방법 논문

치료용 바이러스 생산 상피세포의 생산 및 수확

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2026년 9월 30일

이 논문에서

초록

면역조절제를 인코딩하는 바이러스 벡터의 복제 및 세포독성 능력 결정 생성된 재조합 바이러스와 수정되지 않은 벡터의 복제 역학을 단일 단계 또는 다단계 성장 곡선(GC)으로 비교하십시오. 단일 단계 GC의 경우, 모든 세포를 동시에 감염시킨 후(이론적으로 100% 감염) 바이러스 자손을 평가합니다. 다단계 GC는 낮은 비율의 세포 감염에서 시작하여 여러 차례의 바이러스 복제 과정을 추적합니다. 홍역 바이러스의 복제 역학 분석을 위해, 감염 전날 12-웰 플레이트의 웰당 10% FBS(소태아 혈청)가 포함된 1mL의 DMEM(Dulbecco's Modified Eagle Medium)에 1 x 10^5개의 Vero 세포를 분주하십시오. 관심 있는 각 시간대별로 최소 두 개의 웰을 기술적 반복구로 준비하십시오. Vero 세포에서의 복제를 위해, 다단계 GC의 경우에는 낮은 MOI(감염 다중도)로, 단일 단계 GC의 경우에는 높은 MOI로 세포를 감염시키십시오(MV 또는 홍역 바이러스의 경우 각각 0.03 및 3). 배지를 각각의 바이러스 양이 포함된 300µL의 무혈청 배지로 교체하고 37°C, 5% CO2 조건에서 최소 2시간 동안 배양하십시오. 접종액을 제거하고 10% FBS가 포함된 1mL의 DMEM을 추가한 후 배양을 계속하십시오. 감염 후 12, 24, 36, 48, 72, 96시간과 같은 관련 시간대에, 세포를 배지로 직접 긁어내어 바이러스 자손을 수확하십시오. 각 웰의 내용물을 개별 튜브로 옮기고 액체 질소로 급속 냉동한 후, 적정 전까지 -80°C에서 보관하십시오. 참고: 평균 역가 분석을 위해 이 단계에서 반복 시료를 합칠 수 있습니다. 모든 시간대의 시료를 수집하십시오. 바이러스 자손 평가를 위해 37°C에서 동시에 해동하십시오. 볼텍싱 후 2,500 x g, 4°C에서 5분간 원심 분리하여 세포 파편을 펠렛화하십시오. 위에서 설명한 대로 각 제작물 및 시간대의 평균 역가를 계산하십시오. 시간에 따른 역가를 도식화하십시오. 외래 유전자가 삽입된 벡터와 삽입되지 않은 벡터, 서로 다른 외래 유전자가 삽입된 벡터, 또는 서로 다른 위치에 외래 유전자가 삽입된 벡터의 성장 곡선을 비교하십시오(그림 1 참조). Heidbuechel, J. P., 외 등종양 표적 면역 조절을 위한 파라믹소바이러스: 설계 및 엑스 비보(Ex Vivo) 평가. J. Vis. Exp. (2019).

이 영상에서는 바이러스 복제를 연구하기 위해 유전적으로 조작된 바이러스를 신장 상피 세포에 감염시켜 생산하고 수확하는 과정을 보여줍니다.

프로토콜

  1. 면역 조절제를 인코딩하는 바이러스 벡터의 복제 및 세포 독성 능력 결정

생성된 재조합 바이러스와 변형되지 않은 벡터의 복제 역학을 단일 단계 또는 다단계 성장 곡선(GC)을 통해 비교합니다. 단일 단계 GC의 경우, 모든 세포에 동시 감염(이론적으로 100% 감염)시킨 후 바이러스 자손을 평가합니다. 다단계 GC는 낮은 비율의 감염 세포에서 시작하여 여러 차례의 바이러스 복제 과정을 추적합니다.

  1. 홍역 바이러스의 복제 역학 분석을 위해, 감염 전날 12-웰 플레이트의 웰당 1 mL의 10% FBS (fetal bovine serum) 함유 DMEM (dulbecco’s modified eagle medium)에 1 x 105 Vero 세포를 접종합니다. 관심 있는 각 시간점당 최소 두 개의 웰을 기술적 반복군으로 플레이팅합니다.
  2. Vero 세포에서의 복제를 위해, 다단계 성장 곡선(GC)의 경우 낮은 MOI (multiplicity of infection)로, 단일 단계 성장 곡선의 경우 높은 MOI로 세포를 감염시킵니다 (MV 또는 홍역 바이러스의 경우 각각 0.03 및 3). 배지를 각각의 바이러스 양이 포함된 300 µL의 무혈청 배지로 교체하고 37 °C 및 5% CO2에서 최소 2시간 동안 배양합니다. 접종액을 제거하고 10% FBS 함유 DMEM 1 mL를 첨가한 후 배양을 계속합니다.
  3. 감염 후 12, 24, 36, 48, 72, 96시간과 같은 관련 시간점에, 세포를 배지로 직접 긁어내어 바이러스 자손을 수확합니다. 각 웰의 내용물을 개별 튜브로 옮겨 액체 질소에서 급속 냉동하고, 역가 측정 시까지 -80 °C에 보관합니다.
    참고: 평균 역가 분석을 위해 이 단계에서 반복 시료를 통합할 수 있습니다.
  4. 모든 시간점의 시료를 수집합니다. 바이러스 자손 평가를 위해 37 °C에서 동시에 해동합니다. 볼텍싱 후 2,500 x g, 4 °C에서 5분 동안 원심분리하여 세포 파편을 펠렛화합니다.
  5. 위에서 설명한 대로 각 제작물과 시간점의 평균 역가를 계산합니다. 시간에 따른 역가를 그래프로 그립니다. 외래 유전자가 삽입되지 않은 벡터와 삽입된 벡터, 서로 다른 외래 유전자가 삽입된 벡터, 또는 외래 유전자가 서로 다른 위치에 삽입된 벡터의 성장 곡선을 비교합니다 (그림 1 참조).

결과

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그림 1: 재조합 홍역 바이러스의 복제 역학 및 용해 활성. (A) 변형되지 않은 온콜리틱 홍역 바이러스(MV) 또는 이중특이적 T 세포 인게이저를 인코딩하는 홍역 바이러스(MV-H-mCD3xhCD20)를 MOI 1로 Vero 세포에 감염시킨 후 단일 단계 성장 곡선을 생성하였다. 감염 후 지정된 시점에서 바이러스 자손의 역가를 평가하였으며, 유사한 바이러스 복제 역학을 나타냈다. 8개 샘플(시점당 2회의 생물학적 반복 실험에 대해 각각 4회의 기술적 반복 실험 수행)의 평균값과 표준편차가 표시되어 있다. (B) 인간 암태아성 항원 및 MV 수용체 CD46을 안정적으로 발현하는 MC38 마우스 대장암 세포(MC38-CEA-CD46)에 배지만(mock) 또는 표시된 바이러스를 MOI 1로 접종한 후 세포 생존율을 평가하였다. 표시된 시점에서 XTT 세포 생존율 분석을 수행하였다. 변형되지 않은 벡터의 경우 더 이른 시점에서 세포 생존율 감소가 관찰되었다. MV-H-mCD3xhCD20의 12 h 시점에서 계산된 것과 같이 100%를 초과하는 값은 감염 직후에 빈번하게 관찰되며, 이는 세포 스트레스 또는 바이러스 현탁액에 존재하는 세포 유래 인자로 인한 것일 수 있다. 각 시점에 대해 3회의 기술적 반복 실험의 평균값과 표준편차가 표시되어 있다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM)Invitrogen, Darmstadt, Germany31966-021Vero 세포의 시딩 및 감염에 사용
Fetal Bovine Serum (FBS)Biosera, Boussens, FranceFB-1280/500DMEM 보충용
Vero 세포ATCC, Manassas, VA, USACCL81홍역 바이러스 증식 및 분석을 위한 숙주 세포
12-well platesNeolab, Heidelberg, Germany353043Vero 세포 시딩용 (well당 1 × 10⁵)
Opti-MEM (무혈청 배지)Gibco Life Technologies, Darmstadt, Germany31985070바이러스 감염 단계용 (무혈청 배양)
Phosphate-Buffered Saline (PBS)Gibco Life Technologies, Darmstadt, Germany14190-094세척 및 배지 준비용
Cell lifterCorning, Reynosa, Mexico3008수확 시 감염된 세포를 긁어내는 데 사용
50 mL tubesnerbe plus, Winsen/Luhe, Germany02-572-3001시료 수집 및 원심분리용
액체 질소——수확한 바이러스 시료의 급속 냉동용
원심분리기 (2,500 × g 가능)——세포 잔해 침전용
XTT Cell Viability Kit (Colorimetric Cell Viability Kit III)PromoKine, Heidelberg, GermanyPK-CA20-300-1000XTT 시약 포함; 세포 독성 측정용
96-well plates, flat-bottomNeolab, Heidelberg, Germany353072450 nm에서 흡광도 측정용
분광광도계 / 마이크로플레이트 리더——450 nm에서 광학 흡광도 측정용 (기준 630 nm)
이산화탄소 배양기——모든 세포 배양을 위한 37 °C, 5% CO₂

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