そのまま子豚脳内麻酔神経毒性の研究のための微小電極アレイ技術の適応

この実験手順の全体的な目標は、新生仔豚の神経伝達物質を測定するための酵素ベースの微小電極アレイ技術の新しいアプリケーションを利用することです。この例では、麻酔誘発性神経毒性を研究するために、in vivo のグルタミン酸活性を調べます。この技術の主な利点は、麻酔誘発性神経毒性の臨床的に関連する動物モデルにおいて、in vivoの神経伝達物質活性を優れた空間的および時間的分解能で測定できることです。

この方法は、麻酔誘発性神経毒性のメカニズムについての洞察を提供することができますが、小児の脳外傷、てんかん、脳卒中などの他の病理学的状態にも適用できます。一般に、この方法に不慣れな個人は、子豚モデルの使用には実装の経験と練習が必要なため、苦労するでしょう。さらに、微小電極アレイの使用には、専門的なスキルセットが必要です。

外科的および微小電極の配置手順は、その繊細な性質のために習得が難しいため、この方法の視覚的なデモンストレーションは非常に重要です。この実験では、子豚が生後3〜5日で脳の成長がピークに達する時期に子豚を使用します。実験の少なくとも24時間前に彼らが順応するのを待ちます。

訓練を受けたスタッフが子豚の世話をしなければなりません。彼らはアドリブで栄養、毛布、刺激のためのおもちゃへのアクセスを提供されるべきです。麻酔の少なくとも3時間前に、子豚の胃が空になっていることを確認するために、ケージから代用乳を取り外してください。

ARRIVEガイドラインに従って、性別に基づく可能性のある交絡因子を排除してください。その後、小児用人工呼吸器と適切なモニタリング装置を備えた麻酔ワークステーションで、子豚を挿管し、機械的に換気します。次に、セボフルラン麻酔を1MACで3.5時間の麻酔で投与します。

次に、つま先をつまんで適切な麻酔の深さを確認し、適切なパッドが付けられた子豚専用の定位固定装置フレームに子豚を固定します。上顎骨の歯を歯のバーの上に置きます。次に、子豚を正中線の中央にして、2つの貫通するイヤーバーを固定して締めます。

耳バーを鼓膜がはじける音が聞こえるほどしっかりと挿入します。子豚がフレームに固定されている間、ロクロニウム負荷量と注入を開始して動きを防ぎます。子豚を暖かく保ち、そのバイタルサインを監視することが重要です。

ヒートランプおよび/または毛布を使用して、正常な体温を維持します。ヒートランプが燃えるほど近くにないことを確認してください。子豚の生存が望ましい場合は、手術野を無菌に保つために追加の準備をしてください。

次に、微小電極アレイの埋め込みを進めます。まず、メスで頭蓋骨を傷つけないように注意しながら、頭蓋骨に沿って4〜6センチの正中線を切開します。切開が完了したら、穏やかな収縮と鈍い解剖を使用して、頭蓋骨から頭皮を持ち上げます。

次に、ガーゼパッドで頭蓋骨をやさしくこすり、結合組織を取り除き、縫合線を露出させます。次に、開頭術の意図された場所を決定します。関心のある領域が不明瞭なままの場合は、頭皮をさらに反映します。

次に、外科用ドリルを使用して、目的の構造を覆う約0.25平方センチメートルの開頭窓を作成します。硬膜やその下にある脳を傷つけないように注意してください。必要に応じて、細かい手術器具を使用して、脳組織を覆う硬膜を切除します。

脳に損傷を与えないように細心の注意を払ってください。この実験では、グルタミン酸オキシダーゼでプレコートされ、mPDで電気メッキされた前述の酵素ベースの微小電極アレイを利用しています。微小電極アレイには、子豚用にカスタマイズされた40mmの剛性シャフトがあります。

金属アームをマイクロマニピュレータに固定し、マイクロ電極アレイをブレグマ上でできるだけ垂直に配置します。次に、頭蓋骨の表面に触れないようにアレイをできるだけ低く慎重に下げ、ブレグマの座標に注意してください。次に、子豚の脳アトラスを使用して、目的の構造の正確な定位固定座標を決定し、それに応じて微小電極を再配置します。

次に、疑似参照電極を頭皮の下に置き、動物との接触を確保します。次に、微小電極アレイを脳内にゆっくりと適切な深さ近くまで下げます。最後の2mmの移動では、油圧マイクロドライブを使用して、組織の外傷を最小限に抑えながらアレイを目的の構造にゆっくりと下げます。

微小電極アレイを配置した後、電極がベースラインに達するまで30分待ちます。その後、約3時間測定します。子豚が実験を生き残るためには、データを収集した後、切開部を閉じます。

ように、セボフルラン麻酔下で生後3〜4日の子豚の海馬でリアルタイムのin vivoグルタミン酸測定が行われました。録画セッションは3時間を超えました。アンペロメトリーの測定値は4ヘルツで記録され、キャリブレーションパラメータに基づく線形回帰を使用して濃度に変換されました。

各時点について、2つのグルタミン酸感受性部位からの信号を平均化してから、平均化されたセンチネル信号を差し引くと、修正されたグルタミン酸シグナルが得られました。グルタミン酸基礎の平均濃度は約4.6マイクロモルで、麻酔薬への曝露期間中は比較的安定していました。トランジェントなグルタミン酸作動性活性は、センチネルシグナルと相関せず、シグナル対ノイズ比が3より大きいシグナルのピークを分析することにより同定されました。

実験期間中に合計116の過渡ピークが検出されました。結果として生じるトランジェントピークの振幅は、一般に1マイクロモルの範囲内にあることが観察されました。各トランジェントの持続時間を定量化するために、各最大ピーク値が80%崩壊するのに必要な時間を求めたところ、約4〜5.5秒であることがわかった。

このテクニックを習得すれば、系統的かつ慎重に実行すれば、4時間で完了します。この手順を試みる際には、実験データを混乱させる可能性のある意図しない組織の損傷を最小限に抑えることを覚えておくことが重要です。この手順に続いて、他の電気化学分析種の測定などの他の方法を実行して、追加の質問に答えることができます。