Name: マイクロコンピュータ断層撮影とヌードマウスへのヒト脂肪注入の生存率の評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 13 s
Description: 学ぶマイクロCTを用いた脂肪移植片の定量的評価法。ヌードマウス頭皮へのヒト脂肪注入モデルで、週次スキャンにより移植片の体積保持率を非侵襲的に測定し、組織学的解析と組み合わせて移植生存率を評価する手法です。

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この研究は、ACSフランクリンH·マーティン学部研究フェローシップ、HageyによってサポートされていましたMTLDCWに小児再生医療のためのHagey研究所、オーク財団によってサポートされ、国立衛生研究所、助成NIHR21DE019274、NIHR01DE019434、NIHR01DE021683、およびNIHU01HL099776た小児再生医療のための研究所、スタンフォード大学小児保健研究所学部奨学生賞。マイクロCTは、in vivoイメージングにおけるイノベーションのためのスタンフォードセンターで行われた。

注：脂肪取得するための実験的なプロトコルと患者同意書を見直し、スタンフォード大学施設内倫理委員会（プロトコル＃2188）によって承認された。すべての動物の手順は、プロトコル番号9999の下で実験動物管理上のスタンフォードの紛争処理パネル（APLAC）により承認された。全ての実験は、動物の安全性と人道的なケアのガイドラインを厳守して実施した。 1.脂肪収穫<ol><li>コールマン手順17-19を使用して、選択科目脂肪吸引を受けた健康女性患者の腹部、脇腹、および/ ​​または大腿部領域からヒト脂肪組織を得る。 </li><li>移植のための脂肪吸引物を処理するために、脂肪は30分間沈降させることで始める。 </li><li>脂肪吸引は通常、下部に上部の油、途中で脂肪、血液と、3層に落ち着く。トップ油層と下部血液層を吸引し、廃棄する。 </li><li>さらに残りのtumescを削除するにはENT流体又は細胞残屑、350×gで4℃で5分間の脂肪を遠心分離し、下部の水層を吸引する。 </li><li> 20％の配信エラーを考慮して、移植のために必要とされる脂肪の量を計算し、および50mlのコニカル（複数可）への脂肪の所望の体積を転送する。グラフトのために必要な脂肪のマイクロリットルを得るために、研究ではマウスの数によって400を掛けます。 </li><li>この時点で、もし実行するセルがLipotransfer 20,21、氷上でグラフト化脂肪の代わりにボリュームをアシスト。その後ズクら22によって記載されている標準的な技術を使用して残りの脂肪から脂肪由来間質細胞（ASCは）を収穫。 </li></ol> 2.脂肪グラフト<ol><li>女性、実験的研究のためのホモ接合CD-1ヌードマウスを得る。生後12週 - 8との間にマウスを選択してください。 </li><li>約10分間、2 L /分で2.5％イソフルラン/酸素混合物を用いてノックダウンボックスに麻酔、場所マウスを誘導した。 ISOFをお勧めしますのでご注意くださいlurane用量は、マウス系統に応じて変化する。 </li><li>マウスの呼吸速度が鈍化している場合には、つま先のピンチで十分な鎮静を確認する。マウスの両眼に獣医潤滑眼軟膏を適用します。 </li><li>マウスはつま先のピンチに反応して尻込みしていない場合、これは麻酔の十分な平面性を確認する。 1-2 L /分で、2.5％イソフルラン/酸素混合物を提供するノーズコーンにマウスの鼻を置きます。マウスはつま先のピンチから退避した場合、5分後にノックダウンボックスと再テストに戻ります。 </li><li>マウスの下で無菌のフィールドを設定して、70％のエタノール溶液に続いて2.5％ポビドンヨードで頭皮を殺菌。さらに2回繰り返します。 </li><li>マウスの上に手術用ドレープを置き、滅菌野を維持するように注意してください。滅菌器具、手袋、PPEは、常に使用されるべきである。 </li><li>移植すべき脂肪ボリュームは以前に氷上に置いた場合は、脂肪が最初の配信の前にRTに調整することができます。 </li><li> 1ミリリットルと1ミリリットルルアーロックシリンジをバックロード脂肪の。 </li><li>注射器の最後に14 G、長さ8cm脂肪グラフトカニューレを接続します。 </li><li>脂肪の200〜400μLまでシリンジプランジャーを押すことにより内閣総理システムは、注射器に残ります。シリンジプランジャーを押しながらカニューレが完全に遠位カニューレの穴を出た脂肪を観察することにより、脂肪で満たされていることを確認します。 </li><li>細かい鉗子を使用して、頭蓋骨の尾-最も側面を覆う正中線で背部皮膚を持ち上げる。細かいハサミを用いて皮膚にカット1.5ミリメートルを行います。 </li><li>後でグラフトが実行された後に一緒にエッジ傷をもたらすために使用されるカットの真ん中を通る単一6-0ナイロン縫合糸を配置します。縫合糸を接続しないでください。 </li><li>皮膚切開を通してカニューレを挿入し、覆っている皮膚への結合組織の添付ファイルを解放するために頭蓋骨の上に扇形のパターンで前後にカニューレを渡すことで、頭蓋骨の上皮下ポケットを作成します。 </li><li>ポケットが作成されたら、cと位置付け直接頭蓋骨の上にマウスの正中線でannula先端がちょうど目の間に引かれたラインの背後にあるべきポケットの吻側 - ほとんどの側面に位置するまで。 （ 図1A） </li><li>ゆっくりと戻ってカニューレを引きながら、プランジャーを前進、逆行性脂肪を注入する。鉗子を使用して、一緒に創傷の縁を持って、ポケットから漏れる任意の脂肪を維持するためにそれらを持ち上げる。 </li><li>以前に最初の結び目が皮膚に軽くあることを確認しながら、配置された縫合糸を結ぶ。さらに3つの正方形の結び目をし、3ミリメートルの尾を持つ縫合糸を切る。 （ 図1B） </li><li>可視化とポケットが過充填しないとポケットを覆う皮膚は緊張しないとされているマニュアル触診で確認してください。ポケットは過充填されている場合は、縫合糸をカットし、ポケットの中からすべての脂肪を取り除く。リン酸緩衝生理食塩水（PBS）pH7.4でポケットを洗い流し、脂肪の少ない量を再注入する。 </li><li>からマウスを外しますそれだけで清潔なケージにその背面や側面にnesthesiaと場所。定期的な呼吸、正常な動き、出血がないこと、および痛みや苦痛の徴候のために動物を監視します。動物が苦痛にある場合は最大48時間、ブプレノルフィン0.1 mg / kgを皮下ごとに6時間を管理します。 </li><li>動物はそれから離れる前に、胸骨の横臥位を維持するために十分に目覚めていることを確認してください。それは完全に回復するまで他の動物とのケージに動物を置かないでください。 </li><li> 4時間後、動物が食べると、移動を飲み、そして普通に呼吸することが可能であることを確認しないと、手術部位からの出血ないがあること。動物飼育施設に戻す。 </li></ol> 3.マイクロCT <ol><li>次にスキャン術後3日目ベースラインボリュームのマウス、および術後週2,4,6および8でスキャンを繰り返す。 </li><li>各時点でマウスを画像化する際にSで前に概説したように、前および術後の鎮静および動物ケアガイドラインに従っTEPS 2.2から2.4と2.17から2.19。 </li><li> 100μm以下、より良いの復興ボクセルサイズとマイクロCTスキャナでスキャンを実行します。 </li><li> 80のkVpのピークX線キロボルトと450μAのアノード電流では、各マウスに9分のスキャン中に約5 centiGyの配給用量を投与。これらの値は、スキャンプロトコルに依存して変動しますのでご注意ください。 </li><li>最初のスキャンを実行する前に、空気、水、および骨強度を区別するイメージングファントムをマイクロCTを較正する。 </li><li> 2上にマウスと下部に2と腹の位置にスキャナに4匹のマウスを置きます。走査床は容易にノーズコーンとしてマウス本体および10mlのシリンジを保持するために60ミリリットル注射器を用いて構成することができる。23 </li><li>毎分1〜2 Lで2.5％イソフルラン/酸素混合物で麻酔下でマウスを維持します。 </li><li>スカウト画像で確認して、第一頸椎の鼻から、と頭蓋骨の上からSKUのベースにマウスの全体の頭蓋骨、LL、画像化されます。 </li></ol> 4.マイクロCT解析<ol><li>ピクセル強度のしきい値を使用してボクセルを選択することによって、関心領域（ROIの）の作成を可能にするマイクロCTイメージング解析ソフトウェアを使用して再構成画像を開きます。ソフトウェアは、3Dの作成が選択されたボクセルの補間により表面、およびボリューム分析を可能にする。 </li><li> 2次元（2D）冠状、アキシャル、サジタルビューに再構成されたCT画像をロードすることによって開始します。 （ 図2A） </li><li>ガイドとして軸方向のスライスを使用して、脂肪移植片の一番左の側面に対応している矢状スライスに移動します。脂肪移植片に対応するすべてのボクセルをキャプチャするピクセル強度の上限と下限のしきい値を選択したが、それは、周囲の組織および骨を除外します。 （ 図2B） </li><li>以前に定義されたピクセル強度のしきい値を使用して脂肪移植片に対応して、サジタルビューでROIを定義します。 R移植片の一番右の側面に到達するまでナビゲートし、この手順をすべての第五の矢状スライスをEPEAT。 （ 図2C） </li><li>シングル、組み合わせた3D ROIにすべての2D ROIのから選択されたボクセルを補間する。 （ 図2D） </li><li>ソフトウェアによって計算レコードのROIボリューム。 </li><li>最終的な脂肪グラフト量を可視化するための3D等値面をレンダリングします。 （ 図2E） </li><li>その後の分析では、ピクセル強度の最大値と最小しきい値ベースライン分析のために用いたものと同じに保つようにしてください。 </li></ol> 5.ファット·ハーベスト<ol><li>マウスは8週24,25時点がスキャンされた後、以前の手順2.2から2.4と2.17から2.19に上記のように、マウスを麻酔。 </li><li> APLACのガイドラインに続いて、彼らの脊柱を分離することにより、マウスを安楽死させる。 </li><li>術野にマウスを置きます。腱はさみを使って、慎重にポケットを開き、Tを解剖彼は脂肪移植片から皮膚や結合組織の添付ファイルの上にある。 </li><li>この時点で、移植片の抽出を助けるために覆う背部皮膚のパッチを切除するのに役立ち得る。 （ 図3A） </li><li>軽くピンセットで移植片に牽引力を維持し、ハサミでリリースする必要が緊張の連続する点を可視化するために左右に移植片を回す。 </li><li>移植で撮影した結合組織を最小限に抑えるために切除する際に、可能な限り移植片の近くに滞在。 （ 図3B） </li><li>移植片を切除した後、少なくとも0.01グラムに正確である風袋を量っ規模で​​質量を測定。 </li><li>測定された質量値を使用して脂肪移植片の体積と変換率などの人間の脂肪の平均密度（0.9グラム/ ml）を計算します。 </li><li>マイクロCTを使用して得られたものと脂肪移植の計算されたボリュームを比較してください。 </li><li>必要に応じて脂肪移植片は、組織学またはさらなる分析のために処理することができる。 </li></ol>

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著者の誰も、報告すべき競合する金銭的利益を持っていません。

この時点までは、ほとんどの研究者は脂肪移植片の長期生存を定量化するために、非イメージングモダリティに依存してきたが、これらの方法は、単一の測定試験動物及び収率の犠牲を必要とする。3,10-12我々の研究で表すマウスモデルにおける脂肪移植片生存の目的、リアルタイム定量を可能にする改良された分析方法。 このプロセスにおける重要な、これは、インタクトな免疫系を有するマウスを使用する場合に生じる移植片拒絶を防止するように十分に免疫不全マウスは、研究のために使用されることを保証される。脂肪完全性を維持することは、グラフトの収穫、加工、および配置の段階で非常に重要です。伝統的に受け入れられる基準に準拠して、移植のための脂肪を吸引補助脂肪吸引（SAL）によって得られるべきである。配置中に、脂肪のない高速な0.5ミリリットル/秒より安定した流速で注入する必要があります。 14ゲージのカニューレはiのグラフト化のために好ましいナマウスが、より大きな直径のカニューレは脂肪への損傷なしに使用することができる。彼らは増加によるせん断応力による破壊に脂肪を原因と小さなカニューレと針が-...

軟部組織の欠陥は、外傷、腫瘍切除、老化、先天異常など、さまざまな原因から生じます。これらは患者を衰弱させる可能性があり、再建外科医にとって最も一般的でありながら困難な問題の1つを表しています。軟部組織の欠損に対処するには、局所皮弁や遊離皮弁、コラーゲン注射、合成フィラーなど、多くの方法が存在します。4-8 しかし、1893年にノイバーによって初めて文書化されて以来、自家脂肪移動は、すぐに利用可能で、採取が容易で安全に、自然に互換性があるため、軟部組織の欠損の修復のゴールドスタンダードであり続けています。1、2
>jove_content<これらの利点にもかかわらず、自家脂肪移植片は予測不可能で変動する生存率に悩まされており、保持率は時間の経過とともに10〜80%の範囲です。1-3,9 この予想される体積と対称性の損失を説明するために、外科医は軟部組織の欠陥を埋めるときに過度に修正したり、複数のフォローアップ手順を実行したりする必要があります。
血管新生が不十分な移植床が、この組織吸収の一因となっています。さらに、移植片の生存率を比較するためのベンチマーク分析方法がないことも、報告された結果の不一致の一因となっている可能性があります。グラフトの量を正確に測定する方法があれば、保持率を評価する際の測定誤差を減らすことができます。これにより、研究者はグラフトの生存に影響を与える原因因子をより正確に特定できるようになります。多くの実験動物モデルがヒト脂肪移植片の生存率の定量的および定性的評価を促進してきましたが、ほとんどは組織学的および生化学的手段に基づいており、単一の測定値を得るために研究動物を犠牲にする必要があります。3,10-12 in vivoでの脂肪移植片の体積保持を列挙するためのイメージング技術の使用については、ほとんど報告されていません。
いくつかの臨床研究は、イメージングを使用したより効果的な測定技術を示しています。磁気共鳴画像法(MRI)は、Hörlらによって採用されました。 脂肪移植片の生存率を測定するために13、およびCTはHar-Shaiらによって利用されました。 Fontdevila et al. HIVに罹患した患者における移植後の体積保持の分析において。14,15 3次元(3D)イメージングソフトウェアを採用、Meier et al. 自家脂肪移植後のヒトの体積保持を、術前と術後の画像を比較することにより測定しました。16名
しかし、基礎科学研究において、脂肪移植片の生存を測定するためにイメージングを使用する標準化された方法が不足しています。脂肪移植片の体積を評価するための高解像度イメージングアプローチにより、正確で再現性のある体積測定だけでなく、脂肪移植片の生存率の進化をリアルタイムで視覚化できる反復測定も可能になります。

<table><tbody><tr><td>SAL脂肪吸引液</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機</td><td>Beckman Coulter, Inc., Pasadena, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>50 ml conical</td><td>tubes BD Biosciences, San Jose, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>CD-1 ヌードマウス (Crl:CD1-Foxn1nu)</td><td>Charles River Laboratories, Inc., Wilmington, MA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Henry Schein, Dublin, OH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>2.5%ベタジン</td><td>Purdue Pharma、LP、スタンフォード、コネチカット州</td><td></td><td></td></tr><tr><td>70%エタノール溶液&nbsp;</td><td>ゴールドシールド、ヘイワード、カリフォルニア州</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1ccルアーロックシリンジ</td><td>BDバイオサイエンス、サンノゼ、カリフォルニア州</td><td></td><td></td></tr><tr><td>14ゲージカニューレ</td>シ<td>ッパーメディカル、センテニアル、CO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>鉗子</td><td>ファインサイエンスツール、ハイデルベルク、ドイツ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>腱切開はさみ</td><td>ファインサイエンスツール、ハイデルベルク、ドイツ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-0ナイロン縫合エ</td><td>チコン、Blue Ash、OH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水</td><td>Gibco、Carlsbad、CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マイクロCTスキャナー&nbsp;</td><td>シーメンスヘルスケア、プレザントン、カリフォルニア州</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ファントム&nbsp;</td><td>TriFoil Imaging, Northridge, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>画像解析ソフトウェア</td><td>IRW, Siemens Healthcare, Pleasanton, CA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scale&nbsp;</td><td>メトラー・トレド・インターナショナル社、オハイオ州</td><td></td><td></td>コロンバス</tr></tbody></table>

マイクロコンピュータ断層撮影とヌードマウスへのヒト脂肪注入の生存率の評価

Assessment of Viability of Human Fat Injection into Nude Mice with Micro-Computed Tomography

Lipotransferは体全体の軟部組織欠損の治療のために外科医の装備一式に不可欠なツールです。脂肪はそれは、容易に入手容易に得られる、安価で、かつ本質的に生体適合性であるように、理想的な軟部組織充填剤である。1しかし、その急成長の人気にもかかわらず、脂肪グラフト化は10からどこでも及ぶ公開さ保持率で、予測できない結果と可変移植片の生存によって妨げられる-80％。1-3 脂肪移植に関する研究を促進するために、我々は、従って、注入された脂肪の体積保持のリアルタイム分析を可能にする動物モデルを開発した。簡単に言えば、小さなカットCD-1ヌードマウスの頭皮で行われ、処理脂肪吸引物200-400μlの頭蓋骨上に配置される。頭皮が原因のエイズ頭蓋冠が提供する優れた背景のコントラストのためにネイティブ皮下脂肪のその不在の受信者サイトとして選ばれた、とされている分析プロセス。マイクロコンピュータ断層撮影（マイクロCT）は、ベースライン時にグラフトし、その後隔週をスキャンするために使用される。 CT画像が​​再構成され、画像化ソフトウェアは、グラフト量を定量するために使用される。 伝統的に、この技術は、ex vivoでの物理的な測定によってグラフト重量および体積の単一の評価を提供するために、試験動物を安楽死必要としている脂肪移植体積を評価した。生化学的および組織学的な比較は、同様に、安楽死させるための研究の動物を必要とした。これは、イメージング技術を可視化し、客観試験動物を犠牲にすることなく、初期の移植後の複数の時点でのボリュームを定量化するという利点を提供する。技術は、より大きな移植片リスク皮膚および脂肪壊死として注入することができる移植片の大きさによって制限される。この方法は、脂肪移植の生存率および体積保持を評価するすべての研究のための有用性を有する。これは、特にprovidiによく適しています脂肪移植片の視覚的な表現をngのと時間をかけて音量の変化を次のよう。

脂肪移植片が徐々に週8スキャンの完了時に8週（ 図4A）24 62.2％の平均生存率をもたらし、研究の過程で体積が減少し、各脂肪移植は、単一部品で抽出した。 Wilcoxan順位和検定のいずれかのマイクロCTによって得られた、または物理的な質量から計算脂肪移植片の体積の測定値の差を比較した。有意差は、これら2つの方法（両側p -値= 0.9362）との間に認められなかった。 （ 図4B） スキャンあたり5 centiGyと5スキャンの時点では、各マウスは、研究の過程にわたって25 centiGyの合計以下で受信していない。これと一致して、マウスのいずれも、皮膚の放射線火傷のいずれかのグロス証拠を示さなかった。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52217/52217fig1highres.jpg"> ...

脂肪移植は、軟部組織の欠損を再構築するための不可欠な技術です。しかし、それは依然として予測不可能な手順であり、グラフトの生存率が変動することを特徴とする。 私たちの目標は、脂肪移植の調製と送達の異なる技術間で体積保持を比較するための新しいイメージング方法を利用するマウスモデルを考案することでした。

Lipotransfer is a vital tool in the surgeon&#8217;s armamentarium for the treatment of soft tissue deficits of throughout the body. Fat is the ideal soft ...

この手順の全体的な目標は、マイクロ CT を利用して、脂肪移植の準備と送達の延期技術間の体積保持を比較するマウス モデルを説明することです。これは、最初にヒトのリポ吸引物を処理して、移植の準備ができている脂肪を得ることによって達成されます。2番目のステップは、CD 1胸腺ヌードマウスの頭皮に脂肪移植片を配置することです。次に、CTスキャンマウスによって脂肪移植片の生存率を毎週分析し、画像を再構築し、体積保持を定量化します。最後のステップは、8週間の終わりに脂肪移植片を説明し、それらを重量と組織型で比較することです。最終的に、マイクロCTと組織学を使用して、脂肪移植片の品質と生存率の違いを示します。脂肪移植片の計量などの既存の方法に対するこの技術の主な利点は、研究動物を犠牲にすることなく、最初の移植後の複数の時点での脂肪移植片の量を視覚化し、客観的に定量化できることです。この手法のアイデアを思いついたのは、マイクロCTを使用してカルバ欠損を分析し始めたときでした。この技術の意味するところは、脂肪移植、保持、生存率を評価するすべての研究に手術モデルを提供することです。一般的に、この方法に不慣れな人は、頭皮の上の正しい位置に脂肪移植片を収容するのが難しいため、苦労します。この技術の視覚的なデモンストレーションは、技術のわずかな偏差が結果を変える可能性のある多くの段階があるため、移植と再構築の手順を学ぶのが難しいため、非常に重要です。コールマン法を使用して、選択的脂肪吸引を受けている健康な女性患者の腹部、脇腹、および大腿部の領域からヒト脂肪組織を採取します。移植のために脂肪吸引物を処理するには、脂肪を30分間沈殿させることから始めます。脂肪吸引液は通常、上部に油、中央に脂肪、下部に血液の3つの層に落ち着きます。上部の油層を吸引して廃棄し、続いて下部の血液層を廃棄します。残っている膨満液や細胞の破片をさらに除去するには、脂肪を350G、摂氏4度で5分間遠心分離します。遠心分離後、下部の血液層を吸引し、上部の油層が進行します。テキストプロトコルに記載されているように移植に必要な脂肪の量を計算するために、脂肪移植を行うには、ヌードマウス1匹の雌ホモ接合CDを得る。実験的研究では、麻酔を誘発するために8〜12週齢のマウスを選択します。マウスの呼吸数が遅くなったら、マウスを2.5%isofのフッ素酸素混合物を含むノックダウンボックスに毎分2リットルで約10分間入れます。つま先をつまんで十分な鎮静を確認します。マウスの両目に獣医用潤滑眼軟膏を塗布し、マウスの鼻をノーズコーンに入れて、1分間に1〜2リットルで2.5%ISOフッ素酸素混合物を供給します。次に、マウスの下に滅菌フィールドを設定します。次に、頭皮を2.5%ポビドンヨードで滅菌し、続いて70%エタノール溶液で滅菌します。滅菌をさらに2回繰り返します。1ミリリットルのルアーロックシリンジに、室温に平衡化された1ミリリットルの脂肪をバックロードします。14ゲージ8センチメートルの長さの脂肪移植カニューレをシリンジの端に接続します。シリンジに脂肪が200〜400マイクロリットル残るまでシリンジプランジャーを押し下げて、システムをプライミングします。シリンジプランジャーを押し下げながら、細い鉗子を使用して遠位カニューレ穴から出る脂肪を観察して、カニューレが脂肪で完全に満たされていることを確認します。頭蓋骨の最も側面の甘えん坊を覆う正中線の背側の皮膚を持ち上げます。細いハサミで皮膚に1.5mmの切り込みを入れます。切り口の中央に6 OHナイロン縫合糸を通し、後で傷口の端をまとめるために使用されます。移植を行った後は、縫合糸を結ばないでください。次に、皮膚切開部からカニューレを挿入し、カニューレを頭蓋骨の上で扇形のパターンで前後に通過させて、頭蓋骨の上に皮下ポケットを作成します。ポケットが作成されたら、カニューレをマウスの正中線に配置し、頭蓋骨の真上にカニューレを直接配置します。 これは、目の間に引かれた線のすぐ後ろにある必要があります。逆行性にゆっくりと脂肪を注入し、カニューレを後ろに引いながらプランジャーを進めます。鉗子を使用して、傷口の端を一緒にして持ち上げ、ポケットから脂肪が漏れないようにします。以前に配置した縫合糸を結び、最初の結び目が皮膚に軽く当たっていることを確認します。さらに3つの正方形の結び目を作り、3mmの尾で縫合糸をカットします。マウスを麻酔から外し、テキストプロトコルに詳述されているように回復を続行します。最初のスキャンを実行する前に、空気、水、骨の強度を区別するイメージングファントムでマイクロCTをキャリブレーションします。キャリブレーション後。4匹のマウスをスキャナーの腹側位置に配置し、2匹のマウスを上に、2匹を下に置きます。スキャンベッドに置きます。以前は、マウスの体を保持するための60ミリリットルの注射器と、鼻の円錐形として10ミリリットルの注射器で構成されていました。鼻から最初の頸椎まで、および頭蓋骨の上部から頭蓋骨の基部まで、マウスの頭蓋骨全体が画像化されることをスカウト画像で確認します。テキストプロトコルで詳しく説明されているように、スキャンを続行します。ピクセル強度の閾値を使用してボクセルを選択することにより、関心領域またはROIを作成できるマイクロCTイメージング解析ソフトウェアで再構成された画像を開きます。まず、再構成したCT画像を2次元、冠状、軸方向、矢状方向のビューで読み込みます。軸方向のスライスをガイドとして使用して、脂肪移植片の左端の側面に対応する矢状スライスに移動します。脂肪移植に対応するすべてのボクセルをキャプチャするピクセル強度の上限と下限のしきい値を選択しますが、周囲の組織と骨は除外されます。脂肪移植に対応するサジタルビューでROIを定義します。以前に定義したピクセル強度の閾値を使用して、グラフトの右端の側面に達するまで、5番目の矢状スライスごとにこの手順を繰り返します。次に、すべての 2D ROI から選択したボクセルを 1 つの結合された 3D ROI に補間し、ソフトウェアによって計算された ROI ボリュームを記録します。3Dアイソサーフェスをレンダリングして、最終的な脂肪グラフトの体積を視覚化します。その後の解析では、ピクセル強度の最大しきい値と最小しきい値を、マウスを 8 週目の時点までスキャンした後のベースライン解析に使用した値と同じにしてください。テキストプロトコルに記載されているようにマウスを安楽死させます。腱切開術用ハサミを使用してマウスを手術野に置き、ポケットと脂肪移植片から上にある皮膚および結合組織の付着部を慎重に開きます。この時点で、移植片の抽出を助けるために、上にある背側の皮膚のパッチを切除するのに役立つ場合があります。移植片を切除した後に移植片から採取される結合組織を最小限に抑えるために、切除するときはできるだけ移植片の近くにとどまります。少なくとも0.01グラムの精度の引き裂かれたスケールで質量を測定します。脂肪移植片は研究の過程で体積が徐々に減少し、8週目までに平均生存率が62.2%になりました。8週目のスキャンの完了時に、各脂肪移植片が1つのピースに抽出されました。WILコキシンランク合計検定を使用して、マイクロCTまたは物理的質量から計算された脂肪移植片の体積測定値の差を比較しました。これら2つの方法の間に有意差は認められなかった。一度習得すると、このテクニックは適切に実行されれば、セッションごとに2時間で実行できます。この手順を試みるときは、この手順に続いて毎回同じ方法で手術と再建を行うことを忘れないでください。免疫染色やQ-R-T-P-C-Rなどの他の方法も実施することで、さまざまな移植方法によって血管性や遺伝子発現がどのように影響を受けるかといった追加の疑問に答えることができます。このビデオを見た後、in vivoでCTスキャングラフトを連続的に移植するためのリポ吸引物の処理方法、グラフトの生存率の評価方法、重量組織学のためのグラフトの説明、および将来の分析の開発方法についてよく理解しているはずです。この技術は、形成外科の分野の研究者がミラーリングモデルでの脂肪移植を探求する道を開きました。

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