Name: Hindlimb 국소 빈혈의 치료를위한 배아 줄기 세포 유래 내피 세포 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-01-23T00:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 11 s
Description: 배우세요 배아 줄기 세포 유래 내피 세포를 이용한 후지 국소 빈혈 치료 방법을. 생체 발광 이미징으로 세포를 비침습적으로 추적하여 말초 동맥 질환 치료 가능성을 평가합니다.

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저자 안드레아 액스텔, 사토시 이토, MD, 제프 Velotta, MD, 그랜트 호이트, 로버트 C. 로빈스, MD, 진 유, MD, 팀 도일, 박사, 그리고 기술 지원을위한 스탠포드 작은 동물 이미징 핵심 주셔서 감사합니다. 저자는 또한, 수의 장비의 지원을 오전 비크포드 (주) 감사합니다. 이 연구는 국립 보건원에서 연구 기금 (R01 HL - 75774, R01 CA098303, R21 HL085743, 1K12 HL087746), 캘리포니아 대학 (15IT - 0257 및 1514RT - 0169)의 캘리포니아 담배 관련 질병 연구 프로그램에 의해 지원되었다 및 재생 의료 (RS1 - 00183)의 캘리포니아 연구소. NH는 미국 심장 협회에서 친교에 의해 지원됩니다. 심장 협회 수 있습니다.

1. 내피 세포에 murine ESCs의 분화 <ol><li> 내피 세포에 ESCs을 차별에 대한 프로토콜은 다른 설명이 프로토콜 2,3의 초점이 아닙니다. 간단히, 세포가 차별 허용, 그리고 CD31 또는 혈관 내피 cadherin (VE - cadherin)로 내피 표시 양성 반응 세포는 다음 형광 활성 세포 분류 (외과)에 의해 정화하고 있습니다. </li></ol> 2. 더블 퓨전 리포터 유전자와 Lentiviral 도입 구축 <ol><li> Bioluminescence 그러한 반딧불 루시페라제 (fluc)로 기자 유전자의 표현을 수정 세포를 추적하는 데 사용할 수 있습니다. 이 응용 프로그램에 대한 우리의 세포는 내부 ubiquitin 발기인의 통제하에 둘 fluc 및 향상된 녹색 형광 단백질 (eGFP) 융합 유전자가 포함되어 있습니다. 세포를 수정하기 위해, 주요 최적의 유전 요소를 포함하는 transgene lentiviral 벡터가 수행하는 바이오 안전 기준뿐만 아니라 증가 전달의 효율성, fluc - eGFP 퓨전 리포터 유전자를 가지고 우리가 실험실에서 개발된 pFU - FG 벡터는 안정적으로 사용할 수 있습니다 차별화 후 세포를 transduce. 이 융합 구조는 이식 세포의 bioluminescence과 형광 추적 모두 가능합니다. 바이러스 입자 전달 및 고속 기자의 유전자가 다른 네 설명되는 레이블 세포의 생산을 생성하기위한 절차. </li></ol> 3. 허혈성 hindlimb로의 이식 ESC - 파생 내피 세포 <ol><li> 세포 이식에 대한 hindlimb 국소 빈혈 공사를 가진 마우스를 준비하여 절차를 시작합니다. 이렇게하려면 1L/min의 흐름 속도 100 % 산소 isoflurane 1~3%을 포함하고있는 마취 유도 챔버에 마우스를 놓으십시오. </li><li> 그것이 외부 자극에 응답하지 않는 때까지 유도 챔버에 마우스를 둡니다. 그런 다음 유도 챔버에서 동물을 제거합니다. </li><li> 그런 다음, 운영 테이블에 위로 향한 위치에 동물을 배치하고 1L/min의 흐름 속도 100 % 산소 isoflurane 1~3%의 지속적인 흐름에 연결합니다. </li><li> 세 교대 betadine 및 알코올 스크럽으로 hindlimb의 피부를 닦아주십시오. </li><li> 피부가 청소되면, 인산 30 μL에 백만 ESC - 파생 내피 세포를 얻을 호수 (PBS)가 버퍼. 28 게이지 바늘로 이들 세포를로드합니다. </li><li> 세포가 준비가되면, 부드럽게 리프트와 더 나은 gastrocnemius 근육의 위치를​​ 시각화하기 위해 hindlimb을 확장. 다리가 확장되는 동안, 기본 근육으로 피부를 통해 바늘을 삽입합니다. 뼈 접근하지 몸조심. 부드럽게 천천히 gastrocnemius에 30 μL 세포 혼합물을 주입. 근육내 주사의 경우, 30 μL가 주입 수있는 볼륨의 한계 가까운 거리에 있습니다. 우리의 경험, 그들이 주사기의 바늘에있는 손실 볼륨을 제거 때문에 따라서, 28 게이지 인슐린 주사기가 선호됩니다. </li><li> 주입이 완료되면 복구 케이지 마우스를 반환하고 정신 때까지 지속적으로 그것을 모니터합니다. 동물이 몇 시간 동안 회복 후 이식 세포의 생체내 bioluminescence 이미징에서 진행하도록 허용합니다. </li></ol> 4. 생체내에서 ESC - 파생 내피 세포의 Bioluminescence 이미징 <ol><li> 이식 ESC - 파생 endothelials 전지는 내부 ubiquitin 발기인의 통제하에 fluc과 eGFP 융합 유전자를 모두 표현하기 위해 수정되었습니다. 따라서, bioluminescence은 허혈성 hindlimb 내에서 세포를 추적하는 데 사용할 수 있습니다. </li><li> 이 단계를 시작하려면, bioluminescence 이미징 시스템 및 생활 이미지 수집 소프트웨어를 켭니다. 다음 수집 시스템을 초기화하고보기의 필드의 크기를 지정합니다. </li><li> 배경 방사를 흡수하기 위해 이미징 상자에 다음 장소 검은색 무광택 용지. </li><li> 이미지 상자가 준비되면, 1L/min의 출력에 산소 isoflurane 1~3%을 포함하고있는 마취 유도 챔버에 마우스를 놓으십시오. 그것이 외부 자극에 응답하지 않는 때까지 유도 챔버에 마우스를 둡니다. 그런 다음 유도 챔버에서 동물을 제거합니다. </li><li> 필요에 따라 전기 면도기를 사용하는 두 hindlimbs에서 머리를 제거합니다. </li><li> 복막에 체중 g 당 D - luciferin 10 μL를 주입. D - luciferin 15 MG / PBS에 ML의 필터링된 재고 솔루션으로 사전에 준비가되어 있습니다. </li><li> luciferin가 주입되면 isoflurane의 지속적인 흐름에 연결된 부정사 위치에 검은 종이,을 통해 영상 상자에 동물을 놓으십시오. </li><li> 이미지 상자에 동물을 배치하고 isoflurane에 연결. </li><li> 이미지가 포화되지 않은 최적의 노출 시간을 결정하기 위해 10~60초에 대한 이미지를 얻기 시작합니다. 이미지가 포화되면, 노출 시간을 줄일 수 있습니다. bioluminescence 신호가 매우 약한 경우, 노출 시간을 향상시킬 수 있습니다. </li><li> 저기서신호가 최대 후 페이드에 도달할 때까지 g 최적의 노출 시간, 사진마다 1~3분을 획득 계속합니다. 인수가 완료되면 파일을 저장합니다. </li><li> 데이터를 분석하려면, 주사 사이트를 커버 관심 지역 (로아)을 선택합니다. 대조군으로 유사한 투자 수익 (ROI)가 아닌 운영 다리를위한 선택하실 수 있습니다. 소프트웨어를 사용하여 각 timepoint에 대한 로아에 대한 광자 / 초 / cm 2 / steradian (P / S / cm 2 / SR)의 단위로 표현되는 총 빛을, 측정합니다. 최대한의 가치는 최종 데이터를 사용해야합니다. 데이터는 나중에 사용하기 위해 Excel 스프레드 시트로 내보낼 수 있습니다. </li><li> 일단 모든 데이터가 취득되어 복구 케이지에 동물을 반환하고 동물 깨우고 때까지 지속적으로 모니터링합니다. </li><li> 시간이 지남에 따라 세포를 추적하기 위해이 절차를 반복합니다. </li><li> 원하는 시점에서, 동물은 조직 기능의 평가 euthanized 수 있습니다. </li></ol> 5. 대표 결과 <img src="/files/ftp_upload/old/1034_2009_1_22_4/figure 1.png" alt="그림 1" width="600" height="600" /> 왼쪽 허혈성 hindlimb에 이식 세포의 대표 bioluminescence 이미지는 그림 1에 표시됩니다. bioluminescence 취득하는 동안, 강도는 시간이 증가되며, 시간 과정 중에 얻은 최대 값이 최종 값으로보고해야합니다.

<ol><li>Niiyama, H., Huang, N. F., Rollins, M., Cooke, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+model+of+hindlimb+ischemia%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Murine model of hindlimb ischemia.</a> JoVE. , (2008).</li>
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<li>Niiyama, H., Kai, H., Yamamoto, T., Shimada, T., Sasaki, K., Murohara, T., Egashira, K., Imaizumi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Roles+of+endogenous+monocyte+chemoattractant+protein-1+in+ischemia-induced+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Roles of endogenous monocyte chemoattractant protein-1 in ischemia-induced neovascularization.</a> J. Am. Coll. Cardiol. 44, 661-666 (2004).</li>
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</ol>

ESCs 때문에 차별과 내피 세포를 포함한 세 세균 레이어를 구성하는 세포 lineages을 일으키다 능력 그들의 소성의 조직 국소 빈혈의 치료를 위해 유망한 전지 소스입니다. ESCs과 관련된 윤리적 문제를 극복하기 위해 유도 pluripotent 줄기 세포 (iPSCs) 윤리 문제를 극복 대안 pluripotent 줄기 세포 원천 수 있습니다. ESCs 게다가, 이러한 내피 전구 세포 (EPCs) 및 조혈 줄기 세포 (HSCs)와 같은 성인 줄기 세포도 사용할 수 있지만, 이러한 세포 유형 PAD 환자에서 제한된 치료 효과가있을 수 있습니다. 세포의 근육내 배달 법으로서하고 수행하기 위해 간단하고, 전달이 모드는 가용성 요소 또는 plasmids의 전달 의무가 있습니다. 그러나, 대퇴 동맥이나 꼬리 정맥에 vasculature, 체계 전달하기 위해 이식 세포가 쉽게 액세스할 수 있도록 근육내 주사 대신 사용할 수 있습니다. Bioluminescence 이미징은 세포 생존의 높은 처리량 및 비침습 추적을 수행하는 장점을 제공합니다. 이러한 레이저 ...

<table><tbody><tr><td>수술 도구</td><td>도구</td><td>Fine Science Tools</td><td></td><td></td></tr><tr><td>주사기 바늘</td><td>도구</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>28G 인슐린 주사기 권장</td></tr><tr><td>인산염 완충 식염수(Phosphate Buffered Saline)</td><td>시약</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>D-luciferin</td><td>시약</td><td>Biosynth International, Inc</td><td></td><td>D-luciferin을 PBS에 15 mg/mL 농도로 여과한 스톡 용액으로 미리 준비하십시오</td></tr><tr><td>IVIS 200 생물발광 이미징 시스템 및 획득 소프트웨어</td><td>장비</td><td><a href="http://www.perkinelmer.com/Catalog/Category/ID/IVIS%20Series" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Xenogen Corporation</a></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

hindlimb 국소 빈혈의 치료를위한 배아 줄기 세포 유래 내피 세포

Embryonic Stem Cell-Derived Endothelial Cells for Treatment of Hindlimb Ischemia

다리와 발에 산소를 혈액과 영양소를 공급 주변 동맥이 좁아에서 주변 동맥 질환 (PAD) 결과,이 병리 같은 간헐 claudication (도보로 통증), 고통스러운 허혈성 ulcerations, 심지어 사지 위협 괴저와 같은 증상을 초래합니다. 이것은 일반적으로 혈관 내피 모든 혈액과 림프 혈관의 luminal 표면을 투자 내피 세포 monolayer이 혈관 항상성 및 혈관 재생에 지배적인 역할을 것으로 생각됩니다. 그 결과, 내피의 세포 기반의 재생을 막기위한 것이 PAD 치료를위한 유망한 접근법 수 있습니다. 이 비디오에서는, 우리는 배아 줄기 세포 (ESC)의 이식을 보여주 파생 bioluminescence 이미징에 의해 유도 세포 및 생존의 비침습 추적 다음 PAD의 모델로 일방적 hindimb 국소 빈혈의 치료에 대한 내피 세포를. 세포 전달 및 이미징에 대한 구체적인 자료와 절차가 설명됩니다. 이 프로토콜은 니이야마 외 의해 hindlimb 국소 빈혈의 유도를 설명하는 다른 간행물을 준수 1.

인도에 대한 수술 배아 줄기 세포 - 파생 허혈성 hindlimb에 내피 세포가 bioluminescence 이미징에 의해 비침습 추적, 증명합니다.

Hindlimb 국소 빈혈의 치료를위한 배아 줄기 세포 유래 내피 세포

말초동맥질환(Peripheral arterial disease, PAD)은 다리와 발에 산소가 풍부한 혈액과 영양분을 공급하는 말초 동맥이 좁아짐으로써 발생하며, 이는...

말초동맥질환. PAD는 다리와 발에 혈액과 산소를 공급하는 말초 동맥이 좁아져 혈관 기능 장애가 발생하는 질환입니다. 줄기세포를 PAD 치료에 사용할 수 있는지 확인하기 위해, 허혈 유도 후 후지에 배아줄기세포 유래 혈관내피세포를 주입합니다.이 세포들은 반딧불이 루시페레이스(firefly luciferase)를 발현하도록 유전자 변형되었으므로, 생물 발광 이미징을 통해 이들이 손상 부위로 이동하는지 및 치료 효과가 있는지 추적할 수 있습니다. 안녕하세요, 저는 스탠퍼드 대학교 심혈관 의학 분과의 의학 교수 존 쿡(John Cook)입니다.저희 연구실은 혈관 신생 및 혈관 재생에 관심을 두고 있습니다. 이 영상에서 저의 박사후 연구원인 Nan Wong 박사와 Hir Niyama 박사가 후지 허혈 모델에서의 치료적 세포 이식 절차와 세포 생존의 비침습적 영상 촬영 방법을 소개해 드리겠습니다. 이 절차에는 다음 단계들이 포함됩니다. 일측성 후지 허혈 치료를 위한 배아줄기세포 및 stereo 세포의 전달, 그리고 생물발광 영상을 이용한 세포 호밍 및 생존의 비침습적 추적입니다.이제 시작해 보겠습니다. 세포 이식을 위해 후지 허혈을 유도한 8개월령의 SV 129 계통 마우스를 준비하여 절차를 시작합니다. 이를 위해, 분당 1L의 유량으로 100% 산소에 1~3%의 ISO fluorine이 포함된 마취 유도 챔버에 마우스를 넣습니다.마우스가 외부 자극에 반응하지 않을 때까지 유도 챔버에 둡니다. 그 후, 동물을 유도 챔버에서 꺼냅니다. 그런 다음 동물을 수술대 위에 배와 닿는 쪽이 위로 향하도록 눕힌 뒤, 100% Oxygen에서 1~3% ISO를 분당 1L의 유량으로 지속적으로 흘려보내며 연결합니다.뒷다리 피부를 베타딘과 알코올로 번갈아 가며 세 번 닦아냅니다. 피부 세척이 완료되면, 30 µL의 인산염 완충 식염수(PBS)에 100만 개의 마우스 배아 줄기세포 유래 혈관 내피 세포를 준비합니다. 이 세포들을 28G 바늘에 적재합니다.세포 준비가 완료되면, 비복근의 위치를 더 잘 확인할 수 있도록 뒷다리를 조심스럽게 들어 올려 폅니다. 다리가 펴진 상태에서 피부를 통해 하부 근육으로 바늘을 삽입합니다. 뼈에 닿지 않도록 주의하며 30 µL의 세포 혼합물을 비복근에 천천히 조심스럽게 주입합니다.근육 내 주사의 경우, 30 µL는 주입 가능한 부피의 한계치에 가깝습니다. 따라서 저희의 경험상 주사기 바늘 내의 손실 부피를 없앨 수 있는 28 gauge 인슐린 주사기를 사용하는 것이 좋습니다. 주사가 완료되면 마우스를 회복용 케이지로 옮기십시오.동물이 수 시간 동안 회복되도록 한 후, 이식된 세포의 in vivo 생체 발광 이미징을 진행합니다. 이식된 ESC 유래 내피세포는 내부 유비퀴틴 프로모터의 제어 하에 반딧불이 루시퍼레이즈 유전자와 강화 녹색 형광 단백질 융합 유전자를 모두 발현하도록 조작되었습니다. 따라서 생체 발광을 통해 허혈성 후지 내의 세포를 추적할 수 있습니다.이 단계를 시작하려면 생체 발광 이미징 시스템과 생체 이미지 획득 소프트웨어를 켭니다. 그 다음 획득 시스템을 초기화합니다. 이어서 시야의 크기를 지정합니다.다음으로 배경 방출을 흡수하기 위해 이미징 박스에 검은색 매트지를 놓습니다. 이미징 박스가 준비되면, 산소 내 1~3% isof fluorine이 포함되어 있으며 유량이 1 L/min인 마취 유도 챔버에 마우스를 넣습니다. 마우스가 외부 자극에 반응하지 않을 때까지 유도 챔버에 둡니다.그런 다음 유도 챔버에서 동물을 꺼냅니다. 체중 1g당 10 µL의 Lucifer를 복강 내로 주입합니다. Lucifer는 PBS에 15 mg/mL 농도로 필터링된 스톡 용액으로 미리 준비합니다.루시페라아제를 주입한 후, 동물을 이소플루레인(isoflurane)이 지속적으로 흐르는 상태에서 검은 종이 위의 영상 촬영 상자에 앙와위로 배치합니다. 영상이 포화되지 않는 최적의 노출 시간을 결정하기 위해 10~60초 동안 영상을 획득하기 시작합니다. 영상이 포화되면 노출 시간을 단축하십시오.생물 발광 신호가 매우 약한 경우, 노출 시간을 늘리십시오. 최적의 노출 시간을 사용하여 신호가 최대치에 도달한 후 사라질 때까지 1~3분마다 계속해서 이미지를 획득하십시오. 각 획득이 완료되면 데이터 분석을 위해 파일을 저장하고, 음성 대조군으로서 주사 부위를 포함하는 관심 영역(ROI)을 선택하십시오.비수술 측 다리에서도 유사한 ROI를 선택할 수 있습니다. 소프트웨어를 사용하여 각 파일의 동일한 ROI에 대해 총 복사 강도를 측정하십시오.최종 데이터에는 최대값을 사용해야 합니다. 데이터는 향후 사용을 위해 Excel 스프레드시트로 내보낼 수도 있습니다. 모든 데이터를 획득한 후, 동물을 회복 케이지로 옮기고 동물이 깰 때까지 모니터링하십시오. 세포를 추적하려면 이 절차를 반복하십시오.원하는 시점에 도달하면, 조직 기능을 평가하기 위해 동물을 안락사시킬 수 있습니다. 여기는 세포 주입 하루 후 왼쪽 허혈성 뒷다리에 이식된 세포의 대표적인 생물발광 이미징 시간 경과 과정이며, 빨간색 원은 세포가 전달된 관심 영역(ROI)입니다. 색상은 이식된 세포 수와 상관관계가 있으며, 파란색 및 녹색에 비해 빨간색과 노란색은 더 강한 생물발광 강도를 나타냅니다.보시는 바와 같이, 대조군 사지는 생물발광이 나타나지 않는 반면, 세포를 주입한 사지는 생물발광 측정 중에 강한 생물발광을 보입니다. 이 그림에서 ROI의 생물발광 신호는 시간이 지남에 따라 최대치에 도달할 때까지 증가한 후 감소합니다. 최대 방사도로 측정된 생물발광의 최대값은 측정 시작 후 27분에 얻어집니다.데이터 분석 시에는 이 최댓값을 보고해야 합니다. 지금까지 후지 허혈 치료를 위해 ESC 유래 직렬 세포를 전달하고 추적하는 방법을 살펴보았습니다. 이 절차에 앞서 후지 허혈을 유도해야 하며, 이에 대한 내용은 ER 등의 다른 JoVE 비디오에서 확인할 수 있습니다.이 절차를 수행할 때, 세포의 피하 누출을 방지하기 위해 PBS에 현탁하여 주입하는 세포의 부피를 최대 30 microliters로 제한하는 것이 중요합니다. 또한, 생물 발광 이미지를 획득할 때 노출 간격이 너무 길어 이미지 강도가 포화되지 않도록 주의하십시오. 이상입니다.시청해 주셔서 감사하며, 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

일방적 hindlimb의 국소 빈혈의 유도에 대한 수술은 레이저 도플러 재관류 이미징에 의해 국소 빈혈의 확인과 증명합니다.

Hindlimb 국소 빈혈의 Murine 모델

혈액 - 문의 autologous 세포 및 시험 biocompatibility과 biomaterials 것은 시딩의 티타늄에 대한 방법을 설명합니다. 이 방법은 돼지의 venae cavae에 주입 수술의 분 이내에 씨앗 내피 전구 세포와 티타늄 튜브를 사용합니다. 이 기술은 다른 많은 implantable 생명 의학 장치에 적용할 수 있습니다.

Autologous 내피 전구 세포 - 심는 기술 및 대형 동물 모델에서 순환기 장치에 대한 Biocompatibility 테스트

내피 콜로니 형성 세포 (ECFCs) 본질을 표시하는 강력한 clonal proliferative 잠재력과 내피 세포를 순환하고...

내피 콜로니 형성 세포의 Phenotypic 및 기능성 특성은 인간 탯줄의 혈액에서 유래

우리는 생분해 성 고분자 나노 입자를 사용하여 혈관 신생을위한 치료 인자를 과발현 프로그래밍 줄기 세포의 제조 방법을 설명한다. 설명 과정은 체외에서 지방 유래 줄기 세포를 형질 전환하고, 쥐의 뒷다리 허혈 모델에서 혈관 신생을 촉진하기 위해 프로그램 된 줄기 세포의 효능을 검증 고분자 합성 (가) 있습니다.

생분해 성 고분자 나노 입자를 사용하여 치료 혈관 신생에 대한 프로그래밍 줄기 세포

여기, 우리는 두 번 시드를 부분적으로 유도 만능 줄기 세포로 쥐에 이식을위한 기능적인 조직 설계 혈관 이식을 생성하는 프로토콜을 제시 (PiPSC은) - 탈세 포화 선박 발판 생물 반응기에서 유래 내피 세포 - 평활근 세포 및 PiPSC 산출했다.

마우스 모델에서 조직 공학 혈관의 생성 및 손톱 확장

우리는 심근 세포, 내피 세포, 평활근 세포 및 패치 - 매개 사이토 카인 배달 세포 주입을 조합함으로써 이식 된 세포의 생착을 향상 배송 방법으로 인간 유도 만능 줄기 세포를 구별하기위한 세 가지 신규하고보다 효율적인 프로토콜을 제안한다.

다 능성 줄기 세포는 심근 수리를위한 심장 세포를 유도

이 프로토콜의 목표는 내 피 뿌리 탯 줄 혈액에서 세포를 분리. 조직 설계 만드는 혈관 및 심장 밸브 구성 및 응용 프로그램의 일부는 biomarker로 심혈 관 위험, 허 혈 성 질환 치료 환자를 식별 하는 데 이러한 세포를 사용 하 여 포함 됩니다.

인간 탯 줄 혈액에서 내 피 조상 세포의 고립

우리는 고 지 혈 증 및 당뇨병을 가진 토끼에 있는 말 초 허 혈을 유도 하기 위하여 이용 된 외과 절차를 기술 합니다. 이 수술은 환자의 말 초 동맥 질환에서 경험 하는 조건에 대 한 전 임상 모델 역할. 혈관 조 영 법은 또한 관류의 도입 된 허 혈 및 회수의 정도를 측정 하는 수단으로 서 기술 된다.

당뇨병 토끼에서의 뒷 사지의 전 임상 모델

여기에서, 중요한 뒷다리 허혈 실험 모형은 혈관 신생 치료의 효과를 평가하기 위하여 기능적, 적학 및 분자 시험의 건전지에 선행됩니다.

힌들보 리 허 혈의 뮤린 모델에서 치료 혈관 신생 평가

여기에 제시된 것은 약 1 주일 내에 인간 다 능성 줄기 세포로부터 혈구 내피 세포의 유도 분화를위한 간단한 프로토콜이다.

인간 만능 줄기 세포로부터 혈구 내피 세포의 유도 분화

현재 프로토콜은 만성 당뇨병성 족부궤양 치료를 위한 인간 탯줄 중간엽 줄기 세포 주사를 평가하는 전향적, 무작위, 대조 임상 연구를 설명합니다.

당뇨병성 족부궤양 치료를 위한 인간 탯줄 중간엽 줄기세포 주사의 전향적, 무작위 및 대조 연구

배우세요 배아 줄기 세포 유래 내피 세포를 이용한 후지 국소 빈혈 치료 방법을. 생체 발광 이미징으로 세포를 비침습적으로 추적하여 말초 동맥 질환 치료 가능성을 평가합니다.

Hindlimb 국소 빈혈의 치료를위한 배아 줄기 세포 유래 내피 세포

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