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출처: 페이만 샤베이기-루드포스티와 시나 샤바즈모하마디, 생물의학 공학과, 코네티컷 대학교, 스토스, 코네티컷
스캐닝 전자 현미경(SEM)은 전자 빔을 사용하여 진공 상태에서 전도성 물질을 비파괴적으로 이미지화하고 특성화하는 계측기입니다. 비유로서, 전자빔은 광현미경에 빛이 있는 것처럼 SEM에 있다. 차이점은 전자 현미경이 훨씬 더 높은 해상도와 배율의 이미지를 산출한다는 것입니다. 최고의 광학 현미경은 일반적으로 200 nm까지 해상도를 가지고, SEM은 일반적으로 0.5 nm의 해상도를 주장하는 반면. 이는 광현미경이 가시광선의 약 500nm인 파장의 화절에 의해 광학 현미경이 제한되어 있기 때문이다. 반대로, SEM은 1nm의 파장으로 활력을 공급되는 전자 빔을 사용합니다. 이 특성은 나노 및 미세 구조의 연구를위한 매우 신뢰할 수있는 도구를 만든다. 전자 현미경은 또한 광학 현미경검사에 너무 작은 특징 크기를 가진 생물학 견본의 연구 연구를 가능하게 합니다.
본 데모는 스캐닝 전자 현미경을 이용한 생물학적 시료의 샘플 제제 및 초기 이미지 수집에 대한 소개를 제공한다. 이 경우 콜라겐-하이드록시아파티트(HA) 세포 비계를 연구할 것이다. SEM의 진공 환경과 비전도성 샘플(예: 유기물)에 전자 빔에 의한 유도된 충전은 준비 과정에서 해결될 과제를 생성합니다. 해상도, 초점 깊이 및 샘플 유형과 관련이 있는 다양한 이미징 방법의 장점과 단점도 논의될 것입니다. 이 데모의 목적은 참가자에게 SEM에 대한 자세한 정보를 제공하여 이 현미경 모듈이 생물학적 샘플 유형에 가장 적합한지 확인하는 것입니다.
1. 샘플 준비
2. 이미징 절차
전자 현미경 검사용 또는 SEM은 나노 스케일에서 생물학적 물질을 이미지화하는 데 자주 사용됩니다. 샘플을 이미지화하기 위해 빛을 사용하는 광학 현미경은 비파괴적 이미지 생물학적 샘플에 많이 사용되지만, 그 해상도와 심도는 제한되어 있으므로 SEM은 1 나노미터까지 더 높은 해상도를 달성하기 위해 사용됩니다.
SEM에서는 일련의 응축기 렌즈를 통해 전자 빔이 집중되어 시료에 닿습니다. 빔이 시료에 부딪히면 표면의 전자가 흩어져 검출기에 의해 측정됩니다.
이 비디오에서는 SEM의 작동 방식을 논의하고, 실험실에서 생물학적 샘플을 이미지화하는 방법을 시연하고, 마지막으로 민감한 샘플을 이미지화하는 데 사용되는 몇 가지 기술을 소개합니다.
스캐닝 전자 현미경은 필라멘트 음극이 장착된 전자 건에 의해 생성되는 고에너지 전자 빔을 사용합니다. 생성된 전자는 양극쪽으로 추진된 다음 객관적인 렌즈에 들어가기 전에 응축기 렌즈를 사용하여 집중됩니다. 객관적인 렌즈는 빔을 시료에 집중하도록 보정되어 표면을 가로질러 래스터를 스캔합니다. 샘플내의 원자와 전자의 상호 작용은 샘플의 지형, 원소 조성 및 결정성을 연구하는 데 사용됩니다. 사고 전자 빔이 표면에 닿으면 이차 전자와 백산전자를 방출합니다. 이차 전자는 표면에 가까운 샘플에서 방출되는 낮은 에너지 전자이며 지형 정보를 제공합니다.
반면에 백산전자는 인시던트 빔의 반대 방향으로 반사된다. 상호 작용 강도는 원자 중량을 증가시켜 사용자가 조성 차이를 구별할 수 있게 합니다. SEM은 높은 진공을 활용하기 때문에 SEM을 사용하여 생물학적 샘플을 이미지화하기 위해 특별한 고려가 필요하며, 따라서 일반적으로 수분 함량이 높은 생물학적 샘플은 먼저 건조되어야 합니다. 이것은 민감한 견본, 특히 세포의 구조의 붕괴를 일으키는 원인이 될 수 있습니다. 따라서, 세포는 고정, 헹구고, 에탄올의 증가양으로 세척하여 천천히 탈수처리됩니다.
이 시연에 사용되는 콜라겐-하이드록시아파티테 조직 스캐폴드와 같은 경질 생물학적 물질의 경우, 샘플은 높은 진공 하에서 며칠 동안 건조된다.
마지막으로, 일반적인 SEM 이미징은 전도성 표면을 필요로 하기 때문에, 생물학적 샘플은 종종 이미징 전에 얇은 금속 층으로 코팅된 스퍼터입니다. 이제 SEM의 작동 방식과 이미징을 위한 생물학적 샘플을 준비하는 방법에 대해 논의되었으므로 콜라겐-하이드록시야파티트 조직 스캐폴드를 준비하고 이미지화하는 방법을 살펴보겠습니다.
첫째, 전도성 탄소 테이프를 사용하여 생체 재료 샘플을 SEM 스텁에 장착하고 시료가 건조하고 표면에 오염이 없는지 확인합니다.
그런 다음, 장착된 샘플을 스퍼터 코팅의 챔버에 놓고 챔버아래로 펌프하고 스퍼터를 코팅하여 40초 동안 샘플을 코팅하여 금속의 얇고 4-6나노미터 두께의 코팅을 달성하며, 이 경우 골드는 적절한 커버리지를 제공합니다. 코팅되면 샘플을 제거하고 전도성 테이프를 사용하여 스텁을 샘플 상단에 연결하여 현재 전도성 금속으로 코팅됩니다.
마지막으로 SEM 스테이지에 스텁을 장착하고 측면의 나사를 조입니다. 이제 샘플이 SEM으로 이미지화할 준비가 되었습니다. 먼저, 무대를 SEM 챔버에 넣고 문을 밀봉한 다음 전달 버튼을 눌러 로딩 챔버에서 진공으로 의 통로를 엽니다. 내부 문이 열리면 금속 막대를 무대로 나사로 넣고 샘플을 진공 챔버로 밀어 넣은 다음 금속 막대를 풀고 적재실로 완전히 후퇴한 다음 저장소를 눌러 진공 챔버를 닫습니다.
이제 SEM을 사용하여 샘플을 이미지화해 보겠습니다.
먼저, 컨트롤러를 사용하여 스테이지를 이동하고 샘플을 시야로 이동한 다음 작업 거리가 5~10mm가 될 때까지 샘플을 수직으로 이동합니다. 전자 빔을 켜고 이차 전자용 검출기를 선택하고 빔을 처음에는 5킬로전자 볼트로 설정한 다음 필요에 따라 최대 20킬로전자 볼트까지 증가합니다. 이미지가 명확하지 않은 경우 명확한 이미지가 나타날 때까지 초점, 밝기 및 대비 노브를 켭니다.
스테이지 탐색 및 X 및 Y 방향을 사용하여 샘플에서 새 스팟을 찾은 다음 원하는 피쳐가 표시될 때까지 배율을 늘립니다. 이미지 품질을 개선하기 위해 필요에 따라 초점, 대비 및 밝기를 조정합니다. 더 나은 이미지를 획득하기 위해 스캔 속도를 줄이고 평균 줄을 켜고 이미지를 저장해야 할 수 있습니다.
SEM 이미지는 25미크론보다 작은 섬유기능을 가진 고차원 및 다공성 구조를 보여줍니다. 광학 현미경 검사법은 훨씬 낮은 시야를 가지고 있기 때문에 이러한 기능은 광학 현미경 검사를 사용하여 시각화하기가 어려울 것입니다.
고에너지 전자 빔의 구조 붕괴 또는 손상을 포함하여 SEM을 가진 생물학 구조물의 화상 진찰과 관련되었던 많은 도전이 있습니다. 이제 일반적인 SEM 기술이 이러한 유형의 민감한 샘플에 어떻게 적용되는지 살펴보겠습니다. 이러한 젊은 식물 조직이나 수분 함량이 높은 조직과 같은 섬세한 생물학적 구조는 이미징 전에 고정 과정을 통해 처리되어야 합니다.
이 꽃 메리스템은 즉시 새로 준비된 포르말린/아세트산 고정 용액으로 처리되었습니다. 고정 된 조직은 에탄올에 해부되어 메쉬 용기에 배치되고 70 %, 80 %, 90 %, 및 100 % 에탄올의 에탄올 시리즈를 통해 탈수되었습니다. 마지막으로, 식물 조직은 얇은 금속 코팅으로 코팅 된 임계 점 건조기, 장착 및 스퍼터를 사용하여 건조되었습니다.
SEM 이미징 후, 처리되지 않은 구조가 건조 공정에 의해 심하게 손상되어 구조가 상당한 붕괴를 보였으며, 고정된 구조물은 기본 구조를 유지한 것이 분명합니다. 대안적으로, 세포 및 기타 높은 수분 함량 표본은 환경 SEM 또는 ESEM을 사용하여 이미지화될 수 있다. ESEM은 종래의 SEM과 마찬가지로 시료를 통해 래스터를 스캔하는 고에너지 전자 빔을 활용하지만, 챔버 내의 기체 환경을 유지함으로써 습식 또는 코팅되지 않은 시료의 이미징을 가능하게 한다.
이는 전자총을 함유하는 높은 진공 챔버를 두 개의 조리개를 사용하여 시편 챔버로부터 분리함으로써 수행됩니다. 전자 빔은 가스 분자에 의한 산란으로 인해 상당한 손실을 초래하지만 일반적으로 이미징을위한 충분한 에너지입니다. 여기서, 세포는 실리콘 칩에서 재배되었고, 양자점으로 기능화하고, 글루타랄데히드 고정 프로토콜을 사용하여 고정하였다. 세포는 물에서 심화되었고 세포 표면에 보이는 개별 양자점으로 세포의 붕괴되지 않은 구조를 보여줍니다.
SEM을 사용하여 생물 재료 시각화에 대한 JoVE의 소개를 방금 시청했습니다. 이제 SEM의 작동 방식, 생물학적 샘플이 어떻게 준비되고 이미지되는지, 그리고 민감한 구조에 대한 기술의 일부 응용 을 이해해야 합니다.
시청해 주셔서 감사합니다!
주사 전자 현미경 또는 SEM은 종종 나노 규모의 생물학적 물질을 이미지화하는 데 사용됩니다. 빛을 사용하여 샘플을 이미지화하는 광학 현미경은 생물학적 샘플을 비파괴적으로 이미지화하는 데 많이 사용되지만 해상도와 피사계 심도가 제한되어 있으므로 1나노미터까지 더 높은 해상도를 달성하기 위해 SEM이 사용됩니다.
SEM에서 전자 빔은 일련의 콘덴서 렌즈를 통해 집중된 다음 샘플에 부딪힙니다. 빔이 샘플에 부딪히면 표면의 전자가 산란되어 검출기에 의해 측정됩니다.
이 비디오에서는 SEM의 작동 방식에 대해 논의하고, 실험실에서 생물학적 샘플을 이미징하는 방법을 시연하고, 마지막으로 민감한 샘플을 이미징하는 데 사용되는 몇 가지 기술을 소개합니다.
주사 전자 현미경은 필라멘트 음극이 장착된 전자총에 의해 생성되는 고에너지 전자빔을 사용합니다. 생성된 전자는 양극으로 추진된 다음 대물 렌즈에 들어가기 전에 콘덴서 렌즈를 사용하여 초점을 맞춥니다. 대물 렌즈는 샘플에 빔의 초점을 맞추도록 보정되며, 여기서 표면을 가로질러 래스터 스캔됩니다. 샘플의 원자와 전자의 상호 작용은 샘플의 지형, 원소 조성 및 결정도를 연구하는 데 사용됩니다. 입사 전자빔이 표면에 부딪히면 2차 및 후방 산란 전자를 방출합니다. 2차 전자는 표면에 가까운 샘플에서 방출되어 지형 정보를 제공하는 저에너지 전자입니다.
반면에 후방 산란 전자는 입사 빔의 반대 방향으로 반사됩니다. 상호 작용 강도는 원자량이 증가함에 따라 증가하여 사용자가 조성 차이를 구별할 수 있습니다. SEM은 고진공을 사용하기 때문에 SEM으로 생물학적 샘플을 이미징하려면 특별한 고려가 필요하므로 일반적으로 수분 함량이 높은 생물학적 샘플을 먼저 건조해야 합니다. 이는 민감한 샘플, 특히 세포의 구조를 붕괴시킬 수 있습니다. 따라서 세포는 고정제로 처리되고 헹궈진 다음 점점 더 많은 양의 에탄올로 세척되어 천천히 탈수됩니다.
이 시연에 사용된 콜라겐-하이드록시아파타이트 조직 골격과 같은 단단한 생물학적 물질의 경우, 샘플을 고진공 상태에서 며칠에 걸쳐 건조시킵니다.
마지막으로, 일반적인 SEM 이미징에는 전도성 표면이 필요하기 때문에 생물학적 샘플은 이미징 전에 얇은 금속 층으로 스퍼터 코팅되는 경우가 많습니다. SEM의 작동 방식과 이미징을 위해 생물학적 샘플을 준비하는 방법에 대해 논의했으므로 이제 콜라겐-하이드록시아파타이트 조직 골격을 준비하고 이미징하는 방법을 살펴보겠습니다.
먼저 전도성 탄소 테이프를 사용하여 생체 재료 샘플을 SEM 스터브에 장착하고 샘플이 건조하고 표면에 오염이 없는지 확인합니다.
그런 다음 장착된 샘플을 스퍼터 코팅기의 챔버에 놓고 챔버를 펌핑하여 아래로 펌핑한 다음 약 40초 동안 샘플을 스퍼터 코팅하여 적절한 적용 범위를 가진 4-6나노미터 두께의 얇은 금속(이 경우 금) 코팅을 달성합니다. 코팅이 완료되면 샘플을 제거하고 전도성 테이프를 사용하여 스텁을 샘플 상단에 연결하면 이제 전도성 금속으로 코팅됩니다.
마지막으로 SEM 스테이지에 스텁을 장착하고 측면의 나사를 조입니다. 이제 샘플을 SEM으로 이미지화할 준비가 되었습니다. 먼저 스테이지를 SEM 챔버에 로드하고 도어를 밀봉한 다음 전송 버튼을 눌러 로딩 챔버에서 진공으로 가는 통로를 엽니다. 내부 도어가 열리면 금속 막대를 스테이지에 나사로 고정하고 샘플을 진공 챔버로 밀어 넣은 다음 금속 막대의 나사를 풀고 로드 챔버로 완전히 집어넣은 다음 스토어를 눌러 진공 챔버를 닫습니다.
이제 SEM을 사용하여 샘플을 이미지화해 보겠습니다.
먼저 컨트롤러를 사용하여 스테이지를 이동하고 샘플을 시야로 이동한 다음 작동 거리가 5-10mm가 될 때까지 샘플을 수직으로 이동합니다. 전자 빔을 켜고 2차 전자에 대한 검출기를 선택하고 빔을 처음에는 5킬로전자 볼트로 설정한 다음 필요에 따라 최대 20-30킬로전자 볼트까지 증가시킵니다. 이미지가 선명하지 않으면 선명한 이미지가 나타날 때까지 초점, 밝기 및 대비 노브를 돌립니다.
스테이지 탐색과 X 및 Y 방향을 사용하여 샘플에서 새 지점을 찾은 다음 원하는 특징이 보일 때까지 배율을 높입니다. 필요에 따라 초점, 대비 및 밝기를 조정하여 이미지 품질을 개선합니다. 더 나은 이미지를 얻기 위해 스캔 속도를 줄이고 라인 평균을 켠 다음 이미지를 저장해야 할 수도 있습니다.
SEM 이미지는 25미크론 미만의 섬유질 특징을 가진 고도의 3차원 및 다공성 구조를 보여줍니다. 이러한 특징은 광학 현미경을 사용하여 시각화하기 어려운데, 광학 현미경은 피사계 심도가 훨씬 낮기 때문입니다.
SEM을 사용한 생물학적 구조의 이미징과 관련된 많은 문제가 있으며, 여기에는 구조 붕괴 또는 고에너지 전자빔으로 인한 손상이 포함됩니다. 이제 일반적인 SEM 기법이 이러한 유형의 민감한 샘플에 어떻게 적용되는지 살펴보겠습니다. 이러한 어린 식물 조직과 같은 섬세한 생물학적 구조 또는 수분 함량이 높은 구조는 이미징 전에 고정 과정을 통해 처리해야 합니다.
이 꽃 분열 줄기는 즉시 갓 준비된 포르말린/아세트산 고착 용액으로 처리되었습니다. 고정 조직을 에탄올에서 해부하여 메쉬 용기에 넣고 70%, 80%, 90% 및 100% 에탄올의 에탄올 계열을 통해 탈수했습니다. 마지막으로, 식물 조직을 임계점 건조기를 사용하여 건조시키고 장착한 후 얇은 금속 코팅으로 스퍼터링했습니다.
SEM 이미징 후, 처리되지 않은 구조는 건조 공정에 의해 심하게 손상되고 구조가 상당히 붕괴된 반면, 고정된 구조는 원래 구조를 유지한 것이 분명합니다. 또는 세포 및 기타 수분 함량이 높은 표본을 환경 SEM 또는 ESEM을 사용하여 이미지화할 수 있습니다. ESEM은 기존 SEM과 마찬가지로 샘플 위에 래스터 스캔된 고에너지 전자빔을 사용하지만, 챔버 내에서 기체 환경을 유지하여 습식 또는 코팅되지 않은 샘플의 이미징을 가능하게 합니다.
이것은 두 개의 구멍을 사용하여 전자총이 들어있는 고진공 챔버를 표본 챔버에서 분리하여 수행됩니다. 전자빔은 가스 분자에 의한 산란으로 인해 상당한 손실을 입지만 일반적으로 이미징에 충분히 높은 에너지입니다. 여기에서 세포는 실리콘 칩에서 성장하고, 양자점으로 기능화되고, 글루타르알데히드 고정 프로토콜을 사용하여 고정되었습니다. 세포는 물에서 이미지화되었으며 세포 표면에서 볼 수 있는 개별 양자 점과 함께 세포의 붕괴되지 않은 구조를 보여줍니다.
SEM을 사용한 생체 재료 시각화에 대한 JoVE의 소개를 시청했습니다. 이제 SEM이 어떻게 작동하는지, 생물학적 샘플이 어떻게 준비되고 이미지화되는지, 그리고 민감한 구조에 대한 기술의 몇 가지 응용 분야를 이해해야 합니다.
시청해 주셔서 감사합니다!
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