고전압 전기천공법을 이용한 박테리아의 제조 및 형질전환

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영양 배지에 접종된 박테리아가 들어 있는 튜브로 시작하십시오.

세포가 활발하게 분열하는 단계에 도달할 때까지 흔들면서 배양합니다.

원심분리하여 세포를 수집하고 상청액을 버립니다.

얼음처럼 차가운 글리세롤로 세포를 반복적으로 세척하여 염분을 제거하고 글리세롤에 재현탁하여 세포 생존력을 유지합니다.

DNA 분해를 방지하기 위해 EDTA와 함께 멸균수에 항생제 내성 유전자를 포함하는 플라스미드를 준비합니다.

플라스미드 용액을 박테리아 세포와 혼합합니다.

짧은 고전압 펄스를 적용하여 박테리아 막에 일시적으로 모공을 만듭니다.

이를 통해 플라스미드 DNA가 세포질에 들어갈 수 있습니다.

즉시 세포를 회수 배지로 옮기고 흔들면서 배양합니다.

배지의 성분은 막 복구 및 플라스미드 암호화 항생제 내성 유전자 발현을 지원합니다.

항생제가 함유된 영양 한천에 세포를 퍼뜨리고 콜로니가 형성될 때까지 배양합니다.

단일 콜로니를 골라 새 접시에 줄무늬를 남겨 형질전환체를 정제합니다.

실험을 시작하려면 상위 10개 대장균 균주의 전기 적격 세포를 준비합니다.

단일 콜로니를 1밀리리터의 LB 배지로 옮깁니다. 튜브를 섭씨 37도에서 180RPM으로 흔들면서 배양합니다. 신선한 LB 배지 25밀리리터에 사전 배양 1을 500으로 희석하고 로그 상 0.6 OD에 도달할 때까지 섭씨 37도에서 배양합니다. 세포 현탁액을 5,000RPM에서 20분 동안 원심분리합니다.

원심분리 후, 펠릿을 부피당 부피 10%의 25밀리리터, 얼음처럼 차갑고 멸균 글리세롤 물에 재현탁하고, 이 단계를 4회 반복하여 1.5밀리리터에 도달할 때까지 매번 재현탁량을 유지합니다.

다음으로, 펠릿을 10% 글리세롤에 재현탁하고 세포 현탁액을 50마이크로리터 분취량으로 나눕니다. 분취량을 섭씨 영하 80도에서 최대 6개월 동안 보관하십시오. 실험을 계속하려면 원하는 플라스미드를 0.5밀리몰 EDTA가 보충된 멸균수에 용해시키고 얼음 위에서 전기 적격 세포의 분취량을 해동합니다.

2.5-5나노그램의 벡터를 첨가하고 해동된 세포를 혼합합니다. 세포를 0.1cm 큐벳에 분배합니다. 세포에 1.8킬로볼트 펄스를 가하고 즉시 전기천공된 세포를 1밀리리터의 SOC 배지로 옮깁니다.

세포를 1시간 동안 흔들면서 배양하고, 100마이크로리터 분취량을 LB 한천과 항생제가 들어 있는 페트리 접시에 옮기고, 세포를 섭씨 37도에서 밤새 배양한다. 페트리 접시에 단일 콜로니를 줄무늬로 만들어 변형자를 정화하십시오.

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Last updated: 18 July 2026