2025年6月6日
このプロトコルは、1匹のマウス内で同じ条件下で2つのインプラントと細菌を同時にインキュベートすることを可能にする、インプラント関連感染症のユニークな実験モデルを記述しています。また、最適化された比較分析法を使用してインプラント表面のバイオフィルム形成を正確に評価し、バイオマテリアルの抗菌特性を評価するための高度な技術を実証します。
私たちの研究は、インプラント関連感染症の革新的な治療法を開発することを目的としています。潜在的な抗菌特性を持つ新しい生体材料を評価するために、より貴重な生体内試験アプローチを開発しています。以前の動物モデルでは、通常、動物ごとに 1 つのインプラント関連感染症を生成することに限定されており、複数の動物から得られる平均結果に大きなばらつきが生じる可能性があります。
私たちのマウスモデルでは、1匹の動物内で同一の感染条件にさらされた2つの痕跡を直接比較できるため、抗菌活性の貴重な評価が得られます。私たちのin vivo実験方法論は、潜在的に抗菌的な生体材料の研究を加速し、将来のインプラント関連感染症の新しい治療法の開発に貢献します。私たちの実験アプローチは、従来の研究環境で標準的な機器と簡単な手順で再現できるため、抗菌活性の背後にあるメカニズムの理解が深まります。
まず、麻酔をかけたマウスを手術用ベッドに置きます。10ミリリットルの注射器に滅菌空気を入れ、27ゲージの針を出口に取り付けます。次に、マウスの首の付け根をそっとつまんで持ち上げ、皮下組織と筋膜の間にスペースを作ります。
マウスの肩甲骨の間の正中線に針を置き、3ミリリットルの滅菌空気を皮下に注入してエアポーチを作成します。次に、サーマルパッドで温めたケージにマウスを戻します。2日ごとに3ミリリットルの滅菌空気を注入して、キャビティの膨張を維持し、成熟したパウチを作成します。
動物を麻酔した後、ブピバカインを皮下注射します。ポーチの上部に3ミリメートルの正中線の縦方向の切開を行い、接続されたワイヤーを含む18ゲージの針を穴からポーチに挿入します。25ゲージの脊髄針の内側の注射器を使用してワイヤーを押し出します。
18ゲージの針の先端をパウチ内に残し、内側のシリンダーをそっと取り外し、シリンジを使用してXen36培養物を慎重に注入します。すべての針を取り外し、創傷クリップを使用して皮膚を閉じ、局所皮膚接着剤で密封します。最後に、監視用にサーマルパッドで温めたケージにマウスを戻します。
クリスタルバイオレット染色は、観察可能な違いなしに両方のワイヤで一貫したバイオフィルム形成を示しました。溶存クリスタルバイオレットアッセイからの吸光度測定では、2本のワイヤー間の細菌負荷に統計的に有意な差は見られませんでした。16sリボソームRNAおよびLuxA遺伝子のコロニー形成単位計数および定量的PCR分析では、2本のワイヤ間の細菌負荷に統計的に有意な差は示されませんでした。
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本研究では、インプラント関連感染を調査するための新しいマウスモデルを提示し、同一条件下で2つのインプラントを同時に評価することを可能にしました。このアプローチにより、精密なバイオフィルム解析を通じて、バイオマテリアルの抗菌特性の評価を高めることができます。
外科用インプラントへのバイオフィルム形成の信頼性の高い定量化は、前臨床バイオマテリアル研究における極めて重要な課題である。&Dであり、抗菌有効性の予測信頼性に直接的な影響を及ぼします。この二重インプラントマウスモデルにより、均一な感染条件下で候補材料の制御された定量的比較が可能となり、生物学的ばらつきが低減され、強固なターゲットバリデーションが支援されます。このアプローチは、新規抗菌バイオマテリアルのメカニズム的なリスク低減に向けた再現性のある定量的なデータを提供することで、初期段階のポートフォリオ決定を強化します。
この二箇所インプラントマウスモデルは、抗菌バイオマテリアルの早期の定量的評価を可能にし、さらなる開発に向けたリード候補の優先順位付けを支援することで、創薬から前臨床に至る継続的なプロセスに統合されます。