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방법 논문

피하 Muscarinic Antagonists의 관리 및 마우스에 Levator Auris의 Longus 근육의 트리플 - Immunostaining

13.4K 조회수

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DOI:

10.3791/3124

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2011년 9월 8일

이 논문에서

요약

우리는 levator auris의 longus (랄) 젊은 성인 마우스의 근육을 muscarinic 신호의 억제제의 반복 관리와 wholemounts 년에 신경근육학 분기점의 후속 immunostaining (NMJs)에 대한 절차를 설명합니다. 랄 근육이 공개에 대해 고유한 장점이 있습니다 생체내에 약리 효과.

초록

이러한 gastrocnemius 및 정강뼈 앞쪽에 같은 설치류 동물, 뒷다리의 사지 근육은 자주 포유 동물 NMJs의 형성 및 유지에 필수적인 신호의 생체내 약리 연구에 사용됩니다. 그러나, 피하 또는 근육 관리 후이 근육에 약물 침투가 종종 불완전하거나 고르지이며 많은 NMJs는 영향을받지 남아있을 수 있습니다. 이러한 미니 펌프와 같은 장치와 함께 체계적인 관리가 spatiotemporal 효과를 향상시킬 수 있지만,이 방법의 침략 자연 혼란함을 주죠 염증 반응 및 / 또는 직접 근육 손상을 일으킬 수 있습니다. 그것이 시간이 많이 걸리는 시리얼 sectioning 및 광범위한 immunostaining을 필요로하기 때문에 또한 뒷다리 근육에 NMJs 완벽하게 분석 도전이다.

마우스 랄은 목 dorsum에 피상적으로있는 근육의 얇은 평면 시트입니다. 이 기능은 날개를 이동하는 빠른 트위치 근육이다. 이것은 두개골의 정중선에서 발생한 각 날개의 연골 부분에 옆으로 확장 주동이의와 꼬리 부분을 포함하고 있습니다. 근육은 그것이 종료 stylomastoid 구멍을 같은 caudally 프로젝트 안면 신경의 한 분과로 제공됩니다. 우리와 다른 NMJs 및 근육에 약물의 생체내 효과의 단기 및 장기 모두의 조사에 대한 이점을 제공하는 편리 준비하는 랄 발견했다. 첫째, 그 표면 위치는 가벼운 마취 약품의 여러 지역의 애플 리케이션을 용이하게합니다. 둘째, 그 두께 (근육 섬유로부터 2-3 층)은 근육 내의 거의 모든 NMJs의 시각화 및 분석을 수 있습니다. 셋째, 그 innervation의 패턴과 함께 자사의 신경 손상으로 해부의 용이성은 체외 9,5에 보충 electrophysiological 분석이 이루어질 수 있습니다. 아마도 마지막으로, 그리고 가장 중요한, 작은 볼륨 적용 (~ 50μl)는 쉽게 전체 근육의 표면을 커버 약물에 모든 NMJs의 유니폼 및 장기 노출을 제공하고 체계적인 접근 1,8의 필요성을 없애줍니다.

프로토콜

1. muscarinic 아세틸콜린 수용체 (mAChR) antagonists의 피하 관리

  1. 1.5mL 반응 관에 멸균 생리 식염수에 마약을 분해하여 무균 조건 mAChR 길항제의 적절한 복용량 (참조하라, 테이블)에서 준비합니다. 다음 antagonists 사용되었습니다 아트로 핀, Methoctramine, 4 축축한, AFDX - 116, AFDX - 384, MT 7.
  2. a1cc 인슐린 주사기로 솔루션의 50μl를 그려 각 마우스에 대해 별도의 주사기를 사용합니다. 또한 전용 컨트롤 그룹에있는 각 마우스에 대한 생리 식염수가 들어있는 주사기가 준비합니다. 주입 준비까지 얼음에 주사기 보관하십시오.
  3. 핀치를 발끝에 응답의 부족을 관찰하여 적절한 마취 심도를 확인 케타민을 - xylazine 칵테일 (120 MG / kg 마취제, 8 MG / kg xylazine)와 생쥐를 마취.
  4. 적절한 진정제를 맞았 후, 목 꼬리 영역에 머리의 주동이의 영역을 다루는 면도를 70 % 에탄올로 떨어져 머리를 나머지 닦으십시오.
  5. 플레이스 stereomicroscope 아래의 마우스, 그리고 주사기 (그림 1A, B)의 바늘에 가볍게 위로 당기면서 랄 근육에 주사 바늘 평행를 삽입합니다. 이....

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토론

여기서 제시하는 방법은 포유 동물 NMJs의 안정성과 유지 보수에 신호 subtype 특정 mAChR의 이전에 인식되지 않는 역할의 조사를 허용합니다. 이 방법은 또한 neurotrophic 요인과 약리 대리인의 효과를 테스트하기 위해 도움이 될 것입니다. 예를 들어, 저희 연구실은 Ciliary Neurotrophic 팩터 (CNTF)는 성인 생쥐의 거의 모든 랄 신경 터미널에서 돋아 elicited 것으로 나타났습니다 1 . 이 결과는 CA에서 돋아 중간보고 CNTF - 대우 뒷다리 사지 근육의 사전 연구와 대조. gluteus 및 측면 gastrocnemius 분기점 3의 9 %에서 13~33%. 우리는 차이가 뒷다리 근육보다 랄에 CNTF에 신경 터미널보다 균일한 및 장기 노출에 의한 있다고 생각했습니다. 실제로, 우리가 수평 gastrocnemius 및 광범위한 거의 모든 랄 NMJs에서 돋아을 elicited 동일한 프로토콜을 사용 정강뼈 앞쪽에 근육에 CNTF 적용하면, 우리는 약한.......

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공개 사항

관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

감사의 글

이 작품은 근육질 영양 장애 협회, NIH (NS062320)에 의해 지원되었다.

....

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
시약의 이름 회사 카탈로그 번호 댓글
마취제 Hospira NDC0409 - 2051-05 복용량 : 120mg/kg
xylazine 로이드 레버 토리스 LA33806 복용량 : 8mg/kg
아트로 핀 시그마 - 알드리치 A0132 (> 98 % 순도); 복용 : 0.2mg/kg - 20mg/kg
아트로 핀 보이트 글로벌 유통 AT105 제약 학년
Methoctramine 시그마 - 알드리치 M105 복용량 : 100 - 400M
4 - 습기 시그마 - 알드리치 D142 복용량 : 2.5mg/kg
AFDX - 116 Bioscience Tocris 1105 250M
AFDX - 384 Bioscience Tocris 1345 50M - 500 미터
MT 7 펩티드 국제 PMT - 4340 - S 0.1M - 1M
1X 인산은 살린, 산도 7.4 버퍼 Invitrogen 10010049
Paraformaldehyde 어부 T353 - 500 10g/100mL 드 이온화 증류수를 용해하여 처음 10 %의 솔루션을 만들어, 1X PBS로 4 % 수 있도록, 7.4으로 산도를 조절
pentobarbitol 나트륨 Virbac 동물 보건 NDC - 051311 - 050-01 복용량 : 390mg/kg
Sylgard 다우 코닝 부품 # 184 필요에 따라 (30mm, 60mm, 100mm) 크기의 여러 문화 요리를 사용할 수 키트와 함께 지시 사항을 따르십시오
0.1M 글리신 시그마 - 알드리치 G - 7126 추가 2% BSA / PBS의 0.185g을 25mL
2퍼센트 소 혈청 알부민 (2 % BSA) 시그마 - 알드리치 A3059 - 100g 1X PBS의 100mL에 2g BSA를 디졸브
2퍼센트에서 0.2 % 트리톤 X100 BSA / PBS (차단 버퍼) 시그마 - 알드리치 T9284 - 100mL 0.2ml/100mL 2% BSA / PBS를 디졸브
α - bungarotoxin Invitrogen T1175 1:200의 농도에서 사용
SMI - 312 Sternberger의 Monoclonals SMI312 1:1000의 농도에서 사용
SV2 발달 연구 브리 도마 뱅크 SV2 - 뜨는 1시 10분의 농도에서 사용
S100 Dako Z0311 1:400의 농도에서 사용
FITC - 염소 방지 마우스 IgG1 로체 03117731001 1:200의 농도에서 사용하지만, 배경이 높으면, 1:400을 시도
알렉사 - 플루어 647 복합 염소 안티 - 토끼 Invitrogen A21244 1:200의 농도에서 사용
Vectashield 형광 설치 미디어 벡터 실험실 H - 1000 이것은 하드 세트 미디어 아니라, 당신이 투명 매니큐어로 커버 슬립을 확보해야합니다.
소형 스프링 가위 파인 과학 도구 15002-08
해부의 포셉 파인 과학 도구 11295-51

참고문헌

  1. Wright, M. C., Son, Y. J. Ciliary neurotrophic factor is not required for terminal sprouting and compensatory reinnervation of neuromuscular synapses: re-evaluation of CNTF null mice. Exp Neurol. 205, 437-448 (2007).
  2. Gurney, M. E., Yamamoto, H., Kwon, Y.

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