Name: ボツリヌス神経毒素阻害剤の同定のためのハイコンテントイメージングアッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 10 s
Description: 学ぶボツリヌス神経毒素阻害剤の同定法。マウス運動ニューロンを用いたハイコンテントイメージングアッセイでSNAP 25切断を評価し、神経伝達物質放出を回復する小分子スクリーニング技術を習得する。

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資金は、Joint Science and Technology Office – Chemical Biological Defense (JSTO-CBD) Defense Threat Reduction Agency (DTRA) のスポンサープロジェクト番号CCAR# CB3675および国立衛生研究所 (1 R21 AI101387-01 and 5 U01AI082051-05) によって提供されました。

プレート2万差別化マウスES細胞（MES）/ 96ウェルポリ-D-リジンコーティングしたプレートに5〜7日間運動ニューロン分化培地中で維持する。 のBoNT / A 1.化合物投与と中毒 CDC / NIHガイドラインの遵守を維持するために、BSL2エンクロージャに以下のすべての作業を実行します。 <ol><li>ポリプロピレン製96ウェルプレートに100％DMSO中の各ライブラリー化合物の10mMストック溶液を調製する。所望のスクリーニング濃度よりも10倍大きい中間希釈プレートを調製するために10mMのストックを使用する。 96ウェルプレートに10 mMストックを分配することによって100μMの中間板を準備し、培養培地を使用して、100μMのに希釈する。セル11上のメディアの90μlの上の化合物の10μlを分注する。 10μMの最終濃度で化合物を試験し、DMSOの最終的な割合が、0.5％を超えないように保証する。 </li><li>すべてのスタッドを実行バイオセーフティーレベル2の条件で、生細胞と活性毒素を利用IES。 12チャネルのマ​​ニュアルピペットを用いて、新鮮な最終分化培地を80μlの96ウェルプレートで古いメディアを交換してください。吸引を行い、外気にメディアを使用せず細胞の曝露を避けるために、行単位でのステップを分注する。 </li><li>吸引（2回）によって混合した12チャンネルピペットを使用してソースプレートからの10倍の化合物10μlを添加することにより、従来の毒素の適用化合物で細胞を前処理する。各96ウェルプレートの場合は、のような高信号と低信号のコントロールを提供するために培地で希釈し、10倍のDMSOで6ウエルの2つの列を扱う。のBoNT処理なしの列は、完全長SNAP-25（高信号制御）の最高レベルを示す。低信号制御などの（任意の化合物を含まない）を単独のBoNTを持つ他の列を扱います。 SNAP-25およびBACS抗体とその検出（ 図2ののBoNT切断の効率を観察するために低コントロールを使用して、）。 </li><li>細胞培養インキュベーター中で37℃で30分間、化合物および6％CO 2で細胞をインキュベートする。 </li><li>リン酸中1mg / mlの市販の供給源からのボツリヌス神経毒Aを調製ターミナル分化培地で希釈して、最終的な10倍ワーキングストックに緩衝食塩水（PBS）。 </li><li>マルチチャンネルピ ​​ペット（ 図2）を用いた治療と低信号のコントロールのために指定ウェルに10倍のBoNT /株式10μlのを追加して中毒を開始します。培地単独で高いコントロールとして指定された井戸を扱う。 </li><li>少なくとも20分間、水中の0.825パーセントの次亜塩素酸溶液中に浸漬することにより、研究中のBoNT / Aと接触するすべてのプラスチックの構造および他の消耗品を除染。バイオセーフティキャビネット内のすべてのプロシージャを実行し、そのようなマイクロケム液として5％の洗剤除菌洗浄剤を用いた実験の前と後の両方の作業領域を除染。 </li><li>毒素の使用とincubを示すためにはっきりとプレートにラベルを付ける細胞培養インキュベーター中でCO 2、37℃で4時間および6％を1nM / LのBoNT / Aで処理されたプレートを食べた。毒素は、実験室で使用されていることを同僚に知らせるために、適切な看板を表示する。 </li><li>ストップBONT /メタノール固定によるタンパク質分解切断。マルチチャンネルピペットで各ウェルから毒素および化合物を含む培地を取り出し、10％の漂白剤溶液中に捨てる。各ウェルに直接氷冷メタノール（100μl）を追加します。 </li><li>固定が起こることを可能にするために室温（RT）で15分間、プレートをインキュベートする。 </li><li>固定後、無事に1プロトコルバイオセーフティーレベル（中和考えられる）廃棄された試薬を処理し、それに応じて捨てる。 </li><li>メタノールを捨て、細胞を洗浄し、免疫染色前にそれらを再水和するために100μlのPBSを使用しています。二つの追加PBS洗浄を行います。 </li><li>最終洗浄後、分析まで4℃でマイクロプレート接着フィルムや店舗を有するウェル、シールプレート内のPBSを残す。 4℃FOで保存プレート数日rを。 </li></ol> 2.免疫染色免疫染色手順は、反復的な試薬の分注/吸引サイクルと重要な内陸地震と変動の潜在的な導入につながる可能性が大規模なプレート洗浄を含む労働集約型、多段階の操作です。半自動化されたアプローチは、実験者の時間を節約するアッセイのスループットを増加させ、免疫染色のばらつきを最小限にするために適用される。 <ol><li>このプロトコルのモジュラーデッキ上の異なる場所（材料および機器を参照）に実験器具を移動するために、ロボットグリッパアームで最大250μLまでと一体化ボリュームを転送できる96ウェルヘッドを備えた自動化されたワークステーションを使用してください。 <ol><li>モジュラーデッキは実験器具の異なるタイプをホストするように設計されており、一度に最大11項目をサポートすることができる。自動マイクロプレートハンドラーは保持するために、デュアルマガジンマイクロプレートスタッカーを備えているとサイクル当たり50プレートまで操作する。 </li><li>自動化されたワークステーションは、無菌性と安全性を提供するために、実験室の自動化機器用に設計されたクラスIIバイオセーフティキャビネットの内側に位置しています。自動免疫染色のために、デッキは、 図3に示すように、必要に応じて試薬のアクセスを可能にするために配置され、人間の介入なしている。 </li></ol></li><li>液体取扱い業務のために必要に応じてデッキにプレート雑誌や転送に固定された細胞を含む予圧プレート。ダウン10μlに井戸からPBSを吸引する250μlの先端装備96ピペットヘッドを使用してください。透過化緩衝液（0.1％のTriton-X 100）を用いて細胞内標的に結合する抗体を容易にするために、細胞膜を透過性にする。室温（RT）で15分間のインキュベーションのためにマイクロプレートスタッカーの第保管マガジンにプレートを返す前に、各ウェルに透過化緩衝液（100μl）を分配する。 </li><li>透過化バッファとPEを削除PBS（2回）とrformプレート洗浄は、先にステップ1.13に記載されて。 </li><li>最後の洗浄工程の後、PBS緩衝液を除去し、すべてにPBS中1％ウマ血清および0.1％Tween 20を含むブロッキング緩衝液100μlを分注RTで1時間インキュベートし、プレートマガジンに戻す前に、マイクロプレート。 </li><li> （材料および機器を参照）神経細胞の検出のための完全長SNAP-25マウスモノクローナル抗IIIチューブリン抗体の検出のために、ウサギポリクローナル抗マウスBACS抗体：免疫染色のための2つの一次抗体を使用する。インキュベーションの60分後、ブロッキングバッファー削除し、すべてのプレートにブロッキングバッファー中BACS抗体の4ug / mlの50μlの及びIIIチューブリン0.5μgの/ mlに分注する。 </li><li> RTで1時間インキュベートした一次抗体を除去し、0.05％のTween（PBST）を含むPBS100μlで3回洗浄する。 </li><li>アレクサFでタグ-IIIチューブリンおよび抗ウサギIgGを可視化するアレクサフルオロ647標識抗マウスIgGを使用BACS抗体を可視化するluor 568。ブロッキング緩衝液中2μg/ mlの希釈として両方の抗体を調製し、各ウェルに混合液50μlを分注する。 NOTE：免疫染色のために選択された二次抗体は、ハイコンテントイメージャの検出器内の異なるチャネルを使用して異なる波長で、その発せられた蛍光の検出を可能にするために、異なる蛍光体で標識されている。 </li><li>室温で1時間インキュベートする。二次抗体を吸引し、PBST100μlで3回洗浄する。 </li><li>最終洗浄後、核を検出するためのDNAを染色するためにHoechst色素（32μM）を含む100μlのPBSを追加。 </li><li>光退色から蛍光団を保護するために、光透過性フィルムでプレートをシール。プレートを4で保存することができる&#160;信号の有意な損失なしに数週間のために、Cを°。 </li></ol> 3.イメージング注：ハイコンテントイメージングのSysを使用して画像取得を実行TEM（材料および装置を参照してください）​​。 <ol><li>ハイコンテントイメージャ定義の仕様： <ol><li>セレクトプレートタイプ、レイアウト、フィールドの数、目的：グライナーU澄んだ、20X水をそれぞれ96ウェルフォーマット、16、。 </li><li>セレクトチャンネル：核励起EX：チャンネル4としては405nm。細胞質EX：チャネル2と644 nmの。抗原特異的抗体チャンネルEX：561チャンネル3としてnmおよび各レーザのセットアップ励起パワー、2エクスポージャーとしてセットアップ実験、644 nmで1励起、405 nmおよび561 nmにおける2励起による露光2の露光1。ビン2としてビニングを選択します。 </li><li> SNAP-25チャネルおよび最小強度のための低対照ウェルのような最大強度の露出を最適化するために、高いコントロールウェルを使用する。 </li><li>各チャネルの強度が飽和レベル（2,000〜2,500相対単位）の約半分になるように、露出を調整する。 </li><li>デルタ補正スクリプトを使用して、細胞マスクチャネルに最適なZ平面を識別する。 Fiを提供して参照してください。免疫染色およびイメージング後の結果のためのグレ5。画像解析ソフトが常駐しているサーバへデータをエクスポートします。 </li></ol></li></ol> 4.画像解析（図6） 注：次の手順は、コロンバスソフトウェアアルゴリズムの適用を説明します。 <ol><li>プライマリ·オブジェクト（核）セグメントに適切なアルゴリズムを選択します。必要に応じて、背景閾値及びコントラストパラメータを調整する。コロンブス·ソフトウェアは、4核検出法を提供する。視覚的に（Mが選択されているF igure 6aの方法で）セグメント化された核を検査することによって、正確にメソッドそのセグメント核を選択します。 </li><li>必要に応じて、セグメントに神経突起を神経突起アルゴリズム（CSIRO神経突起分析2）を選択して背景を削除するには、バックグラウンドのしきい値とコントラストのパラメータを調整する。神経突起を検出するために使用されるパラメータについて、図6bを参照してください。 </li><li>神経突起領域（神経突起セグメント）浅を識別マスク（ 図6c）として、β-IIIチューブリンチャネル（アレクサ小麦粉640）の-3画素拡張を使用して、セカンダリ·オブジェクト（神経突起）に編。 </li><li>神経突起領域およびβ-IIIチューブリンチャネル（ 図6d＆6E）用の信号チャネル（SNAP-25、（アレクサ小麦粉568）の強度を計算します。 </li><li>そのような神経突起の長さが、SNAP-25の平均強度は、β-IIIチューブリン、核数、神経突起セグメント番号等 （ 図6F）などの輸出用必要なパラメータを選択します。 </li><li>画像取得のためのハイコンテントイメージャへのロボットとロードを使用して、プレートスタッカからの転送プレート。 </li></ol> 5.データ分析： 設計されたアッセイの頑健性を評価するために、プレートベースの実験から、以下のパラメータを計算する。 <ol><li>バックグラウンド信号（B）から（S）：S / B = Hの信号制御の平均強度）/ロー信号制御の強度を意味する</li> &lt;液体ハンドリングの変動を決定するために、CV =（標準偏差（SD）のサンプル/平均値）×100（％）：LI&gt;シグナルとバックグラウンドの変動係数（CV）は、（特定の信号の均一性を測定する）試薬など</li><li>ノイズに対する信号：Sは、= - 低コントロールの/ SDを（信号の強さを意味する低い信号制御の強度を意味する） <ol><li> 1 96ウェルプレートの半分、残りの半分のモック中毒の中毒とのZ &#39;係数を計算。 Z &#39;= 1 - 3 *（低信号制御の高信号制御+ SDのSD）/（高信号制御の平均 - 低信号制御の平均を）。スクリーニングデータの更なる分析のために、プレート間および実験の異なる日の間の比較を可能にするためにプレート毎に主原料いくつかのパラメータを正規化する。 </li></ol></li><li> ％胸の谷間= 100％*（MEA：全長SNAP-25特異的抗体によって検出された（BACS）に関連する信号の減少を反映して切断のパーセント、高い信号制御のn個の強度 - 試料の強度）/高い信号制御の強度を意味する。 </li><li>切断の阻害のパーセント：％阻害= 100％*（サンプルの強度 - 低信号制御の平均強度）/（高信号制御の強度を意味する - 低信号制御の強度を意味する）。 </li></ol>

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クリシュナ・P・コタは、この原稿で使用される機器とソフトウェアを製造しているマサチューセッツ州ウォルサムのPerkin Elmer Inc.の従業員です。この出版物の内容は、必ずしも米国保健社会福祉省、米国国防総省、米国陸軍省、または著者と提携する機関や企業の見解や方針を反映するものではありません。

ボツリヌス神経毒とその兵器の相対的な容易さの高い効力は、米国疾病管理予防センターによるカテゴリーA（最優先）biothreat剤としてのそれらの分類をもたらした。残念ながら、FDAは毒素が運動ニューロンによって内在された後のBoNT中毒に対抗するための治療薬を承認していないがあります。のBoNT中毒から神経細胞の回復を促進する任意のドラッガブルメカニズムが、この生物学的脅威に対する武力サービスと公共の両方を保護するために潜在的な治療法の開発に向けてつながる可能性があります。この記事では、我々はそのようなBoNT / Aのような致死性の毒素の阻害剤をスクリーニングするための詳細なHCIアッセイプロトコールを提示する。このアッセイの珍しい側面は、実験室の安全性を確保する毒素や厳格なバイオセーフティプロトコルの実装の綿密なハンドリングである。活性毒素の使用中に細心の注意を払わなければならない。のBoNT /メタノール固定し、マイクロプレートを経由して不活性化decontaminati10％の漂白剤および5％の表面ワイプを持つにマイクロプレートはバイオセーフティーレベル2実験室環境での下流評価のためのバイオセーフティキャビネットから取り外すこと...

細菌ボツリヌス菌はボツリヌス神経毒、男1に知られている最も強力な生物毒素の1を生成します。 7明確なのBoNT血清型（のBoNT / AG）があります。のBoNT / A-ガルによりSNARE複雑なタンパク質分解2,3に神経筋接合部で麻痺を誘発する。 SNAREタンパク質分解は、神経伝達物質小胞の膜融合を防止し、したがって、ブロックはエキソサイトーシス4神経伝達物質。特定のSNAREターゲットは中毒過程に関与する特定のBoNT血清型に依存します。のBoNT / AおよびBoNT / E切断するSNAP-25のBoNT / Cを切断SNAP-25およびシンタキシン5両方のに対し。また、小胞関連膜タンパク質（VAMP）と呼ばれる残りの血清型クリーブシナプトブレビンは（。BoNT / Aには、それが天然に存在するボツリヌス中毒の割合が高いために責任があるとして、アッセイ開発のために選択された小分子の作用6。開発の最長持続時間を有した。 BoNT / A型に対する治療薬はのための主要な目標である創薬プログラムと活性部位のタンパク質分解阻害剤7、8-10を識別するために、従来のターゲットベースの方法を利用している。しかし、複数の血清型と、露光後の有効性に対する広域スペクトル活性を有する活性部位阻害剤の作成が困難な可能性が高いであろう。 したがって、我々は、のBoNT媒介運動ニューロン中毒をブロックすることができる小分子を同定するための機能的なエンドポイントとしてのBoNT SNAP-25の切断を使用して、革新的な、表現型の創薬アプローチを実施しています。 SNAP-25の分解はin vivoでの麻痺や致死性の予測となるようにSNAP-25は、神経伝達物質放出のために必要とされる。例えば、細胞ベースのスクリーニングは、毒素の不活化または標的細胞内部で毒素経路の阻害に関与する細胞因子の新たな調節因子の発見につながる可能性があります。表現型アッセイの開発における重要な因子は、生理学的に関連する生物学的モデルを選択することである。 WEなどは、SNAP-25 11- 13の発現を含む一次運動ニューロンの免疫学的性質を再現するマウス胚性幹（ES）細胞由来の運動ニューロンを、説明してきた。重要なことに、これらのセルラーシステムは、BoNT / A中毒に非常に敏感であり、毒素11,12の濃度を増加さに応じて、SNAP-25の用量依存的切断を実証している。分化した運動ニューロンはまた、ハイスループットプレートベースの分析のために十分であり、細胞アッセイのアレイの設計を可能にした量で産生される。 表現型のアッセイは、BoNT /マウスの運動ニューロン培養物の中毒の間内因的​​に発現完全長SNAP-25の切断を定量化するために二つの別個の抗体を利用する免疫蛍光法である。唯一の完全長SNAP-25を認識し、カルボキシル末端のBoNT / A切断感受性（BACS）抗体は、BoNT / Aの評価は、SNAP-25のタンパク質分解を仲介できますマウスの運動ニューロンにおける発現10。 HCIアッセイの概略図を図1に示されている。

<table><tbody><tr><td>ボツリヌス神経毒A&nbsp;</td><td>Metabiologics</td><td>NA</td><td>カタログ番号なし</td></tr><tr><td>マイクロタイタープレート</td><td>Greiner&nbsp;</td><td>655946</td><td>Poly-D-Lysine 96-well plates</td></tr><tr><td>BACs antibody</td><td>Lampire Biological</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Microchem</td><td>National&nbsp;</td><td>0255</td><td></td></tr><tr><td>メタノール</td><td>Thermo Scientific</td><td>A412-20</td><td></td></tr><tr><td>ホルムアルデヒド</td><td>Thermo Scientific</td><td>28908</td><td></td></tr><tr><td>馬血清</td><td>Invitrogen</td><td>16050</td><td></td></tr><tr><td>PE ヤヌス MDT ミニ自動ワークステーション</td><td>パーキン・エルマー</td><td>AJMDT01</td><td></td></tr><tr><td>オペラ</td><td>パーキン・エルマー</td><td>OP-QEHS-01</td><td></td></tr><tr><td>トリトン X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>9002-93-1</td><td></td></tr><tr><td>BIII チューブリン抗体</td><td>R&Dシステム</td><td>ズBAM1195</td><td></td></tr><tr><td>トゥイーン20</td><td>シグマ</td><td>P1379-1L</td><td></td></tr><tr><td>ヘキスト33342dye&nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>3570</td><td></td></tr><tr><td>抗マウスIgG</td><td>Invitrogen</td><td>A21236</td><td></td></tr><tr><td>抗ウサギIgG</td><td>Invitrogen</td><td>A10042</td><td></td></tr><tr><td>コロンバス画像解析ソフトウェア</td><td>Perkin Elmer</td><td>Ver 2.4</td><td></td></tr><tr><td>Spotfire</td><td>Perkin Elmer</td><td>Ver 5.5</td><td></td></tr><tr><td>Clorox bleach</td><td>Fisher Scientific</td><td>18-861-284</td><td></td></tr><tr><td>プレートスタック</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

ボツリヌス神経毒素阻害剤の同定のためのハイコンテントイメージングアッセイ

A High Content Imaging Assay for Identification of Botulinum Neurotoxin Inhibitors

Synaptosomal-associated protein-25 (SNAP-25) は、シナプス神経伝達物質の放出に不可欠な可溶性NSF付着タンパク質受容体(SNARE)複合体の構成要素です。 ボツリヌス神経毒血清型A(BoNT/A)は、SNARE複合体のSNAP-25成分を切断することにより、神経伝達物質のエキソサイトーシスをブロックする亜鉛メタロプロテアーゼです。現在、運動ニューロンによる毒素の内在化後のBoNT/A中毒を治療するための認可された薬はありません。 BoNT/A中毒に対抗するための効果的な治療法の開発は、低分子ライブラリーをスクリーニングするための堅牢なハイスループットアッセイが不足していることが一因であり、限られていました。ここでは、BoNT/A阻害剤の同定に有用なハイコンテントイメージング(HCI)アッセイについて説明します。 初期の最適化作業は、複数の独立した実験にわたるプレート間結果の再現性を向上させることに焦点を当てていました。 免疫染色、画像取得、および画像解析の自動化により、アッセイの一貫性が向上し、ばらつきが最小限に抑えられると同時に、マウス運動ニューロンシステムにおける実験化合物のマルチパラメーター評価が可能になることがわかりました。

ハイとローのコントロールからのデータは、3標準偏差（図7A）を超える2中央値の差が2の異なる集団を作成しました。スクリーニングプロセスの目標は、サンプル集団（ 図7B（i））を内正規分布を仮定し、近い正の対照集団に対する値とサンプル集団内の化合物を見出すことである。平均の3標準偏差を超えているデータ点は、ノイズ統計的に異なると考えられ、アクティブな「ヒット」（ 図7（b）（ii）は 、赤のボックス）として分類される。 「ヒット」として分類される化合物は、今後の研究でさらに確認試験に供される。 図7（b）（ii）は、遮蔽板の代表的なサブセットからのサンプルの集団における陽性ヒットの検出を示す。より低い値を有していた全ての4点（中央値のサンプル - 3 *サンプルのSD）はに属していた4つの異なるスクリーニングプレート内の異なる位置にスポットした同じ阻害剤。 図5に示すように、この阻害剤は、のBoNT / Aに対してロバストSNAP-25の保護を示した。 <p c...

ボツリヌス神経毒は、カテゴリーAの生物脅威物質の中で最も強力な毒素の一つですが、曝露後の治療薬は利用できません。ハイコンテントイメージングアプローチは、この毒素の主要な標的である生物学的に関連する運動ニューロンを用いたマルチパラメータースクリーニングを可能にするため、新規阻害剤を同定するための強力な方法論です。

Synaptosomal-associated protein-25 (SNAP-25) is a component of the soluble NSF attachment protein receptor (SNARE) complex that is essential for synaptic ...

次の実験の全体的な目標は、IES ボツリヌス菌がその基質 SNAP 25 の切断を媒介する表現型スクリーニング アッセイを開発することです 正常な神経シグナル伝達中に毒素機能を阻害する小分子を特定することを目的としています。活動電位により、SNAP 25はシナプス小胞を運動ニューロン終末の原形質膜に結合させ、神経伝達物質を放出します。しかし、ボツリヌス神経毒が存在すると、エンドサイトーシスによって取り込まれ、シナプスブトンで放出され、SNAP25を切断するため、神経伝達物質の放出が妨げられ、麻痺を引き起こします。このアッセイは、ボツリヌス毒素活性を阻害し、ボツリヌス毒素の存在下でのSNAP 25の切断を防ぎ、神経筋接合部での神経伝達物質の放出を回復させることができる分子を特定します。マウス運動ニューロンを用いて実施されたハイコンテントイメージングアッセイは、SNAP 25の保存を実証するために使用され、ボツリヌス神経毒のメタロプロテアーゼ活性を阻害する可能性のある小分子の同定をもたらします。A.この技術や無細胞生化学アッセイなどの既存の方法の主な利点は、スクリーニング化合物と毒素で処理された運動ニューロンを含む単一のウェルから、複数の表現型エンドポイントを同時に捕捉できることです。この方法は、細胞ベースの活性や細胞毒性の定量化など、ライブラリスクリーニング中に直面する主要な質問に答えるのに役立ちます。この技術の意味は、金属プロテアーゼ活性をブロックすることによって直接的に作用するか、毒素取り込み処理の防止を通じて間接的に作用する阻害剤、またはおそらく他のメカニズムを同定できるため、ボツリヌス中毒の治療にまで及びます。一般に、この分析法を初めて使用する人は、SNAP 25 の検出に必要な免疫染色条件の最適化が困難な場合があるため、苦労するでしょう。この方法の視覚的なデモンストレーションは、周囲のモーターがかなりデリケートであるため、免疫染色ステップを完成させることが難しいため、非常に重要です。スタンディングと洗浄のステップは、ダウンストリーム分析に必要な高品質の画像を作成するための鍵です。生細胞と活性毒素を利用するすべての研究は、バイオセーフティレベル2の条件下で行われ、これらの実験の前後にマイクロケム溶液などの5%洗剤消毒剤クリーナーで作業領域を除染します。テキストプロトコールに記載されているようにマウス胚性幹細胞を運動ニューロンに分化させた後、12チャンネルの手動ピペットを使用して古い培地を交換します。96ウェルプレートには、80マイクロリットルの新鮮な末端分化培地が、細胞の周囲空気への曝露を最小限に抑えるために、吸引と分注のステップを一列ずつ行います。次に、12チャンネルピペットを使用して、ソースプレートから10 xの試験化合物を10マイクロリットル加え、次に2回吸引してxを混合します。6 ウェルの 2 カラムを 10 X-D-M-S-O で培地で希釈して処理し、ハイシグナルおよびローシグナルのコントロールとして使用します。細胞を化合物と7°Cおよび6%二酸化炭素で30分間インキュベートします。次に、PBS中のボツリヌス神経毒Aを終末分化培地で希釈し、マルチチャンネルピペットを使用して最終的な10倍ワーキングストックを生成し、10マイクロリットルの10 xボツリヌス神経毒Aストックを治療用に指定されたウェルと低シグナル制御ウェルに加えます。高制御として指定されたウェルを培地のみで処理し、ボツリヌス神経毒と接触するすべてのプラスチックウェアやその他の使い捨て品を除染します。0.825%次亜塩素酸溶液に少なくとも20分間浸漬します。毒素の使用を示すためにプレートに明確にラベルを付け、インキュベーション後、プレートを摂氏37度と二酸化炭素6%で4時間インキュベートします。マルチチャンネルピペットを使用して、毒素と化合物を含む培地を各ウェルから取り出し、10%漂白剤溶液に廃棄します。次に、100マイクロリットルの氷冷メタノールを各ウェルに直接追加して、ボツリヌス神経毒を止めます。タンパク質分解性切断。次に、プレートを室温で15分間インキュベートし、固定します。固定後、廃棄された中和試薬をバイオセーフティレベル1のプロトコルで取り扱い、それに応じて廃棄してください。メタノールを廃棄した後、免疫染色の前に細胞を100マイクロリットルのPBSで3回洗浄して再水和します。クラス2のバイオセーフティキャビネットで行われる免疫染色は、必要に応じて人間の介入なしに試薬にアクセスできるように配置された自動ワークステーションを使用して行われます。固定セルを含むプレートをPLATEマガジンにロードし、液体処理操作の必要に応じてデッキに移します。250マイクロリットルのチップが取り付けられた96ピペットヘッドを使用して、ワークステーションはウェルからPBSを10マイクロリットルまで吸引します。ワークステーションは、1%馬の血清と0.1%tween 20のPBSを含む100マイクロリットルのブロッキングバッファーをすべてのマイクロプレートに分配します。その後、プレートをプレートマガジンに戻し、室温で1時間のインキュベーションを行います。インキュベーション後、ブロッキングバッファーを取り出し、ブロッキングバッファー中のBS抗体1ミリリットルあたり4マイクログラムとベータ3チューブリン1ミリリットルあたり0.5マイクログラムの50マイクロリットルをすべてのプレートに分注します。プレートを室温で1時間インキュベートした後、一次抗体を取り出し、100マイクロリットルのPBSTで3回洗浄します。テキストプロトコルに記載されているように、異なるフルオロ4で標識された二次抗体を希釈して、ミリリットルあたり2マイクログラムを調製します。50マイクロリットルの混合物を各ウェルに分注し、室温で1時間インキュベートしますインキュベーション後、二次抗体を吸引し、100マイクロリットルのPBSTで3回洗浄します。次に、32マイクロモルのフックを含む100マイクロリットルのPBSで、核検出のためにDNAを染色するための色素を添加します。最後に、プレートを光不透過性フィルムでシールして、フルオロフォーを光退色から保護します。プレートは、信号の大幅な損失なしに、摂氏4度で数週間保存することができます。画像取り込みシステムで、プレートタイプをグラインダーuに指定し、レイアウトを96にクリアします。フィールドの数を 16 に、目標を 20 x 水として適切に書式設定します。次に、405ナノメートルの原子核励起のチャネルを選択します。640ナノメートルの細胞質励起用のチャンネル4を選択します。561ナノメートルの抗原特異的抗体チャネル励起にはチャネル2を選択 チャネル3を選択します。次に、各レーザーの励起出力を設定します。この実験では、640ナノメートルで1対1の励起と、405ナノメートルと561ナノメートルで2対2の励起の2つの露光を設定します。ビン 2 として [ベニング] を選択します。SNAP 25チャネルとして最大強度での露出最適化には高制御ウェルを使用し、最小強度には低制御ウェルを使用します。各チャンネルの強度が彩度レベルの約半分、または約2000〜2, 500の相対単位になるように露出を調整します。次に、デルタ補正スクリプトを使用して、セルマスクチャネル上の最適なZ平面を特定します。画像解析ソフトウェアで、神経突起アルゴリズムを選択して神経突起をセグメント化します。β 3 チューブリン チャネルのマイナス 3 ピクセル拡大をマスクとして使用して、二次オブジェクトである神経突起に基づいて神経突起領域を特定します。神経突起領域とベータ3チューブリンチャネルのシグナルチャネルの強度を計算します。神経突起の長さ、SNAP 25ベータ3の平均強度、チューブリン核数、神経突起セグメント番号など、エクスポートに必要なパラメータを選択します。セットアップが完了しました。ロボットを使用してプレートスタッカーからプレートを移し、ハイコンテントイメージャーにロードして画像取得を開始します。ここに示されているのは、コントロールウェルから計算された切断率の箱ひげ図分析です。ピンクは、メディアだけで毒素のないウェルである高信号制御を表しています。これらの井戸では、劈開はほとんど観察されません。青は、毒素だけでサンプル化合物を含まないウェルである低シグナル制御を表しています。これらの井戸は顕著な劈開を記録しました。これらの制御値のヒストグラム分布は、2つの制御母集団間の距離を示しています。スクリーニングプロセスの目標は、サンプル集団内で陽性対照集団に近い値を持つ化合物を見つけることです。ここでは、ボツリヌス神経毒Aも含む192の化合物処理サンプルの分布を緑色で示しています。これらの井戸のほとんどで、顕著な劈開が見られました。ただし、対照と比較して有意な切断を示さなかった統計的に有意な外れ値がいくつかありました。制御値は、このヒストグラム分布のピンクと青のバーで再び示されます。緑色のバーは、サンプル値と制御値の重なりを示しています。ヒットと見なされるサンプル値は、サンプル母集団の中央値から 3 標準偏差より小さい分岐パーセント値を持つ外れ値から選択されました。これらの4つのヒットは、高シグナル制御と同様の値を持ち、SNAP25切断をブロックするシナノンの阻害剤である既知のボツリヌス神経毒である同じ化合物を表しています。この阻害剤は、毒素の両方を有する井戸と同様にボツリヌス神経毒Aに対する堅牢なSNAP25防御を示し、この阻害剤は毒素を含まない井戸と同様に振る舞い、毒素を有する井戸と同様に振る舞ったが、阻害剤なしで習得されると習得した。この手法は、適切に実行すれば4〜6時間で実行できます。この手順を試行する際には、エッセイの統計的パフォーマンスを計算し、この手順に従って個々のスクリーニングプレートごとに合格決定を有効にするために、複数のコントロールを含めることを忘れないでください。生化学的タンパク質分解アッセイなどの他の方法を実行して、Botの直接的または間接的な阻害剤としてのスクリーニングヒットの評価などの追加の質問に答えることができます。このビデオをご覧いただければ、免疫染色によるSNAP 25の定量を主要評価項目とする表現型スクリーニングアッセイを自動化する方法についてご理解いただけたと思います。ボツリヌス神経毒の取り扱いは非常に危険であり、個人用保護具の使用やボチンの適切な除染および廃棄手順の実施などの予防措置が講じられることを忘れないでください。この手順を実行するときは、常に神経毒を服用する必要があります。

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神経科学

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ボツリヌス神経毒素阻害剤の同定のためのハイコンテントイメージングアッセイ

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