관심 유전자(유전자 특이적 프라이머 1, GSP-1)에 대한 5' 특정 프라이머를 설계한다. 특이성을 도입하는 유일한 프라이머이기 때문에 매우 구체적이어야 합니다. 따라서, 상대적으로 긴 프라이머가 바람직할 것이다(55-65°C에서 24개의 뉴클레오티드, Tm의 전형적인 길이).
두 번째 중첩 프라이머(GSP-2)를 설계하는 것은, 즉 프라이머는 GSP-1의 3'에 위치해야 한다. 이 단계는 선택 사항이지만 중첩 된 프라이머로 두 번째 PCR을 수행하면 관심 유전자에 대한 PCR의 수율 및 특이성을 증가시게됩니다. dSmad2 cDN을 증폭시키는 데 사용되는 프라이머는 표 2에 나열됩니다.
2. cDNA 합성
제조자의 프로토콜에 따라 RNA 추출 방법 또는 키트를 사용하여 샘플에서 RNA를 추출한다. 게놈 DNA의 증폭을 피하기 위해 DNase로 샘플을 치료하십시오. 우리의 예에서, 우리는 10 전체 성인 파리에서 RNA를 추출했습니다.
마이크로볼륨 분광계를 사용하여 RNA 농도를 측정하고 필요한 경우 RNase 프리 워터로 최대 100 ng/μl으로 조정합니다.
RACE에 권장되는 키트를 사용하여 역전사(RT) 반응으로 cDNA를 준비합니다. 샘플당 다음 시약으로 마스터 믹스를 준비합니다. - 4 μl 역 전사 버퍼 (5x) - 2 μl 올리고 (dT)20 프라이머 (20 데옥시티닌으로 구성된 올리고) - 10 μl RNA (최대 1 μg) - 3 μl ddH2O - 1 μl 역 전사제 - 합계 : 20 μl
42ºC에서 90 분 동안 반응을 배양하십시오. 역 전사를 생략하는 네거티브 제어를 포함한다.
5 분 동안 85ºC에서 배양하여 역 전사를 비활성화합니다.
효율적인 PCR을 위해 DNA 수준을 희석시키기 위해 80 μl TE 버퍼를 추가하여 총 부피를 100 μl로 가져옵니다.