2016年12月29日
ここでは、ショウジョウバエの原腸陥入のライブ画像を撮影する手順を説明します。これにより、初期発生に関与する頂端狭窄をより深く理解し、組織構造修飾中の細胞の動きを支配するメカニズムをさらに解析することが可能になりました。
この手順の全体的な目標は、ショウジョウバエの原腸陥入中の細胞の形状と動きをよりよく理解することです。ここでは、胚発生のこの段階での形態形成細胞運動の開始をアッセイするために、ショウジョウバエの原腸陥入の堅牢な測定方法を提供します。この技術の主な利点は、原腸陥入時の細胞再配列を、原腸陥入中の頂端狭窄とともに特定できることです。
実験を開始するには、375ミリリットルの水の混合物を準備します。125ミリリットルの100%市販のリンゴジュース。 12.5グラムの寒天
。12.5グラムのブドウ糖。次に、寒天が溶けるまで電子レンジで混合物を加熱します。そして、それを3cmの細胞培養皿に注ぎます。
将来の使用のために、混合物を摂氏4度で保管します。りんご皿を準備した後、ハエが卵を産むことができるように、その上に練り込んだイーストペーストの薄層を追加します。練り酵母で覆われたリンゴ皿の上のボトルに25匹のオスと25匹のメスのハエを置きます。
プラスチック製のショウジョウバエのストックボトルをアルミホイルで包み、ハエがさらに卵を産むように促します。ボトルを逆さまにしてインキュベーターに一晩置いておきます。翌朝、リンゴジュースプレートを新しいものと交換します。
次に、ボトルをアルミホイルで包み、ハエが3〜4時間産卵するのを待ちます。ハエが卵を産んだら、綿棒で皿から卵をほぐします。胚をストレーナーに集め、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で洗います。
12ウェル培養皿で、PBSで胚をさらに3回洗います。胚を50%漂白剤で12ウェル培養皿で脱角化します。デコレーションプロセスに続いて、PBSで胚をさらに3回洗浄します。
PBSを含む3cmの細胞培養皿に胚を移します。そして、顕微鏡下でステージ5の胚を、その境界の透明度に基づいて選択します。200マイクロリットルのピペットチップを使用して、病期胚を採取します。
次に、選択した2つの胚をガラスカバースリップに置き、ティッシュペーパーで余分なPBSを取り除きます。細かくねじったティッシュペーパーで、胚の背側をカバースリップに向けてください。次に、細い針を使用して、胚をシリコングリースでガラスカバースリップに取り付けます。
胚上に中空カーボンオイル700の小滴を加え、胚を含むカバーガラスを逆さまにしてインデントスライドの上に置きます。スライドの下部にスペースを残します。次に、カバースリップをスライドに貼り付けます。
最後に、共焦点イメージングシステム、アルゴン488レーザー、および油浸対物レンズを使用して胚を検査します。DE-cadherin GFPを使用して、500秒にわたる細胞移動のライブイメージングからタイムラプス画像を撮影し、原腸陥入中のショウジョウバエの個々の細胞の頂端領域を分析しました。500秒で、頂端の狭窄と陥入がはっきりと見えます。
私たちの方法を使用して。さらに、ショウジョウバエの原腸陥入、およびがんの転移に関与する上皮から間葉への移行の分子メカニズムを理解することができます。
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本記事では、ショウジョウバエの原腸陥入のライブイメージングの手順を紹介し、初期発生における頂端収縮の理解を深めます。この手法により、組織構造の改変に関与する細胞運動の詳細な解析が可能になります。
Drosophilaの原腸形成における細胞形態の変化と移動のライブイメージングは、線維化やがん転移に関与するプロセスである上皮間葉転換(EMT)の根底にある分子メカニズムを解析するための強力なプラットフォームを提供します。本手法により、頂端収縮と細胞再編成の高解像度可視化が可能となり、EMT関連経路の初期段階におけるターゲットバリデーションの予測信頼性が向上します。このアプローチは、発生生物学からバイオファーマのR&Dにおける疾患関連のメカニズム研究へのトランスレーショナルな連続性を強化します。
このイメージング手法は、初期の仮説検証からEMT関連標的の前臨床モデル開発に至るまでの、創薬の連続的なプロセスに統合されます。