージにマウスを移す。麻酔ラインをフックアップ。マウスを確保するために麻酔をかけたまま、二人目は、スキャナの他の場所の動物の間に麻酔ラインをフックするために存在している必要があります。 </li><li>注射の面積が表示されるように優しく後肢を拡張します。そのような医療用テープなど優しい接着剤のある場所でテープ後肢。 </li><li>これが検出されたバックグラウンド信号を増加させるように、チャンバーを閉じて、光がスキャナ内部にアクセスすることはできませんことを確認してください。スキャナは、生物発光イメージングについては、製造元の指示に含まれるパラメータに設定する必要があります。具体的には、 &quot;全くレーザー&quot;が選択されていないことを確認してください。 </li><li>羽をむしられた領域の周囲に関心領域（ROI）を描き、スキャンを開始します。 </li></ol> 6。 Fluc基質の注入、mdxマウスにD-ルシフェリン、 &lt;OL&gt; <li>マウスに麻酔を腹腔内にある間にホタルルシフェラーゼ基質D-ルシフェリン（40 mg / mlの原液から、製造元の指示に従って構成される）の150 mg / kgを注入します。 </li><li>マウスを回復して、次のスキャンのためにマウスを準備する前に15分の取り込み期間を可能にします。 </li></ol> 7。 DMDのマウスモデルにインプラントを次のターゲットリュック発現のMPCへのBLI <ol><li> 5.1で説明されるように摂取期間の後、再びマウスを麻酔。 </li><li>光学スキャナに戻ってマウスを転送し、バックグラウンドでのスキャンと同様に別の生物発光スキャンを実行します。 </li><li> 20分取込期間が最大信号強度を提供する必要がありますが、その後のスキャンを実行することができる。 </li><li>画像収集が完了すると、施設内動物倫理委員会及びアニマル·ケアに関するカナダ評議会（CCAC）によって設定されたガイドラインに沿ってマウスを生け贄に捧げる。私はすぐに後肢の筋肉や場所を隔離パラフィン包埋のために修正するためにnを10％ホルマリン。筋芽細胞の筋肉内注射を確認するルシフェラーゼの免疫組織化学染色を行います。 </li></ol>

<ol><li>Emery, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+muscular+dystrophies%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">The muscular dystrophies.</a> Lancet. 359, 687-695 (2002).</li>
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</ol>

著者らは、開示することは何もない。

そこで本研究では、移植後の非侵襲的に標的筋芽細胞/ MPCのための高速かつ信頼性の高い分子イメージング、レポーター遺伝子アプローチを説明してきました。この研究はbioluminescenseイメージング（BLI）を介して移植されたMPCの短期的な局在を示しているが、細胞が標的とされる方法は 、実際には、簡単に安定して発現していることが細胞の移植による細胞移植の長期的評価に適用することができますレポーター遺伝子。この目的を達成するために、当社グループは、統一されたレポーター遺伝子を抱いているトランスジェニックマウス系統を生成しています。レポーター遺伝子を発現する細胞のみがBLIを使って可視化のための光子を生成するためにD-ルシフェリンを酸化させる。 D-ルシフェリンの酸化は、遺伝子発現に依存しているので、これは、非侵襲的に画像生存可能な移植細胞へと強力な技術です。 FACSにより単離し、これらのトランスジェニックマウスと衛星細胞（SCS）から収穫された筋肉組織は確かtargeteすることができますmdxマウスに移植後、D。さらに、我々はさらに、DMDの研究分野（原稿提出）に、本明細書で...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（オプション） </td></tr><tr><td> C2C12筋芽細胞</td><td> ATCC </td><td></td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコ改変イーグル培地</td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 12800-017 </td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎仔血清</td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 12483020 </td><td></td></tr><tr><td> 0.25％トリプシン-EDTA </td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 25200から72 </td><td></td></tr><tr><td>ハンクス平衡塩溶液</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> H6648 </td><td></td></tr><tr><td>リポフェクタミン2000 </td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 11668-019 </td><td></td></tr><tr><td>ニコンエクリプスTE2000-5 </td><td>ニコンインスツル株式会社</td><td></td><td></td></tr><tr><td> Xenolight D-ルシフェリン</td><td>パーキンエルマー</td><td> 122796 </td><td> PBS中40 mg / mlの</td></tr></tbody></table>

移植筋前駆細胞を標的とする分子イメージング

Molecular Imaging to Target Transplanted Muscle Progenitor Cells

デュシェンヌ型筋ジストロフィー（DMD）は3500男子 ​​で1に影響を及ぼす重篤な遺伝性神経筋疾患であり、進行性筋変性1,2によって特徴づけられる。患者では、損傷した筋線維を再生させる常駐筋衛星細胞の能力（SCS）は4ますます効率が悪くなる。したがって、健常者の筋前駆細胞（MPCは）/筋芽細胞の移植は、DMDに対する有望な治療アプローチである。幹細胞療法の使用への主要な制限は、しかし、移植細胞の長期的なモニタリングのため、その有効性を評価するための信頼性の高い画像処理技術の欠如である。ここでは、筋芽細胞移植の成功を評価するための非侵襲、リアルタイムのアプローチについて説明します。この方法は、（ホタルルシフェラーゼ[fluc]、単量体赤色蛍光タンパク質[MRFP]とSR39チミジンキナーゼ[sr39tk]）expre遺伝子から成る統一融合レポーター遺伝子を利用していますssionは異なる撮像モダリティ9、10に結像させることができる。陽電子放射断層撮影（PET）、単光子放出コンピュータ断層撮影（SPECT）、磁気共鳴イメージング（MRI）、光学イメージング、および高周波3次元超音波を含むイメージングモダリティ、様々なユニークな長所、短所がそれぞれ、利用可能になりました11。生物発光イメージング（BLI）の研究では、例えば、比較的低コスト、高スループットであるという利点を持っています。これは、本研究では、我々はマウスに移植後の生存能力のあるC2C12筋芽細胞の短期のローカリゼーションのための融合遺伝子と生物発光イメージング（BLI）内に含まれるホタルルシフェラーゼ（fluc）レポーター遺伝子配列を利用して、このような理由からですDMDのモデル12-14（X染色体[MDX]マウスの筋ジストロフィー）。重要なのは、BLIは、標識されたMPCは、移植後の体内動態を検討するための手段を提供してくれますし、tで繰り返し細胞を追跡するために有用であろうIMEとは、次の移行。私たちのレポーター遺伝子アプローチはさらに、私たちは、単一の生体内で複数の画像診断法をマージすることができ、断層の性質、空間分解能と大きな動物とヒト10,11にスケールアップする能力を考えると、PETは、私たちが将来の仕事の基礎を形成します前臨床モデルへと臨床応用への細胞内で開発された方法の迅速な翻訳を促進することが示唆された。

50から60パーセントコンフルエント時に、C2C12筋芽細胞を一過上記融合レポーター遺伝子はホタルルシフェラーゼ成る構築物でトランスフェクトした[fluc]、単量体の赤色蛍光タンパク質[MRFP]とSR39チミジンキナーゼ[sr39tk]（ 図1A）。トランスフェクション効率を構築する私たちのレポーターにMRFPシーケンスを利用して、蛍光顕微鏡（ 図1B、C）を介して算出した。細胞の生存性は、BLIの基板、D-ルシフェリン（ 図1D）で標識することにより影響を受けなかった。トランスフェクション後、約100,000 MRFP発現筋芽細胞をmdxマウスの腓腹筋（以前、原稿が提出され決定される）に筋肉内に移植した。10万トランスフェクトしていない細胞が同様に反対側の制御として後肢に移植した。直ちに細胞移植後、マウスは150 mg / kgのD-lucifeを腹腔内（IP）注射したRIN。 〜20分の取り込み期間後、マウスは小動物光学スキャナ（生きた動物の生物発光と蛍光の...

筋芽細胞移植の成功を評価するための非侵襲的な手段が記載されている。この方法は、その発現が異なる撮像モダリティで撮影することができる遺伝子を統合的融合レポーター遺伝子を利用しています。ここでは、利用すること<em&gt; fluc</em生物発光イメージングを介して細胞を標的とする&gt;レポーター遺伝子配列。

Duchenne muscular dystrophy (DMD) is a severe genetic neuromuscular disorder that affects 1 in 3,500 boys, and is characterized by progressive muscle ...

この手順の全体的な目的は、レポーター遺伝子アプローチと生物発光イメージングを使用して、筋芽細胞移植の成功を非侵襲的に評価することです。これは、まず、CMVプロモーターの制御下でf Luke、MRFP、およびSR three 90 tkを発現するtri融合報告遺伝子を不死化C two C 12筋芽細胞株に導入することによって達成されます。2番目のステップは、ポーター遺伝子を発現する筋芽細胞の数を定量化することです。本研究では、蛍光顕微鏡上でMRFP発現細胞をカウントすることにより、トランスフェクション効率を算出します。次に、15マイクロリットル以下の体積の5つの人工細胞を、ジストロフィーMDXマウスの後肢に筋肉内に移植する。UNTトランスフェクションされた細胞をコントロールとして対側後肢に移植し、ベースラインスキャンを行います。最終工程は、腹腔内投与を行い、ルークが報告した遺伝子基質ルシファーを約20分間の取り込み期間後に注入し、移植された細胞の画像を取得するために第2の生物発光スキャンを行うことである。最終的に、ルシファーの取り込みは、報告遺伝子を発現しない対照細胞では検出可能な生物発光を示さないf Luke発現細胞に特異的に観察されます。この方法は、移植後の細胞の移動や移植後の細胞生存など、軽度の損失移転技術の分野における重要な質問に答えるのに役立つ可能性があります。この技術の意味は、デュシェンヌ型筋ジストロフィーなどの筋肉疾患の治療にまで及びます。なぜなら、移植後、移植後、生着領域を経時的に評価し、治療の成功または失敗を評価することができます。手順を実証するのは、大学院生のケリー腸peと、私たちの研究室の研究技術者であるレベッカ・マクグです、申し訳ありませんが、この細胞株の標準的な手順に従って、10%のウシ胎児血清を含む高グルコースdcos修飾ワシ培地でC 2つのC 12筋芽細胞を培養します。細胞が80%以上コンフルエントになることは、筋細胞の個体数を枯渇させるため、許可しないでください。トランスフェクション用の細胞を最初に調製するには、HBSSリンス細胞層をトリプシンで短時間覆って、ストックフラスコから細胞を回収します。次に、トリプシンを迅速に吸引し、フラスコを組織培養インキュベーターに5分間置きます。インキュベーション中に、それぞれ9ミリリットルの培地を含む2つのT75フラスコを準備します。インキュベーション時間が完了したら、フラスコに10ミリリットルの培地を加え、フラスコの底で培地を4〜5回すすぎ、すべての細胞が確実に収集されるようにします。次に、各T75フラスコに、ストックT75フラスコの細胞懸濁液の10分の1を播種します。この手順を初めて試みるときは、MTTアッセイを実施して、細胞の生存と分化に対する細胞標識の影響、および移植前に人工筋芽細胞の生存率を評価します。細胞が50%のコンフルエンスに達したら、メーカーの指示に従って、Lipofectamine 2000を使用して、36マイクログラムのCMV Tri融合レポーター遺伝子を含む1つのT 75フラスコを4.5ミリリットルの最適容量にトランスフェクションします。さらに、リポ2000のみを使用し、DNAをネガティブコントロールとして最適にしない第2のT 75フラスコの模擬トランスフェクションを実施する。翌日、細胞を摂氏37度で少なくとも20時間トランスフェクションし、トランスフェクション培地を吸引し、倒立蛍光顕微鏡を使用して適切な量の培地と交換します。明視野と赤色の両方の蛍光画像を撮影して、トランスフェクション効率を計算します。トランスフェクションされた筋芽細胞をトリプシンで回収し、4ミリリットルの完全培地で細胞を懸濁させた後、ヘモサイトメーターを使用して細胞数をカウントします。細胞の100、000の検出可能なLucifer配列を生じるべきである約10%のtransfection効率の生殖不能な1.5ミリリットルのマイクロ管に6つの細胞にピペット10を分ける移植の後で細胞を表現する、最終的な注入容積は15マイクロリットルであるべきである。チューブ内の容量がこれより大きい場合は、マイクロチューブを2000RPMで1分間遠心分離し、仰臥位をアセートしてから、最大15マイクロリットルの成長量で曲げます。FBSが不足している中程度 2%イソフッ素を使用してマウスに麻酔を誘発した後、麻酔維持のために1.5%イソフッ素に切り替えます。処置中は、マウスを腹臥位に置き、背側後肢の部分から毛を抜き取ります。C 2 つの C 12 筋芽細胞が十分に懸濁されていることを確認してから、細胞懸濁液をインスリン注射器にロードします。細胞を胃筋の外側頭部に30度の角度で直接注入します。トランスフェクションされた筋芽球を右後肢に注入した後、反対側の後肢にUNTトランスフェクションされた筋芽球で手順を繰り返します。ベースライン生物発光スキャンを実行します。1人でマウスを光学スキャナーのステージにすばやく移し、マウスを腹臥位に置きます。2人目の人が同時に麻酔ラインをつなぎ、マウスが麻酔をかけられたままであることを確認します。後肢をそっと伸ばし、医療用テープを使用して手足を所定の位置に保持し、注射の両方の領域が見えるようにします。チャンバーを閉じ、スキャナーの内部に光が入らないようにすると、検出されるバックグラウンド信号が増加します。スキャナーは、バイオルミネッセンスイメージングの製造元の指示書に含まれるパラメーターに設定する必要があります。摘み取られた注入領域の周囲に関心領域を描画し、スキャンを開始して、マウスが麻酔されている間にベースライン画像を取得します。腹腔内。ホタルルシフェラーゼ基質ルシファーのキログラムあたり150ミリグラムを注入します。マウスを清潔なケージに入れ、麻酔から回復させます。次のスキャンのためにマウスを準備する前に、15分間の取り込み時間を確保します。15分間の視聴期間の後。マウスに麻酔をかけ、以前と同様にスキャナーに移します。バックグラウンドスキャンと同じ方法で、発光スキャンで2回目を実行します。合計20分間の取り込み時間で最大の信号強度が得られるはずですが、必要に応じてその後のスキャンを実行することもできます。この回路図は、CMV Tri Fusion レポーターの構造を示しています。左のパネルは、融合レポータープラスミドをトランスフェクトしたC 2つのC 12筋芽細胞の明視野像を示し、右のパネルは、ここで見られる蛍光画像と同じ領域を示しています。筋芽細胞が注入された摘み取られた後肢領域を囲むように、関心領域が描かれます。バックグラウンドスキャンでは生物発光は検出されません。ルシフェリアンの注射後23分で、筋芽細胞を発現するルシフェラーゼが注入された右後肢から明確な信号が検出されます。見られるように、切除されていない筋芽球を注入した反対側の後肢には生物発光は検出されません。ここでは、ホタルルシフェラーゼ抗体を用いた免疫組織化学により、トランスフェクションされたC two C 12細胞の筋肉内移植が確認されます。この手順を試行する際には、無菌組織培養技術とその開発後の適切な動物取り扱い方法を使用することを忘れないでください。この技術は、筋肉疾患の分野の研究者が、疾患の前臨床小動物モデルで細胞療法の有効性を現在探求する道を開きました。その後、臨床現場での患者さんのこのビデオを見た後、細胞を移植する方法や、バイオルミネッセンスイメージングを使用して人工的に移植された筋芽細胞を非侵襲的に局在させる方法についてよく理解できるはずです。

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静止衛星細胞の純粋な集団の単離および培養、筋肉幹細胞集団は、筋肉幹細胞生物学および再生、ならびに筋ジストロフィーおよび他の変性疾患における治療のための幹細胞移植の理解に不可欠である。...

筋衛星細胞の単離、培養、および移植

このプロトコルは、ガンマシンチグラフィーを使用して細胞の生存と組織分布を決定するために、馬の間葉系幹細胞の放射性標識と馬の腱損傷への移植を説明しています。...

馬腱でテクネチウム-99m標識骨髄間葉系幹細胞のin vivoイメージングと追跡中

ここで生物発光を用いて、x 線、および陽電子放出断層撮影/コンピューター断層撮影の画像どのように阻止 mTOR の活性を研究する異種移植モデルにおける骨髄にしみ込んで骨髄腫腫瘍に影響を与えます。骨髄にしみ込んで骨髄腫腫瘍生体内ターゲット療法の抗骨髄腫効果の生理学的、非侵襲的関連性とマルチ...

NOG マウスの多発性骨髄腫, 骨髄異種のマルチ モーダルな発光とポジトロニック放出断層レントゲン写真撮影/計算断層イメージング

我々は、マウス脳におけるルシフェラーゼ緑色蛍光タンパク質(GFP)を発現する二重レポーターベクターで形質導入されたヒト神経前駆細胞の実質内移植について説明する。移植後、ルシフェラーゼシグナルは、蛍光顕微鏡を用いて脳切片で同定された in vivo 生物発光およびGFP発現移植細胞を用いて繰り返し測定される。...

マウス脳におけるヒト神経前駆細胞の脳内移植と 生体 内生物発光追跡

ここで紹介するプロトコールは、シングルセルマスサイトメトリーによる筋幹細胞および前駆細胞の同定と高次元解析、およびFACSによるそれらの精製を可能にし、それらの機能の詳細な研究を可能にします。このアプローチは、疾患モデルにおける再生動態の研究や、薬理学的介入の有効性の検証に適用することができます。...

高次元シングルセルマスサイトメトリーによる急性骨格筋損傷時のin vivoにおける筋原性前駆細胞の同定と解析

細胞療法は、前駆細胞を使用して損傷した組織を修復し、肺機能を改善することにより、肺線維症に対する有望な介入を提供します。イメージングは細胞統合の追跡において極めて重要な役割を果たすため、ここでは、マウスモデルにおける肺線維症の細胞療法の磁性粒子イメージングガイド下 in vivo...

磁性粒子イメージングを用いた肺線維症のための移植された遠位肺上皮前駆細胞の画像誘導 In vivo 追跡

学ぶ筋芽細胞移植の評価法。トリプルフュージョンリポーター遺伝子とバイオルミネセンスイメージングを用いて、C2C12細胞をマウス後肢に移植し、非侵襲的に細胞の生存と統合を追跡する手法です。

移植筋前駆細胞を標的とする分子イメージング

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