Name: 移植のためのカプセル化サーモ前脂肪細胞の脂肪組織デポへ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-02T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 30 s
Description: 学ぶ、アルギン酸マイクロビーズを用いた産熱カタボリック細胞のカプセル化法。マウスの脂肪組織への移植とエネルギー消費増強効果を評価し、肥満治療への応用可能性を示す実験手法です。

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私たちは社説助けをジェニファーPetrosinoのとDavid DiSilvestroに感謝したいと思います。本研究では、アメリカの卵会およびノボノルディスクファーマから賞番号10040042からだけでなく、OSUでの食品イノベーションセンター、オフィス国際のための、高度な機能性食品研究センター、および起業家精神によってだけでなく、受賞番号20020728でサポートされていました全米科学財団は、EEC-0914790（LJL）を付与します。このプロジェクトは、ディレクターのオフィスによって資金を供給、研究資源のための国立センターから賞数R21OD017244（OZ）とUL1RR025755（OSUCCC）でサポートされている国立衛生研究所（OD）と医学研究のためのNIHロードマップによってサポートされていました説明とNCI P30CA16058。内容はもっぱら著者の責任であり、必ずしも研究資源のための国立センターや国立衛生研究所の公式見解を示すものではありません。

研究プロトコルは、オハイオ州立大学の倫理委員会によって承認されました。動物実験は、IACUCプロトコルによって承認されました。すべての手順は、層流とレベル2生物学的安全キャビネットの下で行いました。我々は、すべての標準的な安全要件と手順に従いました。 17、18に記載されているように、マイクロカプセルの製造のためのマイクロカプセル化技術が行われています。 材料の1の準備<ol><li>オートクレーブ処理生理食塩水（水中の0.9％NaCl）で2％アルギン酸ナトリウム溶液10mlを準備します。生理食塩水中の0.05％PLL溶液を調製します。前日これらのソリューションを用意し、一晩攪拌します。使用前に0.22μmフィルターでソリューションをフィルタリングします。 </li><li> 0.9％NaCl溶液に50 mMのクエン酸ナトリウム及び100mMのCaCl 2を用意し、それらをオートクレーブ。 </li><li>すべてのソリューション、針、電極、およびビーカーをオートクレーブ。目詰まりを回避するために、ワイヤで十分にきれいな針。 </li><li> （102マイクロカプセルがよく毎cm 2のために必要とされており、カプセル18あたり約500個の細胞がある）カプセルに使用する細胞の適切な量を決定します。 200万細胞あたりアルギン酸ナトリウムの1ミリリットルを使用してください。 </li><li> 「線維芽細胞増殖培地は、「10％ウシ血清を含む用意し、高グルコースで100 U / mlペニシリン/ストレプトマイシン（4,500 mg / Lのグルコース）ダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）。 <ol><li> DMEM、10％ウシ胎児血清、10μg/ mlインスリン、1μMのデキサメタゾン、0.5mMの3-イソブチル-1-メチルキサンチン、および100 U / mlのペニシリン/ストレプトマイシンを含有する「分化培地I &#39;を準備します。 </li><li> DMEM中で「分化培地II &#39;を含む10％ウシ胎児血清、10μg/ mlのインスリン、および100 U / mlペニシリン/ストレプトマイシンを準備します。 </li></ol></li><li> 10ミリリットルラジオ免疫沈降アッセイバッファごとにプロテアーゼ阻害剤錠剤を含む溶解緩衝液を調製する（RIPA緩衝液）。 </li></ol> 2.アルギン酸マイクロビーズの調製（図1A） <ol><li>細胞培養フラスコから古い培地を除去します。 10mlのPBSで細胞を洗浄します。 0.25％トリプシン-EDTA（1コンフルエントのT175フラスコ当たり2ml）で懸濁液中の細胞を持参してください。 </li><li>血球計数器を用いて細胞懸濁液中の細胞をカウントします。細胞懸濁液から10ミリリットルのアリコートを使用し、製造業者の説明書に従って細胞をカウントします。室温で5分間480×gの遠心分離培地中に残存する細胞を遠心します。 </li><li>ステップ1.4で説明したようにアルギン酸ナトリウムで細胞ペレットを一時停止します。 5ミリリットル注射器にアルギン酸ナトリウム - 細胞溶液を移します。 </li><li> 23ゲージの針を追加し、溶液中の気泡を除去し、空気1mlのポケットを作成するための注射器を反転。 </li><li>カプセル化の針注ぎ口の下の100mMのCaCl 2溶液144ミリリットルを含む小さなビーカー（180ミリリットル）を配置します。先端approximでカプセル化に電極を取り付けately 2.5センチメートルの100mMのCaCl 2溶液の表面の上。 </li><li>しっかりとシリンジポンプでのアルギン酸ナトリウム - 細胞溶液を含む注射器を置きます。注射器の開口部にゴムチューブを取り付けます。アルギン酸ナトリウム - 細胞溶液がチューブの途中に入るまで、プランジャーを押してください。 5.4 kVのに電圧を調整します。シリンジポンプの12.06ミリメートルの直径を設定します。 3ミリリットル/時の速度を調整します。ポンプを起動します。カプセル化をオンにして、5.4 kVの電圧を維持します。 </li><li>フードのウィンドウを閉じ、アルギン酸マイクロビーズの形成が終了するまで、不要な振動を避けることができます。すべてのソリューションは、針を通過した後、PLLでコーティングする前に、追加の20分間の100mMのCaCl 2溶液中のアルギン酸ボール状のマイクロビーズを固めます。 </li></ol> PLL 3.コーティングマイクロビーズ（図1B） <ol><li>アルギン酸ナトリウムセルボール状のマイクロビーズを含むビーカーを削除し、これらがMicroBを転送50ミリリットルの遠心チューブにEADS。マイクロビーズペレットからのCaCl 2溶液を除去します。 </li><li> 0.9％NaClを30mlのを追加することにより、アルギン酸セルボール状のマイクロビーズを洗ってください。そっと手でチューブを振ります。マイクロビーズは、重力によって沈殿させた後、25ミリリットルピペットで0.9％のNaClを削除します。合計3回の洗浄のためにさらに2回繰り返します。 </li><li>アルギン酸ナトリウム溶液の各1ミリリットルのための0.05％PLL溶液10mlを使用してください。 10分間分1,000回転で0.05％のPLLと渦を追加します。 注意：通常、10分PLLコーティングのために十分です。 </li><li> PLLコートを形成した後、PLL溶液を除去し、3.2に記載したように、カプセルを3回洗浄します。 </li></ol>アルギン酸コアの4除去（図1C） <ol><li> 50mMのクエン酸ナトリウム溶液30mlを加えます。 5分またはすべてのアルギン酸ナトリウムが溶解するまで待ってください。ステップ3.1.1で説明したように洗浄を3回カプセル。 </li><li> 0.9％のNaClを削除し、50mlチューブに培養液の20ミリリットルを追加します細胞培養フラスコに細胞を含むすべてのカプセルを転送します。標準的な細胞培養条件18歳未満のカプセル化された細胞を処理します。 </li></ol>異種移植と細胞間の代謝物の流入/流出の宿主細胞間相互作用やキネティクス（図2）を研究するためのインビトロ適用5. <ol><li>共培養のためにコンフルエントになるまで24ウェルプレート上で培養された宿主細胞。脂肪前駆細胞を培養するため「線維芽細胞増殖培地 &#39;を使用します。 </li><li>コンフルエント宿主細胞を含む24ウェルプレートにマイクロカプセルを転送します。単層（ウェルの102マイクロカプセル/ cm 2の ） を達成するために、マイクロカプセルを追加します。 </li><li> 6日間分化培地IIへの前脂肪分化培地Iと分化48時間ごとに、変化媒体を誘導します。 RIPA緩衝液中で細胞を溶解します。ウエスタンブロットを用いて、タンパク質の発現を分析するために条件当たり50μgのタンパク質を使用してください。 </li></ol> Treatmためのインビボ応用6.肥満のENT（図3） <ol><li>麻酔の麻酔の導入および維持のための酸素と2％のイソフルランのための酸素と4％のイソフルランを混ぜます。つま先のピンチにより十分な麻酔深度を確認してください。 <ol><li>乾燥から角膜を保護するために、目のかゆみ止め軟膏を適用します。 </li></ol></li><li>このような緑色蛍光タンパク質（GFP）のような恒久的に人工蛍光タンパク質で標識されたカプセル化細胞を使用します。 </li><li>カプセル化された細胞を注入するために3ミリリットルの注射器と20ゲージの針を使用してください。 <ol><li> 図3に示すように、生殖腺と腎臓の間腹腔内領域に配置されている各IAB脂肪デポに0.2mlのPBSに懸濁し、0.5×10 6個の細胞を注入します。の平均重量を有するマウスは、このPBSの容量とセル数を使用します40g添加しました。異なる重量または用量依存効果の決意のために持っているマウスでは細胞数と音量を調整します。 </li></ol></li></ol>

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利益相反は宣言されていません。

種々の方法は、乾燥、押出し、および乳剤19を含む細胞をカプセル化するために使用されてきました。この方法では、アルギネートビーズをPLLでコーティングし、アルギン酸塩コアをカプセル化を完了するために溶解され、針を通して押し出されます。この方法は、長年使用されているが、所望のサイズおよび形状の球形ビーズの形成は依然として困難です。カプセルのサイズは、アルギン酸ナトリウム溶液を、押出機の直径と針先端とのCaCl 2溶液20との間の距離の粘度に非常に依存します。針の先端とのCaCl 2溶液の表面との間のより短い距離は、より小さなビーズが生産されています。記載されているプロトコルは、細孔（&lt;32 kD）のでAPLの産生をもたらします。孔径は、実験前に18に記載されているように、蛍光免疫グロブリン（&gt; 32 kD）の蛍光小ペプチドを用いて試験することができます。このよ細孔のIZEを2週間、および少なくとも80日間で18脂肪組織へのin vivoでの移植後のin vitro...

慢性疾患の発生増加1は、治療用細胞集団2の移植に関する研究を刺激してきました。同系または同種異系幹細胞は、これらのアプリケーション2のために最も一般的に使用される細胞型です。しかし、これらの治療は、移植後の幹細胞の分化と移動の制御を可能にしないと、効率的なコストされていません。有益な機能を有する遺伝的に改変された細胞の移植は多くの疾患の治療を改善すると予想しています。しかし、遺伝子の細胞改変は宿主の免疫系によって認識され、したがって、これらの治療は、免疫抑制3が必要です。インスリン産生細胞のカプセル化は、チャン博士4によって開発されました。技術は、塩化カルシウム溶液中に浸漬されたアルギン酸塩の液滴中の細胞のカプセル化に基づいています。アルギン酸分子は、（M）マンヌロンとグルロン酸（G）で ​​構成され、CAによって接続することができ2+。ゲル化後、ビーズを、ポリ-L-リジン（PLL）溶液に懸濁させます。このステップの間、PLLは、カプセルの膜を確立アルギン酸分子中のGとMに結合します。カプセルの膜の多孔度は、MとPLLの濃度、インキュベーション時間、温度を変化させることによって調節することができます。 PLLの結合はまた、アルギン酸塩の種類と濃度に依存します。のCa 2+イオンで ​​架橋されたアルギン酸塩マトリックスは、生理的環境中またはリン酸とクエン酸イオン濃度の高い共通の緩衝溶液中で不安定です。これらのバッファは、アルギン酸からのCa 2+を抽出し、コアを液化することができます。アルギン酸塩コアの液状化は、細胞の移動および増殖のためのカプセルの内部の空間を提供します。ポリカチオン性ポリ-L-リジン（APL）とポリアニオンのアルギン酸に封入された細胞は、免疫グロブリンのために不浸透性であるが、毒素の栄養素の流入と流出を持っています。これらのAPLの特性は、長期のsuを有効に遺伝的に異なるホストへの移植後にカプセル化された細胞のrvival。エリオットらは、9年後の移植5人の患者にカプセル化されたブタの膵臓細胞を機能の生存を報告しました。 カプセル化技術は、マイクロカプセル化（3-800ミクロン）およびマクロカプセル（千ミクロンよりも大きい）に分類することができます。マイクロカプセルは、マクロカプセル6よりも耐久性があります。 1964年のチャン博士らによるその発見以来、マイクロカプセル化は広く、インスリン、他のホルモン、および生理活性分子7を製造同化細胞のカプセル化のために使用されてきました。これらの治療は、線維症、免疫応答8を含む宿主組織内のいくつかの課題に直面していました。最初は、バイオポリマーの品質に関連する副作用が解決されました。しかし、同化細胞の移植は、依然としてホルモンの結果として、そのような線維症などの副作用を開始overpr特殊な腺の外側oduction。 ここ数十年では、肥満や2型糖尿病は、大流行9に達しています。大人の人の30％以上は、世界中の過体重および肥満である10。増加腹腔内（IAB）脂肪形成は、慢性炎症の発生率を増加させ、2型糖尿病、心血管疾患、特定の癌および他の病的状態11-13を促進します。いくつかの証拠は、IABの脂肪に関連する病因が特定の脂肪細胞によって回避することができることを示唆しました。最近の研究では、IAB領域への皮下の脂肪細胞の移植は、代謝を改善し、インビボで 14げっ歯類の肥満およびインスリン抵抗性を減少させることができることを示しました。肥満とインスリン抵抗性の効果的な低減は、熱15,16の形でエネルギーを放散することが可能な熱発生、脂肪細胞と関連しています。脂肪細胞の産熱変性は、安定なトランスフェクションによって達成することができますこのような脱共役タンパク質1（UCP1）またはUCP1および他サーモ15,16遺伝子の発現を調節する遺伝子のミトコンドリアのプロトン脱共役に関与する遺伝子の。我々の最近の研究では、アルデヒドデヒドロゲナーゼの欠乏1 A1（ALDH1A1）が 17,18、これらのマウスにおいて、肥満およびインスリン抵抗性を減少させるIAB脂肪の熱発生リモデリングをもたらすことを示しました。なお、熱発生ALDH1A1欠損（ALDH1A1 - / - ）のカプセル化前脂肪細胞は、IAB脂肪18の治療のための新規治療機会を示唆し、肥満の野生型マウスでIAB脂肪の同じ治療効果を媒介します。実験的な設定では、カプセル化された細胞は、費用対効果の高い方法19内の特定の細胞集団の効果を研究するために研究者を可能にします。ここでは、熱発生異化細胞株とその研究室のカプセル化と肥満のマウスモデルにおける治療的適用の方法について説明します。プロトコルは、Tを説明しますマイクロカプセルの製造（ 図1）のためのHREE相：アルギン酸ビーズ（ 図1A）、ポリカチオン性ポリ-L-リジン（PLL）マイクロビーズの表面（ 図1B）上の膜の形成および除去の形成アルギン酸コア（ 図1C）。

<table><tbody><tr><td>封止装置(VAR V1)</td><td>Nisco</td><td>LIN-0042</td><td>なし</td></tr><tr><td>KD 科学シリンジポンプ</td><td>KD scientific</td><td>780100Y</td><td>なし</td></tr><tr><td>オリンパス顕微鏡&nbsp;</td><td>オリンパスオプティカル</td><td>IX70-S8F2</td><td>なし</td></tr><tr><td>アルギン酸ナトリウム</td><td>Sigma</td><td>MKBP8122V</td><td>なし</td></tr><tr><td>ポリ-L-リジン臭化水素酸(PLL)</td><td></td><td>Σ 020M5006V</td><td>なし</td></tr><tr><td>塩化カルシウム</td><td></td><td>Sigma SLBJ2662V</td><td>なし</td></tr><tr><td>クエン酸ナトリウム三塩基性二水和物</td><td>Sigma</td><td>030M0200</td><td>なし</td></tr><tr><td>塩化ナトリウム</td><td>Σ</td><td>SLBD2595V</td><td>なし</td></tr><tr><td>Mini-PROTEAN TGX Gels</td><td>Bio-Rad</td><td>456-1093</td><td>なし</td></tr><tr><td>ATGL 一次抗体 (ウサギ由来)</td><td>Cell Signaling</td><td>2138S</td><td>なし</td></tr><tr><td>二次抗体 (抗ウサギ)</td><td>LI-COR</td><td>926-68071</td><td>なし</td></tr><tr><td>Radio-Immunoprecipitation Assay (RIPA) buffer</td><td>Boston BioProducts</td><td>D25Y6Z</td><td>なし</td></tr><tr><td>リン酸緩衝液生理食塩水 (PBS)</td><td>Σ</td><td>RNBD2893</td><td>なし</td></tr><tr><td>トリプシン</td><td>Gibco</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>なし コルチゾン 10 かゆみ止め軟膏</td><td>コルチゾン 10</td><td>C4029138</td><td>なし</td></tr><tr><td>ダルベッコ改変鷲 ミディアム (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>11965-092</td><td>なし</td></tr><tr><td>新生仔牛血清 (CS)</td><td>Σ</td><td>N4762</td><td>なし</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清 (FBS)</td><td>Sigma</td><td>F4135</td><td>無</td></tr>し <tr><td>3-イソブチル-1-メチルキサンチン(IBMX)</td><td>Σ</td><td>I0516</td><td>なし</td></tr><tr><td>デキサメタゾン</td><td></td><td>Σ D4902</td><td>無し</td></tr><tr><td>インスリン(ウシ)</td><td>Σ</td><td>I5879</td><td>なし</td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤カクテル錠</td><td>ロシュ</td><td>4693159001</td><td>なし</td></tr></tbody></table>

移植のためのカプセル化サーモ前脂肪細胞の脂肪組織デポへ

Encapsulation Thermogenic Preadipocytes for Transplantation into Adipose Tissue Depots

細胞カプセル化は、半透過性膜内に生存細胞を捕捉するために開発されました。移植カプセル化細胞は、長期生存を達成するために、処置される宿主の組織中に低分子量の代謝産物を交換することができます。半透膜は、移植されたカプセル化された細胞は、免疫系による拒絶反応を回避することができます。カプセル化手順は、例えば、インスリン、他のホルモン、およびサイトカインなどの生物活性化合物の制御放出を可能にするように設計されました。ここでは、肥満マウスの腹腔内脂肪組織における熱産生及びエネルギー散逸のための脂質を消費異化細胞、（熱発生）のカプセル化のための方法を説明します。サーモ異化細胞のカプセル化は、肥満の予防と治療に潜在的に適用可能であること、および2型糖尿病があります。異化細胞の別の潜在的なアプリケーションは、アルコールまたは他の毒性代謝物および環境汚染物質の解毒を含むことができます。

図1は、マイクロビーズの生産の各ステップは、顕微鏡下で制御することができたことを示している。 図2（a）は、共培養する方法脂肪細胞をカプセル化された細胞の単層で示している。 図2Bは、脂肪細胞/マイクロカプセルの共培養を用いた定量的研究の代表例であること脂肪細胞の前記溶解物を、ウェスタンブロットを用いて分析したセクションで説明されました。カプセル化細胞は、この実験で分析されませんでした。千倍希釈プライマリATGLおよびβアクチン抗体を1で使用しました。アクチンβするATGLの割合は、3つの独立した実験の平均±SDとして示されています。同様の共培養アプローチは、mRNAを分析し、共培養中にカプセル化細胞と脂肪細胞の相互作用の効果を研究するために使用することができます。サーモALDH1A1をカプセル化されたデータが示す- / -脂肪細胞はencapsulaに比べて脂肪細胞におけるATGLリパーゼおよび脂肪分解18の有意に高いレベルを誘導しますテッドWT脂肪細胞。 <p cl...

ここでは、腹腔内脂肪組織での熱産生のために脂質を消費し、肥満マウスのエネルギー散逸を増加させる異化細胞のカプセル化のためのプロトコルを提示します。

Cell encapsulation was developed to entrap viable cells within semi-permeable membranes. The engrafted encapsulated cells can exchange low molecular ...

本手順の全体的な目的は、熱産生異化細胞株のカプセル化と、そのin vitroおよび潜在的なin vivoにおける応用を実証することです。まず、アルギン酸ナトリウム細胞懸濁液を調製し、5 mLシリンジに移します。次に、カプセル化装置を使用してアルギン酸マイクロビーズを作製します。次に、マイクロビーズを陽イオン性ポリL-リジン溶液でコーティングし、続いてアルギン酸コアを除去することで、細胞懸濁液の周囲に半透膜を形成させます。最終ステップとして、封入された細胞を他の細胞株と共培養するか、マウスの脂肪組織に注入します。最終的に、免疫血液分析により、アルデヒド脱水素酵素欠損脂肪細胞を含むマイクロカプセルと共培養した脂肪細胞において、より高い脂質分解活性が示されます。免疫組織化学により、カプセル化された細胞がマウスの脂肪組織に正常に移植されたことが示されましたが、この手法は熱産生および褐色組織に関する知見を得るために有用です。また、他の既存の動物モデルにも適用可能であり、生体内での細胞サブセットを検証するための低コストな実験モデルシステムを提供できます。生物医学的発見のため、すべての操作は層流を備えたレベル2のバイオセーフティキャビネット内で行ってください。まず、細胞培養フラスコから古い培地を取り除き、前駆脂肪細胞を10 millilitersのPBSで洗浄します。PBSを取り除き、細胞を2 millilitersの0.25%tripsin EDTAに再懸濁します。細胞懸濁液から10 microliter分を分注し、ヘモサイトメーターを用いて細胞数をカウントします。製造元の指示に従い、適切な細胞数にするために残りの細胞にDMEMを加え、室温で480 ×gで5分間遠心分離します。プロトコルの本文にある指示に従って必要な細胞数を決定した後、細胞ペレットを適切な量の2%アルギン酸ナトリウム溶液に懸濁します。このアルギン酸ナトリウム細胞溶液を5 mLシリンジに移します。溶液中の気泡を取り除き、シリンジを反転させて1 mLのエアポケットを作ります。カプセル化の準備として、100 mMの塩化カルシウム溶液144 mLを入れた小型ビーカーを用意します。カプセル化装置のニードル口の下で、電極を封入物に接続し、チップが塩化カルシウム溶液の表面から約2.5 cm上の位置に来るように調整します。アルギン酸ナトリウム細胞懸濁液が入ったシリンジを、シリンジポンプにしっかりと固定します。シリンジの開口部にゴムチューブを取り付けます。アルギン酸ナトリウム細胞懸濁液がチューブの半分まで入るまで、プランジャーを押し込みます。電圧を5.4 kilovoltsに調整し、シリンジポンプの直径を12.06 millimetersに設定します。速度を3 milliliters per hourに調整します。ポンプを起動し、エンカプセル装置をオンにして、電圧を5.4 kilovoltsに維持します。アルギン酸マイクロビーズの形成が完了するまで、フードのウィンドウを閉め、不要な振動を避けてください。溶液がすべてニードルを通過した後、ポリアニオン性ポリリジン（PLL）でコーティングする前に、塩化カルシウム溶液中で球状のアルギン酸マイクロビーズをさらに20分間凝固させます。ナトリウムアルギン酸の球状マイクロビーズが凝固したら、マイクロビーズの入ったビーカーをカプセル化装置から取り出してください。マイクロビーズを50 mLの遠心チューブに移します。マイクロビーズのペレットから塩化カルシウム溶液を除去します。0.9%塩化ナトリウム溶液を30 mL加え、チューブを手で静かに振ってマイクロビーズを洗浄します。マイクロビーズを重力で沈殿させます。次に、25 mLピペットを使用して、このように塩化ナトリウム溶液を除去します。マイクロビーズを計3回洗浄してください。次に、0.05% PLL溶液をマイクロビーズに加えます。アルギン酸ナトリウム溶液1 mLに対して、PLL溶液を10 mL使用してください。1000 rpmで10分間ボルテックスしますが、通常、これでPLLコーティングには十分です。PLLコートの形成を確認後、PLL溶液を取り除き、前述の手順に従ってカプセルを0.9%塩化ナトリウム溶液で3回洗浄します。まず、PLLコートされたマイクロビーズから代替コアを除去するため、50 mLチューブに50 mMクエン酸ナトリウム溶液を30 mL加えます。5分間、またはアルギン酸ナトリウムが完全に溶解するまで待ちます。その後、前述の手順に従ってカプセルを0.9%塩化ナトリウム溶液で3回洗浄します。20 mLの培地による3回目の洗浄後、細胞を含むすべてのカプセルを細胞培養フラスコに移し、標準的な細胞培養条件下で封入細胞を処理します。本手順に用いる宿主細胞は、コンフルエントになるまで24ウェルプレートで培養してください。付属のプロトコルに従って調製した線維芽細胞増殖培地を使用します。前脂肪細胞の培養の手順です。コンフルエントな宿主細胞を含む24ウェルプレートにマイクロカプセルを移し、各ウェルで単層となるようにマイクロカプセルを添加します。分化培地1を用いて前脂肪細胞の分化を誘導し、48時間インキュベートします。48時間後、培地を分化培地2（Differentiation Medium Two）に交換します。その後、48時間ごとに新鮮な分化培地2に交換します。また、48時間ごとに細胞からタンパク質を回収し、ウェスタンブロッティングにより解析します。マイクロビーズ作製における各工程は、顕微鏡下で観察できます。20倍の倍率でアルギン酸マイクロビーズを示します。PLLコーティング前、PLLコーティング後、および定量的研究においてジネットコアを溶解させた後の状態で、脂肪組織トリグリセリドリパーゼ（ATGL）の発現を、無細胞の野生型またはアルデヒド脱水素酵素1（ALDH1）欠損脂肪細胞を含むマイクロカプセルと共培養した3T3-L1脂肪細胞の間で比較しました。L DH one A one欠損細胞と共培養した脂肪細胞においてA TGLの発現が高まっていることは、より高い脂質分解活性を示しています。in vivo研究において、GFPで標識したカプセル化細胞をマウスの腹腔内脂肪組織に注入しました。80日後、注入した脂肪組織にはカプセル化細胞の脱色したクラスターが認められました。ヘマトキシリン・エオジン染色を施した腹腔内脂肪貯蔵所のパラフィン包埋切片では、移植されたマイクロカプセル封入細胞のクラスターと宿主の脂肪細胞が観察されます。同一の切片を蛍光光で解析すると、円形で完全なカプセルの内部にGFP標識された移植細胞が認められます。GFPの発現は、移植後の細胞生存能の指標でもあります。この封入技術により、代謝性疾患分野の研究者が、モデル生物を用いて、肥満、2型糖尿病におけるインスリン抵抗性、炎症、および癌の潜在的な治療法を探索することが可能となりました。

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Research

JoVE Journal

Medicine

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