0 조회수 • 3:40 분 • August 29th, 2025
형광 표지된 유도만능줄기세포 유래 신경전구세포 또는 NPC로 시작합니다.
세포외 기질 하이드로겔에 세포를 재현탁하여 균일한 세포-기질 혼합물을 만듭니다.
혼합물을 얼음 위에서 배양합니다.
다음으로, 인간 대뇌 오가노이드를 접시로 옮깁니다.
여분의 배지를 제거하고 주입 절차를 위해 접시를 현미경으로 두십시오.
세포-매트릭스 혼합물을 미리 냉각된 멸균 유리 슬라이드에 분주하고 미리 냉각된 주사기를 사용하여 흡인합니다.
조직 파괴를 최소화하기 위해 혼합물을 오가노이드 표면에 천천히 주입합니다.
오가노이드를 잠시 휴지시킨 다음 배지를 추가하고 오가노이드를 멀티웰 플레이트로 옮기고 배양합니다.
하이드로겔이 응고되어 NPC를 주사 부위에 고정시킵니다. 형광 현미경을 사용하여 NPC를 추적합니다.
시간이 지남에 따라 NPC는 증식하고 오가노이드의 먼 영역으로 이동하여 미성숙 뉴런과 성숙 뉴런으로 분화합니다.
이를 통해 신경 세포 치료에 적합한 오가노이드 파괴를 최소화하면서 신뢰할 수 있는 세포 이식이 가능합니다.
유도만능줄기세포 또는 iPSC 유래 신경전구세포(NPC)의 단일 세포 현탁액을 얼음에서 제거하고 섭씨 4도에서 5분 동안 300g으로 원심분리하는 것으로 시작합니다.
상청액을 제거하고 가용화된 기저막 매트릭스 밀리리터당 3mg에 세포 펠릿을 재현탁하여 주입당 2마이크로리터의 최종 부피를 얻습니다. 사용할 때까지 현탁액을 얼음 위에 즉시 다시 놓으십시오. 추가 사용을 위해 섭씨 20도 냉동실에서 미리 냉각된 주사기를 얼음통으로 옮깁니다.
다음으로, 인큐베이터에서 뇌 오가노이드 플레이트를 제거하고 넓은 구경 팁을 사용하여 오가노이드를 35mm 접시로 옮깁니다. 오가노이드를 안정화하고 주입을 용이하게 하려면 오가노이드를 손상시키지 않고 배지를 최대한 제거하십시오. 주입을 용이하게 하기 위해 오가노이드가 들어 있는 35mm 접시를 해부 현미경 아래에 놓습니다.
오가노이드를 주입할 준비가 되면 냉각된 P20 피펫 팁을 사용하여 EGFP 표지 NPC 세포를 부드럽게 재현탁하고 이러한 세포의 2마이크로리터를 미리 냉각된 멸균 유리 슬라이드 위로 이동합니다. 얼음에서 미리 채워진 인슐린 주사기를 꺼내 바늘의 경사가 아래를 향하도록 2마이크로리터의 세포 현탁액을 천천히 끌어옵니다. 현미경으로 초점을 맞추기 전에 오가노이드가 들어 있는 접시의 뚜껑을 엽니다.
한 손으로 접시를 잡고 바늘의 경사를 위로 올려 놓습니다. 그리고 다른 한편으로는 세포를 오가노이드 표면에 천천히 주입합니다. 세포를 주입한 후, 뚜껑을 접시에 다시 넣고 주입된 오가노이드를 1-2분 동안 배양합니다.
그런 다음 오가노이드를 넓은 구경 팁이 있는 24웰 플레이트로 옮기기 전에 500마이크로리터의 오가노이드 배지를 플레이트에 부드럽게 추가합니다. 오가노이드를 섭씨 37도 및 이산화탄소 5%에서 이틀에 한 번씩 배지를 완전히 바꾸면서 배양합니다.
본 논문은 형광 표지된 유도만능줄기세포 유래 신경 전구세포(NPCs)를 인간 뇌 오가노이드에 주입하는 방법을 상세히 다룹니다. 이 기술은 조직 손상을 최소화하고 효과적인 세포 이식을 가능하게 하며, 이는 신경 세포 치료에 있어 매우 중요합니다.
인간 뇌 오가노이드에서 신경 전구 세포 이식을 모델링하는 것은 중추신경계(CNS) 질환 상황에서 세포 통합 및 분화를 평가할 수 있는 재현 가능하며 동물을 사용하지 않는 플랫폼을 제공합니다. 이러한 접근 방식은 전임상 발견 단계에서 신경 세포 치료 전략의 예측적 평가를 가능하게 하여, 신경 재생 포트폴리오의 기전적 위험 제거와 중개 연구의 연속성을 지원합니다.
이 방법은 CNS 세포 치료의 발견부터 전임상 단계까지의 연속 과정에 통합되어, 초기 기전 연구와 중개 모델링 사이의 가교 역할을 합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026