$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
친수성 단백질, 지단백질 및 단백질 응집체를 포함하는 박테리아 용해물을 섭취하십시오.
따뜻한 온도에서 상 분리가 가능한 차가운 비이온성 세제를 추가합니다.
얼음 위에서 배양하고 주기적으로 혼합하십시오. 세제는 지단백질의 지질 부분에 결합하여 단백질-세제 복합체를 형성합니다.
혼합물을 데워 상 분리를 유도합니다. 지단백질은 세제 상에서 농축되는 반면, 친수성 단백질은 수성상에 남아 있습니다.
상상 분리를 유지하기 위해 실온에서 원심분리합니다.
수성상을 버리고 세제상에 콜드 완충액을 첨가한 후 혼합합니다.
냉각, 가온 및 원심분리 주기를 반복하여 지단백질을 풍부하게 합니다.
그런 다음 저온 완충액을 첨가하고 저온에서 원심분리하여 비지단백질 응집체를 펠릿화합니다.
상청액을 단백질 침전 용매가 들어 있는 튜브로 옮기고 영하의 온도에서 배양하여 지단백질을 침전시킵니다.
실온에서 원심분리하고 상층액을 버립니다.
침전된 지단백질은 다운스트림 연구를 위한 준비가 되었습니다.
얼음처럼 차가운 TBSE에 동일한 부피의 4% 계면활성제를 첨가하여 상청액에 TX-114 계면활성제를 최종 농도 2%까지 보충합니다. 보충된 상청액을 얼음 위에서 1시간 동안 배양하고 15분마다 반전하여 혼합합니다. 튜브를 섭씨 37도의 수조로 옮기고 10분 동안 배양하여 상 분리를 유도합니다.
시료를 실온에서 10분 동안 10,000배 g으로 원심분리하여 이상 분리를 유지합니다. 상부 수성상을 부드럽게 피펫팅하여 버립니다. 얼음처럼 차가운 TBSE를 하부 계면활성제상에 첨가하여 튜브를 원래 부피로 다시 채우고 반전시켜 혼합합니다.
얼음 위에서 10분 동안 배양합니다. 배양 후, 튜브를 섭씨 37도 수조로 옮기고 10분 동안 배양하여 상 분리를 유도한 다음 실온에서 10분 동안 10,000배 g으로 원심분리합니다. 총 3회 분리에 대해 이 단계를 한 번 더 반복한 후 상부 수성상을 제거하고 폐기합니다.
계면활성제 상에 얼음처럼 차가운 TBSE 한 부피를 첨가하여 추출 과정에서 형성된 침전된 단백질의 펠릿을 제거합니다. 섭씨 4도 및 16,000배 g에서 2분 동안 원심분리하여 불용성 단백질을 펠릿화합니다. 즉시 상청액을 1,250마이크로리터의 100% 아세톤이 들어 있는 신선한 2.0밀리리터 미세 원심분리기 튜브로 옮깁니다.
샘플을 반전시켜 혼합하고 섭씨 영하 20도에서 밤새 배양하여 단백질을 침전시킵니다. 다음날, 샘플을 실온에서 20분 동안 16,000배 g으로 원심분리하여 튜브의 방향에 주의하면서 지단백질을 펠릿화합니다. 아세톤을 디캔팅하고 샘플을 자연 건조시키기 전에 펠릿을 100% 아세톤으로 두 번 세척합니다.
그런 다음 20-40마이크로리터의 10밀리몰 Tris-HCL, pH 8.0을 첨가하고 침전된 지단백질로 벽에 대해 위아래로 피펫팅하여 펠릿을 완전히 재현탁합니다.