빛 활성화 플라빈 모노뉴클레오티드를 사용한 박테리아 비활성화

0 조회수3:19 • September 26th, 2025

액체 배지가 들어 있는 튜브에 병원성 박테리아를 접종하는 것부터 시작합니다.

배양하여 박테리아 증식을 촉진한 다음 배양액을 신선한 튜브로 옮깁니다.

세포를 펠릿으로 회전시키고 상청액을 버립니다.

플라빈 모노뉴클레오티드(FMN) 농도가 증가하는 완충 용액, 감광제 및 FMN이 없는 완충 용액에 박테리아 펠릿을 재현탁하여 대조군 역할을 합니다.

튜브 내용물을 완전히 혼합하고 현탁액을 유리관에 옮깁니다.

튜브를 가시광선에 노출시켜 FMN을 광활성화하고, FMN은 분자 산소와 반응하여 활성 산소종(ROS)을 생성합니다.

ROS는 박테리아 세포 구성 요소를 손상시켜 박테리아 생존력을 감소시킵니다.

샘플 분취량을 고체 배지에 옮기고 고르게 펴고 살아남은 생존 박테리아가 콜로니로 자랄 수 있도록 배양합니다.

배양 후, 콜로니를 정량화하고 FMN의 용량 의존적 효과를 평가하기 위해 대조군과 비교하여 박테리아 생존율의 감소율을 계산합니다.

색포도상구균 콜로니를 15밀리리터의 나사 뚜껑이 있는 시험관에 10밀리리터의 용원성 국물에 접종합니다. 셰이커에서 섭씨 37도에서 16시간 동안 배양액을 성장시킵니다. 배양액 0.5밀리리터를 1.5밀리리터 원심분리기 튜브로 옮깁니다.

멸균수를 첨가하여 배양액을 600나노미터에서 광학 밀도 0.5로 희석합니다. 그런 다음 배양액 0.5밀리리터를 1.5밀리리터 원심분리기 튜브로 옮깁니다. 14,000G에서 10분 동안 원심분리하고 상청액을 디캔팅합니다.

1밀리리터의 FMN 완충 용액을 세포 펠릿과 와류에 첨가합니다. 조사된 대조군의 경우 1밀리리터의 인산염 완충액을 추가합니다. 30마이크로몰 FMN과 인산염 완충액을 함유한 박테리아 세포 용액 1밀리리터를 유리관에 옮깁니다.

제곱미터당 10와트의 보라색 조명 아래 30분 동안 방사선을 위해 놓습니다. 그런 다음 30, 60 및 120 마이크로몰 FMN과 인산염 완충액을 포함하는 박테리아 세포 용액 1밀리리터를 유리관에 옮깁니다. 제곱미터당 20와트에서 120분 동안 청색광을 조사합니다.

또한 120마이크로몰 FMN 1밀리리터가 들어 있는 튜브를 60분 동안 조사합니다. 조사 후 0.2밀리리터의 반응 용액을 루리아 한천 플레이트에 첨가합니다. L자형 유리 막대를 사용하여 용액을 펴고 섭씨 37도에서 밤새 배양합니다.

다음날 황색포도상구균의 생존 가능한 플레이트 수와 비활성화율을 계산합니다.

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마지막 업데이트: 29 8월 2026