Name: 光強度の変化にゼブラフィッシュの応答性を測定する行動アッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-10-03T00:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 39 s
Description: 学ぶ ゼブラフィッシュの視覚運動応答（VMR）アッセイによる光応答性測定法。Danio rerio幼生を用いて視覚機能を評価し、nrc変異体の視覚能力を解明する神経科学研究手法です。

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この作品は、健康補助金EY0081と5T32UY07145の国立研究所によってとテンプル騎士団の目の財団によってサポートされていました。ジェイソンRihelは、生命科学研究財団のブリストルスクイブ社のフェローである。

このプロトコルは、独自のラボでの光のインクリメントとデクリメントのゼブラフィッシュ幼生の視覚 - 運動反応を実行する手順を説明します。ゼブラフィッシュは、行動研究のための優れたモデルシステムである。彼らは保守が容易である、彼らは大規模なクラッチサイズを持っている、と彼らはすぐに開発する。例えば、ゼブラフィッシュ幼生の目は、開発の3日目で、彼らは驚愕反応を示すその時の光に敏感です。 第1部：96ウェルプレートにメッキ個々の魚<ol><li> 28で明/暗サイクル下でWT幼虫を育てる℃で少なくとも4日後に受精（DPF）になるまで。私たちの典型的なライト：暗サイクルは午前9時に開始し、そしてライトの10時間OFF、午後11:00に開始のライトの14時間です。最良の行動の結果を得るには、過密を避ける、我々は通常、単一のペトリ皿に50以上の幼虫を保つ。 </li><li> 4 DPF後は、ゼブラフィッシュは、96ウェルプレートに転送する準備が整いました。幼虫より水泳の部屋を与えるために、我々は一般的に650μlの大型よくサイズを96ウェルプレートを使用しますが、標準的な96ウェルプレートは問題なく動作。プラスチック製のトランスファーピペットを使用して、静かによくごとに幼虫を移す。 </li><li>ウェルに魚を転送した後、水の表面が井戸の上にほぼ平らになるように十分な魚の水を各ウェルに必要事項を記入してください。どちらもがあふれたり、アンダーフィルとの録音のカメラ用の光学問題を引き起こす可能性があります。また、ウェルに気泡を導入しないように注意してください。 </li></ol>パート2：記録装置の調査 プロトコルのこの部分については、コンポーネントを識別するためにフィルムを参照し、記録装置の私達の一連の設定をよく理解してください。 <ol><li>内側に録音室には96ウェルプレートの位置を明確に定義された場所です。 </li><li>カメラは背面に配置され、ボックスをオフにミラーを使用してプレートに焦点を当てています。これらのミラーの角度を所定の位置にミラーを保持するネジを回せば調整できます。 </li><li>記録室は、赤外線LEDで下から照らされている。これは、カメラが暗い場所でも魚を見ることができます。幼虫は赤外光を検出できないので、この定数IRの照明は、実験には影響しません。白色LEDは、下から録音室を照らす。彼らは、赤外光とは別に制御されます。上記または側面からの白色光とチャンバーを照らすことは確かに可能ですが、その場合には、注意が強いが、カメラを妨げる可能性が水面からglares避けるように注意する必要があります。 </li><li>数時間以上続くその実験のために、優しく、実験期間中、一定温度を維持するために流水でチャンバーを埋める。水の一定流量を達成する1つの方法は、典型的な水中水槽のヒーターで28℃に加熱され、小さな水槽のポンプでタンクから水をポンプすることです。 </li><li>部屋からの浮遊振動を最小限に抑えるために、全体の記録装置は、重いバランステーブルの上に座っているはず。 </li></ol>パート3：ビデオ追跡のコンピュータのグリッドと96ウェルプレートのアライメント ソフトウェア <ol><li>録音室に魚を含む96ウェルプレートを置きます。 </li><li>水浴を使用する場合は、徐々に水位をプレートの上にこぼれることなく調整するチャンスを与えて、水でプレートを置きます。また、水の流れを遮断する板を追加して、フローを再開する。また、場所に96ウェルプレートを保持するためにバネやゴムバンドを使用してください。 </li><li>視点Videotrackソフトウェアでは、あなたの実験のすべての幼虫が、コンピュータの画面上に表示されることを確認してください。ソフトウェアのコントロールを使用して、それぞれの魚がグリッドの正方形内になるようにしてプレートのウェルにビデオトラッキングソフトのグリッドに合わせます。トラッキングコンピュータは、コンピュータのグリッドがずれそうであれば、魚の動きの一部が失われる可能性があります、これらのボックスのそれぞれに別々の動きを計算されます。またはさらに悪い：2つの隣接する魚は、同じ領域を占有され、1魚としてカウントされる。このステップでは、すべてのレコーディングのために非常に重要です。 </li><li>整列後、プログラムライトがオンとオフに行く必要があるときのタイミング。我々は通常、ボックス内の光や暗順応の3時間がベースラインの活動レベルを得るためだけでなく、幼虫のピペット操作や取り扱いは、次の沈静化する機会を与えるために、両方が可能。ベースラインの後、我々のランプの30分で、代替は、ライトの30分でOFFに続いて、と数回繰り返す。 </li><li>次に、録音室のドアを閉じ、記録を開始します。 </li><li> （フィルムを参照して実際には、我々は、1秒当たりの各魚の活動を記録、しかし実際には視点のソフトウェアは、フレームデータがフレームを記録するデータ収集のデモンストレーションのため）。フレームあたりの最小ピクセルの変化のしきい値を設定すると、特定のカメラとライトの設定に多少左右されます。我々のセットアップのために、我々は通常、4ピクセルのしきい値を使用して、つまり、より少ない4ピクセルが変化している場合、それが背景とみなされます。以上の4ピクセルが移動している場合、それは魚が動いていることを示します。我々は経験的にこのカットは、ほとんどすべての幼虫の水泳やターンの動きを検出することを決定。 </li><li>録音ボックスはかなりよく幼虫を分離するにもかかわらず、部屋に光をオフにして、閉じるなどして開くドアを部屋で、ダンスパーティーを持っている、またはあなたのエクササイズを行うなど、機械的なノイズと中断を最小限にするように注意してください。 </li></ol>パート4：データの分析<ol><li>実験が完了すると、Excelシートにまたはあなたの好みの分析スイートに収集されたデータを転送する。 </li><li>添付のExcelシートは、データがどのようになるかの例です：それは、実験全体を通して、すべての魚のための秒あたりの各幼生の実験や活動の開始からの時間を秒単位（で補足ファイルのサンプルデータを参照して含まれていますこのページのファイル]セクション）。 </li><li>図1は、単一の幼虫の活動の例を示しています。図2は、40重量ゼブラフィッシュの幼虫の平均の代表的なトレースです。で平均化し、OFF応答が顕著と一致している。 <img src="/files/ftp_upload/old/923_2008_9_26_9/923_Figure-02.png" alt="図1" width="569" height="398"> 図1：単一の魚の活性のONとOFFを光で30分の交互の期間に対応する5 DPFでの単一WT魚の活動。。応答にある黒い矢印と赤矢印とOFF応答で示されます。 <img src="/files/ftp_upload/old/923_2008_9_26_11/923_Figure-03.png" alt="図2" width="577" height="387"> 図2：40尾の平均活動のONとOFFを光で30分の交互の期間に対応する5 DPFで40 WT魚の平均活動。。で平均化（黒矢印）とOFF（赤矢印）の応答が顕著と一致している。 </li></ol> 5。代表的な結果図3は、我々の実験のすべてで使用されている実験的な輪郭の概略図概略です。 <img src="/files/ftp_upload/old/923_2008_9_26_12/923_Figure-04.png" alt="図3" width="530" height="479"> 図3。視覚運動反応（VMR）試験の実験的なデザイン。）個々の魚は、録音室で96ウェルプレートに配置されます。それぞれの魚の活性は、毎秒測定されます。 B）魚は、それらを解決するために、ベースラインの活動レベルを得るために暗または明順応の期間を与えられている。 ONとOFFの点灯30分ライトの期間は、3時間の合計のために連続して導入されています。この図は、プローバら、2006から翻案されました。 視覚運動応答のグラフは、どのようなものでしょうか？ 我々は、光のインクリメントとデクリメントのWT魚のONとOFFの応答を測定した。これらの応答は、眼の機能に依存していたことを確認するために、我々はどんな目を発症しないCHK変異体の活性を測定した。図4は、WT、動物だけでなく、CHKの変異体から得られた平均的な活動を示しています。 <img src="/files/ftp_upload/old/923_2008_9_26_13/923_Figure-05.png" alt="図4" width="489" height="212"> 図4：。WT魚は、横方向の目によって媒介される応答のONとOFFを明確に持つ 5 DPFにおけるゼブラフィッシュ幼生の運動行動の光の30分ONと光のOFFの30分への応答では毎秒記録されます。各トレースは、120個々のWT（青のトレース）または3つの実験にわたって記録されたCHK変異体の幼虫（オレンジ色のトレース）から480応答の平均を表しています。 CHKの変異は著しく、光増分または減分のどちらかにその活性を高め、活動の低いベースラインのレベルを持っていない。この図は、Emranら、2007年から適応されました。 NRC変異魚から視覚運動応答 。 NRC変異体は、OKRのテストに基づいて完全にブラインドと考えられていた。 NRC変異体では、光受容体端末が正しく形成されず、視覚的な経路上で深刻な1を危険にさらされます。これらの変異魚から網膜神経節細胞のレコーディングは、彼らは主にOFF型神経節細胞応答、何らかの異常なON - OFFが、2オンタイプの応答がない純粋を示すことを明らかにした。 VMRのテストを使用して、我々はNRC変異体は、通常のオフ応答と遅延と低迷ON -応答を有することを示した（SEeは、図5）。従って、NRC変異体は、以前に考えられていた2のような全盲ではない。 <img src="/files/ftp_upload/old/923_2008_9_26_14/923_Figure-06.png" alt="図5" width="591" height="244"> 図5：NRCのmutatsは光強度の変化に応じてその活性を増加させる行動反応はWTと5 DPFにおけるNRC変異幼虫からの光とOFFする。。各トレースは、各遺伝子型から120個々の魚から480応答の平均を表しています。 NRCの変異体の平均的な運動挙動（ピンクのトレースは）若干としてWT魚（青のトレース）に比べて減少したが、刺激OFF光に続く活発なままです。 WT魚の応答に光に比べてに光にNRC変異体の応答の遅い立ち上がり時間に注意してください。

<ol><li>Allwardt, A. B., Lall, B. A., Brockerhoff, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synapse+formation+is+arrested+in+retinal+photoreceptors+of+the+zebrafish+nrc+mutant%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Synapse formation is arrested in retinal photoreceptors of the zebrafish nrc mutant.</a> J Neurosci. 21, 2330-2330 (2001).</li>
<li>Emran, F., Rihel, J., Adolph, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((OFF+ganglion+cells+cannot+drive+the+optokinetic+reflex+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">OFF ganglion cells cannot drive the optokinetic reflex in zebrafish.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 19126-19126 (2007).</li>
<li>Prober, D. A., Rihel, J., Onah, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hypocretin%2Forexin+overexpression+induces+an+insomnia-like+phenotype+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Hypocretin/orexin overexpression induces an insomnia-like phenotype in zebrafish.</a> J Neurosci. 26, 13400-13400 (2006).</li>
<li>Westerfield, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWesterfield%2C+M+%22The+zebrafish+book%3A+a+guide+for+the+laboratory+use+of+zebrafish%22">The zebrafish book: a guide for the laboratory use of zebrafish</a>. , University of Oregon Press. Eugene, OR. (2000).</li>
</ol>

我々は映画の中で示す実験手順はWT魚のすべての代表的なものである。しかし、これらの実験は、（代表的な結果のセクションを参照）だけでなく、変異体の魚で同様に行うことができます。我々は、最適制御の目的のためにチェッカーボードのアウトラインで、同じプレート上にプレートWTの魚や変異体の魚に示唆している。 WTの魚と同じプレート上に変異魚を使用する際に魚の種類は、各ウェルに播種されたものを書き留めていることを確認してください。ここで（データシートでノートブックを表示する）各ウェルに播種魚を追跡する方法についての提案です。 また、それは一日の同じ時間に特定の実験の繰り返しを行うのが最も良いです。あなたが午後12時（正午）でベースラインの活性を得るために3時間の暗順応を開始する場合は、たとえば、[データの次のセットのために、同時に同じ実験を繰り返す。 また、魚のように日中は実験を行う夜の間に対日中強度の変化を明らかに、より積極的かつ応答性を示します。 我々は、視点のライフサイエンスから量子化モードでVideotrackソフトウェアを使用する。しかし、Noldus.OrからEthoVisionを含む他のcomerically利用できる...

<table><tbody><tr><td>マイクロプレート</td><td>器具</td><td>Whatman, GE Healthcare</td><td>7701-1651</td><td></td></tr><tr><td>転送ピペット</td><td>器具</td><td>VWR international</td><td>202205</td><td></td></tr><tr><td>魚飼育水</td><td>試薬</td><td></td><td></td><td>参考文献#4を参照</td></tr><tr><td>記録チャンバー (Zebrabox)</td><td>器具</td><td>Viewpoint Lifesciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Videotrack ソフトウェア</td><td>器具</td><td>Viewpoint Lifesciences</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

光強度の変化にゼブラフィッシュの応答性を測定する行動アッセイ

A Behavioral Assay to Measure Responsiveness of Zebrafish to Changes in Light Intensities 

視覚性運動反射（OKR）は、基本的な視覚的な反射がほとんどの脊椎動物で展示し、ビジュアルシーンの相対目を安定させる上で重要な役割を果たしています。しかし、OKRは動物が移動するストライプを検出する必要があります、それはOKRを示すために失敗した魚は完全に盲目ではないかもしれないという可能性があります。一つのゼブラフィッシュ変異体では、ない視運動性応答C（NRC）は、どんな光の条件下ではOKRはテストされていないので、完全に盲目であることが報告された。以前は、我々は、OFF -神経節細胞の活動がこれらの変異体に記録されることが示されている。このようなNRC変異体のような無OKR持つ変異体の魚たちは視覚的な運動行動試験（VMR）を開発したシンプルな光のインクリメントとデクリメントを検出できるかどうかを判断する。このアッセイでは、単一のゼブラフィッシュの幼虫は、自動化されたビデオトラッキングシステムを使用して幼虫の同時モニタリングを可能にする96ウェルプレートの各ウェルに配置されます。ライトON、30分および30分の光をOFFに各幼虫の運動応答を記録し、定量した。 WTの魚は、下げるよりも、ベースラインの活動復帰が続く驚愕反応として知られているONライト、、時のモータ動作の短いスパイクを持って凍結と呼ばれる。 WTの魚は（数分以上）ベースラインの自発運動への復帰をも大幅に照明をOFFにした直後に、その運動活性を増加させ、徐々にしか。 NRCの変異体はWT魚として消えていると同じように応答しますが、WT魚と比較してそれらの平均の活性のわずかな減少を示す。 NRC変異体ではON光に反応して運動能力が遅れ、低迷しています。応答にWT光と比較してのライトにNRC変異体の応答の遅い立ち上がり時間があります。結果は、NRCの魚は完全に盲目ではないことを示している。硬骨は非網膜組織を介して光を検出できるため、我々は、光強度の変化への迅速な行動反応が完全に開発の初期段階から目を欠くchokh（CHK）変異体を、使用して無傷の目を必要とすることを確認した。私たちのVMRのアッセイでは、CHKの変異体は、横方向の目はこの動作を仲介することを示す、ONまたはOFFの光のどちらにも驚愕反応を示さない。 VMRアッセイは、ここで説明する光強度の変化に対応するためにゼブラフィッシュ幼生の能力をテストしていない十分に確立されたOKRアッセイを、補完する。また、VMRアッセイの自動化は、視覚的な反応を駆動する光の強度の欠陥のためのハイスループットスクリーニングに適しています。

我々は光をインクリメントおよびデクリメントに対応して幼虫のゼブラフィッシュのモータ出力を定量化するために視覚運動応答を開発した。我々はまた別のビジョンアッセイ、視覚性運動反射によってテストするときに完全に盲目であると思われた視運動性応答（NRC）変異体、何を含めていないゼブラフィッシュのビジョンの変異を調べた。

視覚運動反射（OKR）は、ほとんどの脊椎動物に見られる基本的な視覚反射であり、...に対する眼球の安定化において重要な役割を果たしています。

Dowling研究室では、ゼブラフィッシュの網膜の生理学および発生について研究しており、運動を検出できないゼブラフィッシュの変異体が、光を検出でき、盲目ではないかどうかを明らかにすることを目指しています。これを検証するために、視覚運動反応（VMR）をテストします。ゼブラフィッシュは受精後約4日で回収します。それらを96ウェルプレートに配置し、適切なイメージング装置を準備してビデオトラッキングソフトウェアをプレートに合わせ、明から暗、または暗から明への移行後の魚の運動反応を追跡します。これをVMRと呼びます。こんにちは、ハーバード大学分子細胞生物学部、ジョン・ダウリング研究室のファリダ・イムランです。私はジェイソン・リオです。ハーバード大学の分子細胞生物学部門にあるアレクサンダー・シア研究室に所属しています。本日は、光の増減に対するゼブラフィッシュの視覚運動反応について解説します。それでは始めていきましょう。視覚運動反応アッセイを開始するために、まず野生型ゼブラフィッシュの胚を28 °Cの明暗サイクル下で、受精後少なくとも4日目まで育成します。最適な行動結果を得るための一般的な明暗サイクルは、午前9時から14時間の点灯、午後11時から10時間の消灯としています。幼魚が高密度になりすぎないように注意してください。通常、1枚のペトリ皿につき50匹以下の幼魚で飼育します。受精から5日後、幼魚が十分に泳げるスペースを確保するため、ゼブラフィッシュをウェルサイズ650 µLの96ウェルプレートに移します。プラスチック製転送ピペットを用いて、ウェルあたり1匹の幼魚を慎重に移動させます。魚をウェルに移動させた後、水面がウェルの上端とほぼ同じ高さになるまで、各ウェルに十分な魚用水を満たします。記録用カメラの光学的な問題を防ぐため、ウェルへの注水量が多すぎたり少なすぎたりしないよう注意してください。また、ウェル内に気泡が入らないように注意してください。これで、光と暗に対する魚の運動反応を観察する準備が整いました。プレートに配置したゼブラフィッシュを記録装置まで運びましょう。それでは、記録装置について概観していきましょう。魚が入った96ウェルプレートを、こちらの白いトレイにある記録チャンバー内に配置し、スプリングまたはゴムバンドで固定します。カメラはこちらのボックスの背面に配置されており、ここにあるボックス上部のミラーを使用してプレートに焦点を合わせています。これらのミラーの角度は、ミラーを固定しているネジを回すことで調整できます。記録チャンバーは底部から赤外線LEDによって照らされます。これにより、暗所においてもカメラで魚を記録することが可能です。幼虫は赤外線（IR）を検知できないため、この持続的なIR照射は実験に影響を与えません。また、白色LEDによって記録チャンバーの下方からも照明が行われます。数時間以上にわたって実施される実験の場合、白色LEDはIRライトとは別に制御されます。実験期間中、温度を一定に保つために、チャンバー内に緩やかに水を流して満たすことができます。水は小型の水槽用ポンプによってリザーバーから送られ、一般的な水槽用水中ヒーターで28 °Cに加熱されます。水は大きな排水口から排出され、室内の不要な振動を最小限に抑えるためにリザーバーへ再循環されます。記録ユニット全体を重量バランステーブルの上に設置します。記録装置の準備が整ったら、ボックスの蓋で動物を覆い、光からさらに遮断します。それでは、96の調整に進みましょう。ビデオトラッキングソフトウェアのコンピューターグリッドに合わせて、魚が入った96ウェルプレートを記録チャンバーに設置します。長期実験のためにウォーターバスを使用する場合は、プレートに水がこぼれないよう、水位を調整しながらゆっくりとプレートを水に入れます。ViewPointビデオトラッキングソフトウェアで、すべての稚魚と実験範囲がコンピューター画面に表示されていることを確認してください。ソフトウェアのコントロールを使用して、ビデオトラッキングソフトウェアのグリッドを96ウェルプレートのウェルに合わせて、各個体がグリッドの正方形の中に収まるように調整します。この手順は、すべての記録において非常に重要です。トラッキングコンピュータは、これらのボックスごとに個別に移動を計算します。したがって、コンピューター上のグリッドの配置を誤ると、魚の動きの一部が失われたり、さらに悪い場合には、隣接する2匹の魚が同じエリアに配置され、アライメント後に1匹としてカウントされたりする可能性があります。照明のオン・オフのタイミングは、コンピューターにプログラムされています。通常、ボックス内で3時間の緩やかな暗順応を行います。これにより、ベースラインの活動レベルを得られるだけでなく、ピぺッティングやハンドリング後の幼虫を落ち着かせることができます。次に、記録チャンバーのドアを閉め、記録を開始します。実際には、魚1匹あたりの活動を1秒単位で記録していますが、ビューポイントソフトウェアでは実際にはフレームごとのデータを記録しています。以下に、魚1匹のリアルタイムトレース画面を示します。ピクセル移動に関して、白線はピクセル変化数が設定しきい値を下回っていることを示し、緑線はピクセル変化がしきい値設定を上回っていることを示しています。閾値は、使用するカメラや照明の設定によって多少異なります。本セットアップでは、通常4ピクセルの閾値を使用しています。つまり、変化しているピクセルが4ピクセル未満である場合は、背景であるとみなされます。4ピクセルを超えて移動している場合は、魚が移動していることを示します。このカットオフ値を採用することで、幼魚の泳ぎや旋回動作のほぼすべてを検出できることを経験的に決定しました。録画ボックスによって幼魚はかなりうまく隔離されていますが、それでも室内の照明を消し、室内のドアの開閉や、ダンスパーティー、エクササイズなどの機械的なノイズによる妨げを最小限に抑えるよう注意を払います。実験完了後、収集したデータをExcelシートまたは任意の解析ソフトウェアに転送します。これがデータの形式です。ここには、実験開始からの時間（秒）と、1秒あたりの各幼虫の活動量が記録されています。ここでは、実験期間全体における単一の幼魚の活動を示すグラフを提示します。グラフ上の矢印は、いくつかのオンおよびオフ反応を示しています。このグラフは、実験期間全体における魚40匹の平均活動を示しており、矢印で示されているように、いくつかのオンおよびオフ反応が認められます。見ての通り、オンおよびオフ反応は顕著かつ一貫しています。この視覚運動反応実験は、変異魚を用いて行うことも可能です。これらの研究では、最適な対照を設けるため、通常、野生型魚と変異魚を同一プレート上にチェッカーボード状に配置します。同一プレートに野生型魚と変異魚を混在させて使用する場合は、各ウェルにどのタイプの魚を配置したかを必ず記録してください。各ウェルに分注した魚を追跡する方法について提案します。さて、こちらが野生型と変異型の幼魚を比較した視覚運動反応の結果です。ここでも、野生型幼魚からは顕著かつ一貫したオン・オフ反応が見られます。しかしながら、眼の発達を欠くchalk変異体幼虫は、光の増加または減少のいずれに対しても活動性を有意に増加させず、ベースラインの活動レベルも低くなります。これらの結果は、野生型の反応を、NRC変異体とも呼ばれるNO OKR変異体と比較したものです。NRC変異体は、OKRテストに基づき、完全に盲目であると考えられていました。VMRテストを用いて、NRC変異体は正常なオフ応答を示す一方で、オン応答は遅延し緩慢であることを実証します。したがって、NRC変異体は以前に考えられていたように完全に盲目であるわけではありません。ここまで、光の増減に対するゼブラフィッシュlabateの視覚運動反応について説明しました。本手順を行う際は、魚は夜間よりも日中の方が活動的であり、光強度の変化に対する反応も良いため、実験を日中に行うことが重要であるという点に留意してください。以上です。ご視聴ありがとうございました。皆様の実験の成功をお祈りいたします。

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