December 14th, 2010
여기, 우리는 murine 폐동맥 내피 세포의 격리와 문화 프로토콜을 설명합니다. 이 방법은 정비사 및 효소 폐 조직 분리뿐만 아니라 안티 - PECAM - 1과 대부분 microvascular 원산지 순수한 내피 세포 인구를 생산 자성 비즈에 복합 백신 ICAM - 2 항체를 사용하여 2 단계 정화 과정으로 구성됩니다.
이 절차의 전반적인 목표는 신생아 마우스에서 폐 내피 세포를 분리하고 배양하는 것입니다. 이것은 먼저 갓 채취한 폐에서 균질한 세포 현탁액을 생성함으로써 달성됩니다. 마지막으로 조직을 다지고 효소 분해를 거친 다음 항 P 화학 항체 결합 자성 비드를 사용하여 내피 세포를 농축합니다.
CETA 배양은 내피 세포 집단을 정제합니다. 또한, anti I chem을 사용하여 두 개의 항체 접합 자성 비드를 젤라틴으로 코팅된 플라스크에서 이들 세포를 증폭시킨다. 그 결과 생성된 1차 폐 내피 세포는 대부분 미세혈관 기원이며 TERRIN 및 VEGF R 2와 같은 특정 내피 세포 마커를 발현합니다.
irna 유전자 침묵과 같은 기존 방법에 비해 이 기술의 주요 장점은 유전자 변형 마우스를 활용하여 유전적으로 변형된 내피 세포를 얻을 수 있다는 것입니다. 또한, 이 기술을 사용하여 얻은 내피 세포는 대부분 미세혈관 기원이므로 일부 혈관 연구 분야와 더 관련이 있을 수 있습니다. 이 방법으로 얻은 내피 세포는 혈관 신생 및 혈관 투과성의 분자 메커니즘과 같은 혈관 생물학 분야의 주요 질문에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다.
이 기술의 시각적 시연은 조직 수확 분해 및 비드 결합 세포 세척 단계를 배우기 어렵기 때문에 매우 중요합니다. 이 기술을 부적절하게 수행하면 비내피 세포 오염과 세포 수율 및 성장 저하로 이어질 수 있습니다. 이 dyna beads 프로토콜의 경우 PBS에서 0.1%BSA 50ml를 준비하고 BSA가 용해될 때까지 볼텍싱하여 혼합한 다음 0.22미크론 주사기를 통과시켜 용액을 멸균합니다.
필터: 조직 배양 후드의 멸균 상태에서 Resus는 양을 매달아 쥐 방지 IgG 다이나 비드를 만들고 200마이크로리터를 1.5밀리리터 einor 튜브로 전달합니다. 비드를 세척하려면 자분입자 집광기 또는 MPC에 튜브를 장착하고 비드가 상층액을 흡인할 때까지 1분 동안 기다립니다. MPC에서 튜브를 제거하고 1ml의 멸균 0.1%B-S-A-P-B-S에 비드를 다시 현탁시킵니다.
네 번째 세척 후 이 세척을 세 번 더 반복합니다. MPC 및 Resus에서 튜브를 제거합니다. 500%B-S-A-P-B-S 500마이크로리터에 비드를 매달아 놓습니다.
튜브에 10마이크로리터의 쥐 안티 마우스 pcam 항체 1개를 추가하고 앞서 그림과 같이 실온에서 2시간 동안 텀블러합니다. 멸균 0.1%B-S-A-P-B-S로 비드를 4번 세척합니다. MPC에서 튜브를 제거하고 다시 서스펜션합니다.
0.1%B-S-A-P-B-S 상점의 200 마이크로리터에 있는 구슬. 이 항 P 화학 1 항체의 제조는 섭씨 4 도에서 dyna 비드를 접합했다. 일차 세포를 얻으려면 3, 6-8일 된 새끼를 마취합니다.
집게로 꼬리를 꼬집어 마취의 효과를 확인하십시오. 동물을 순차적으로 해부합니다. 먼저 강아지를 배에 고정하고 가슴 부위의 피부를 제거합니다.
해부 가위로 흉곽을 절제하여 폐를 노출시킵니다. 이제 개별 폐엽을 무균으로 절제합니다. 기관지나 폐 주변의 눈에 보이는 결합 조직을 절개하지 않도록 주의한다.
얼음처럼 차가운 DMEM에 모든 폐를 결합하고 마지막으로 새끼를 안락사시킵니다. 이제 조직 배양 후드로 이동합니다. DMEM에서 폐엽을 제거하고 100mm 조직 배양 접시에 넣습니다.
멸균 가위로 과도한 DMEM을 흡입하고 조직을 다집니다. 마지막으로 효소 소화를 위해 약 100번 자릅니다. 조직 준비물을 15ml의 따뜻한 콜라겐 분해 효소 디스크 공간 용액으로 옮기고 소화된 조직의 14게이지 캐뉼라 T 속도 덩어리에 연결된 20ml 주사기가 있는 회전기에서 섭씨 37도에서 45분 동안 배양합니다.
이제 세포 현탁액을 70 마이크로 미터 세포 여과기에 통과시키고 15 밀리리터의 Im으로 여과기를 세척하여 소화 반응을 멈춥니다. 폐 세포를 수확하기 위해 400Gs에서 5분 동안 원심분리하고 상층액을 흡인합니다. 그런 다음 세포 펠릿을 0.1%B-S-A-P-B-S 3밀리리터에 재현탁시키고 5밀리리터의 둥근 바닥 폴리스티렌 튜브로 옮깁니다.
22.5 μl의 항 P 화학에서 내피 세포를 분리하기 위해 하나의 항체가 dyna beads를 접합하고 실온에서 12 분 동안 텀블링했습니다. 그 동안 T 75 플라스크에 2 밀리리터의 2 % 젤라틴을 코팅하십시오. 여분의 젤라틴 용액을 흡인하고 약 반 시간 동안 조직 배양 후드 내부에서 자연 건조시킵니다.비드 배양이 완료되면 세포 현탁액을 3개의 펜더 튜브로 균등하게 분할하고 MPC에 장착합니다.
MPC 시스템을 사용하여 약 1ml의 0.1%B-S-A-P-B-S로 다이나 비드를 5회 세척합니다.최종 세척 후 튜브당 1ml의 VA 수명으로 비드를 다시 매달립니다. 모든 튜브를 잘 섞어 섞습니다. 사전 코딩된 T 75 플라스크에 dyna bead cell 준비를 플레이트화하고 플라스크의 총 부피를 VA 수명으로 10ml로 가져옵니다.
이제 플라스크를 섭씨 37도, 5% 이산화탄소 인큐베이터에 넣습니다. 다음 날 배지를 교체하고 하루 종일 성장한 다음 세포가 70-80% confluent보다 클 때까지 격일로 배지의 절반을 교체합니다. 그리고 1차 세포 배양을 더욱 정제하기 위해, 앞서 나타낸 바와 같이 항체 접합 dyna beads를 준비하되, 이번에는 CD1 0 2와 muse I chem two 항체를 사용한다.
또한 앞서 그림과 같이 T 75 조직 배양 플라스크에 2% 젤라틴을 코팅합니다. 이제 인큐베이터에서 세포가 있는 T 75 플라스크를 꺼냅니다. 배지를 흡인하고 8ml의 PBS 흡인으로 일차 세포를 세척합니다.
PBS는 2밀리리터의 0.05%트립진 EDTA를 첨가하고 세포가 분리될 때까지 약 5분 동안 기다립니다. 플라스크를 가볍게 두드려 8개의 세포를 분리합니다. 트립신을 억제하고 남아 있는 부착 세포를 긁어내기 위해 2ml의 IM을 첨가합니다.
세포 현탁액을 15ml 튜브로 옮깁니다. 400GS에서 5분 동안 원심분리를 통해 세포를 수확하고, 배지에서 흡인하고, 세포 펠릿을 2밀리리터의 0.1%B-S-A-P-B-S로 재현탁시키고, 5밀리리터의 폴리스티렌 원형 바닥 튜브로 이동시키고, 10마이크로리터의 안티 이캄을 첨가합니다. 두 개의 다이나 비드가 12분 동안 텀블러 실온에서 셀 현탁액을 두 개의 1.5ml einor 튜브로 분할하고 MPC 시스템에 장착합니다.
이전과 마찬가지로 0.1%B-S-A-P-B-S-A 1밀리리터로 비즈를 총 5회 세척합니다. 이제 resus는 각 튜브를 1밀리리터의 VA 수명에 매달아 세포 계수를 수행합니다. 마지막으로, 10ml의 VA 수명에서 T 75 플라스크당 800-1000K 세포로 세포를 플레이트링합니다.플라스크를 세포 배양 인큐베이터에 넣습니다.
문화가 약 80%의 유창성에 도달할 때까지 격일로 미디어를 변경합니다. 정제된 마우스 폐 내피 세포는 실험에 사용할 준비가 되었습니다. 일반적으로 생후 6일에서 8일 된 새끼 3마리의 세포 준비는 배양이 약한 후 6번째 폐 내피 세포에 1.2-1.5배의 10을 산출합니다.
예상대로, 이러한 일차 내피 세포는 광학 현미경 검사에서 조약돌 형태를 나타내며 세포 간 접합부에서 VE 응집성 염색을 보여줍니다. 이 프로토콜을 사용하여 대부분의 마우스 폐 내피 세포는 팩스 분석에 의해 입증된 바와 같이 VE coherent 및 VEGF R 2를 발현합니다. 빨간색 선은 이소형별 제어를 나타내고 녹색 선은 항 VE 또는 항 VEGF R 2 특이적 IgG를 나타냅니다.
이 절차를 시도할 때는 표적 조직만 채취하고, 세포를 과도하게 소화하지 않으며, 비드로 결합된 세포를 철저히 세척하는 것이 중요합니다. 내피 세포를 얻었다. 이 절차를 사용하면 혈관 생물학 분야의 기능 분석에 사용하여 혈관 신생 및 혈관 투과성과 관련된 반응을 분석할 수 있습니다.
이 비디오를 시청한 후에는 chem one antibody 및 chem two antibody bound dyna beeps를 사용하여 1차 마우스 내피 세포를 분리하는 방법과 순수한 내피 세포 배양을 얻는 방법을 잘 이해하게 될 것입니다.
이 기사는 신생쥐로부터 폐 내피 세포를 분리하고 배양하기 위한 프로토콜을 설명합니다. 이 방법은 기계적 및 효소적 분리를 통한 폐 조직의 분리와 항체-접합 마그네틱 비드를 사용한 정제 과정을 포함합니다.
Isolation of pure pulmonary endothelial cells from neonatal mice enables mechanistic de-risking in vascular biology research by providing a disease-relevant system for studying angiogenesis and permeability. This method supports target validation and phenotypic screening using genetically modified models, improving predictive confidence in preclinical programs. The protocol facilitates translational continuity between in vivo phenotypes and in vitro experimentation, reducing late-stage biological risk in drug discovery pipelines.
The method fits within the discovery continuum from target identification through lead optimization, providing a validated cellular system for mechanism-of-action studies and safety pharmacology profiling in vascular programs.