Name: Murine 췌장 아일릿 격리 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-08-22T00:00:00.000+00:00
Duration: 15 min 20 s
Description: 학습하세요 콜라게나제 주입과 Ficoll 그래디언트를 이용한 췌장 아일릿 격리 방법으로, C3H 마우스에서 NOD 당뇨 마우스로 이식 가능한 생존성 높은 아일릿을 분리하는 기술을 익히세요.

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Collagenase 준비 <ol><li> 아래 표에 표시된 최종 농도를 만들기 위해 50 ML 원뿔 및 추가 절연 버퍼로 collagenase를 달다. vortexing하여 collagenase를 해산. (12 마우스 + 2 = 14 여분의 마우스 마우스 X 5 ML / 마우스 = 70 ML 총 collagenase 솔루션) (70 ML X 0.5 MG / ML 또는 collagenase P의 총 0.3 MG / ML = 35 MG 또는 21 MG) <table style="BORDER-RIGHT: #ddd 1px solid; BORDER-TOP: #ddd 1px solid; BORDER-LEFT: #ddd 1px solid; BORDER-BOTTOM: #ddd 1px solid; TEXT-ALIGN: left" border="0" width="80%"><tbody><tr><th style="font-size: 12px; border-bottom: #ddd 1px solid; text-align: left"> 변형 </th><th style="font-size: 12px; border-bottom: #ddd 1px solid; text-align: left"> 나이 </th><th style="font-size: 12px; border-bottom: #ddd 1px solid; text-align: left"> Collagenase P (MG / ML) </th><th style="font-size: 12px; border-bottom: #ddd 1px solid; text-align: left"> 시간 (분) </th></tr><tr><td style="font-size: 12px"> C3H, Balb / C, B6 </td><td style="font-size: 12px"> &gt; 12주 </td><td style="font-size: 12px"> 0.8 </td><td style="font-size: 12px"> 17 </td></tr><tr><td style="font-size: 12px"> C3H, Balb / C, B6 </td><td style="font-size: 12px"> &lt;= 12주 </td><td style="font-size: 12px"> 0.5 </td><td style="font-size: 12px"> 13 </td></tr><tr><td style="font-size: 12px"> NOD, NOR, 비 </td><td style="font-size: 12px"> &gt; 12주 </td><td style="font-size: 12px"> 0.8 </td><td style="font-size: 12px"> 17 </td></tr><tr><td style="font-size: 12px"> NOD, NOR, 비 </td><td style="font-size: 12px"> &lt;= 12주 </td><td style="font-size: 12px"> 0.5 </td><td style="font-size: 12px"> 17 </td></tr></tbody></table> </li><li> 얼음 각 유리관과 장소에 collagenase 솔루션 2 ML 하는걸. collagenase 추가 30g 바늘과 얼음의 장소 (모자 준비) 3 ML 각 5 ML의 주사기를로드합니다. </li></ol> 팽만 <ol><li> 그냥 해부 전에 자궁 전위에 의해 동물을 희생. 완전히 서부 유럽 표준시 만드는 ETOH의 70 %로 전신을 스프레이. 성기 영역에서 시작 V - insision하십시오. 꼬리가 당신을 멀리 직면되도록 마우스를 회전합니다. </li><li> 열린 마우스의 왼쪽 변의를 제거합니다. 이것은 췌장과 일반적인 담즙 덕트를 노출합니다. </li><li> 대장를 입력 collagenase 솔루션을위한 작은 주머니를 떠나, 담즙 덕트가 빼낸 부분, 작은 창자의 양쪽에 hemostat 클램프를 놓습니다. </li><li> 담즙 방광에서 시작, 차가운 collagenase 솔루션 3 ML을 포함 30g 바늘 5 ML 주사기로 담즙 덕트를 통해 췌장을 급증. </li><li> 본문에서 췌장을 제거하고 collagenase 솔루션 2 ML을 포함 siliconized 약병에 놓으십시오. 이 단계는 지방과 결합 조직의 컬렉션을 최소화, 신속하고 같이 정상적으로 가능한 이루어져야합니다. </li><li> 다음 마우스로 얼음과 단계를 반복 3 병을 놓으십시오. </li></ol> 소화 <ol><li> 각 병을 밀봉하고 37 ° C 물 욕조에 넣습니다. 13-17분 (시간이 동물의 변형과 연령에 따라 다릅니다)을 품어. </li><li> 시간이 경과되면 적극적으로 병을 흔들. 췌장은 다투지한다. </li><li> 멸균 1000 ML의 비커에 큰 살균 싱크 스트레이너를 통해 각각의 다이제스트를 붓고하고 강제로 버퍼를 세척과 함께 화면을 피펫. 특면 50 ML conicals 튜브로 요약 (3 pancreata/50 ML 관 : 경우 N = 12 최종 볼륨 200 ML을 만들고 4x50 ML 튜브로 하는걸 버퍼를 충분히 세척 사용). 희석은 불필요한 아일릿 소화를 피하기 위해 빠르게 얼음에서 수행되어야합니다. </li><li> 스핀 다운 : 원심 분리기를 시작합니다. 그것이 1,300 rpm을 도달하면, 그것을 해제합니다. </li><li> ~ 5 ML을 떠나, 표면에 뜨는를 대기음. 펠렛을 대기음하지 매우주의하십시오. </li><li> Resuspend 펠렛은 손으로 적극적으로 도청에 의해, 다음 씻어 버퍼의 50 ML를 추가합니다. </li><li> 스핀 다운 : 원심 분리기를 시작합니다. 그것이 1,300 rpm을 도달하면, 그것을 해제합니다. </li><li> 세척 버퍼의 5 ML과 펠렛과 세척을 Resuspend. </li><li> 15 ML 원뿔에 5 ML을 전송하고 상기, 스핀 다운. </li><li> 가능한 완벽하게 뜨는을 대기음. (남은 버퍼 Ficoll의 밀도의 변화가 발생할 수 있습니다.) </li></ol> Ficoll 신속하게 수행합니다. 장기 Ficoll 노출이 아일 레츠에 유해합니다. <ol><li> 펠렛 완전히 ficoll을 (깨지지 조직 ficoll에 resuspend하기가 어렵습니다)을 추가하기 전에 헤어 졌 있는지 확인하십시오. </li><li> 적극적으로 vortexing으로 ficoll, 밀도 1.108, 7 ML에서 펠렛을 Resuspend. </li><li> 1.096, 1​​.069, 1.037 후이 순서에 남아있는 밀도 각각의 ficoll 2ml 각각의 밀도 위에 레이어. </li><li> OFF 휴식과 함께, 4도에서 1,800 rpm으로 15 분 동안 스핀! </li><li> spoid (멸균 P를 사용하여 두 번째 레이어에서 아일 레츠 선택lastic 스포이트). 감기 버퍼의 50 ML 원뿔 포함 ~ 25 ML 모든 컬렉션을 전송합니다. </li><li> 세척 버퍼 (12-15 단계를 반복)와, 상기 3 번 씻으십시오. </li><li> 에 Resuspend 아일 레츠 20 ML RPMI - 1640 (10 % FCS와 페니실린과 스트렙토 마이신, HEPES, 멤 - NEAA를 포함)와 부드럽게 섞는다. 계산에 대한 예제 100 UL을 제거합니다. </li><li> 미디어 1 ML의 dithizone 1 ML을 포함 35mm 그리드 - 판 100 UL을 전송합니다. </li><li> 미디어 / 판 30 ML의 총 160mm 접시에서 37 ° C, 7퍼센트 CO 2 배양기에서 RPMI 1640에 남아 아일 레츠를 품어. <img src="/files/ftp_upload/old/255_2008_8_24_3/255_Figure-01.png" alt="그림 1" width="220" height="194" /></li></ol>

murine 췌장 아일릿 격리

Murine Pancreatic Islet Isolation

Murine 췌장 아일릿 격리

안녕하세요, Greg Zott입니다. 저는 UCSF 당뇨병 센터의 Bluestone 연구소 소속이며, 오늘은 마우스 췌도(islets)를 분리하는 과정을 보여드리겠습니다. 이 절차는 C3 H 공여 마우스의 췌장에 콜라게나아제(collagenase) 용액을 주입하는 것으로 시작하며, 이후 췌장을 적출하여 소화시킨 후, 피콜(fial) 구배를 통해 췌도를 정제하고, 최종적으로 당뇨병 NOD 수용체 마우스의 신장 캡슐에 이식하기 위해 이를 수작업으로 선별하는 과정으로 진행됩니다.본 절차를 시작하기에 앞서, 수정된 Hanks 완충액으로 ATE 용액을 희석하였으며, 사용 중인 마우스 계통인 C3H에 맞게 농도를 조절하였습니다. 저희는 0.8 mg/mL 콜라게나제(collagenase) 용액에서 소화가 더 잘 된다는 것을 확인하였으며, 이를 총담관에 주입하여 췌장을 팽창시키는 데 사용할 것입니다. 오늘 절차를 수행할 사람은 당뇨병 센터의 Pavo Codre입니다. 그는 마우스를 절개하여 장을 노출시킨 후 총담관에 주입을 진행할 것입니다.털을 가라앉히기 위해 마우스에 에탄올을 분무한 다음, 발가락 압착법(toe pinch)을 통해 마우스가 적절히 안락사되었는지 확인합니다. 이제 Pavo가 정중선 절개를 통해 마우스의 복부를 열어 장과 췌장을 노출시킵니다. 또한 마우스가 완전히 안락사되었는지 확인하기 위해 횡격막을 절개합니다.시작하기 전에 몇 가지 중요한 구조물을 짚어보겠습니다. 위는 바로 여기에 위치하며, 췌장이 십이지장과 그 윗부분에 연결되어 있습니다. 이곳은 간이며, 담낭과 여기 보이는 총담관을 찾을 수 있습니다.이제 Pavo는 소장을 분리하여 총담관이 소장으로 들어가는 지점을 찾을 것입니다. 소장이 노출되면 모스키토 클램프로 총담관의 양측을 집습니다. 우리는 이러한 방식이 총담관 윗부분에 클램프를 고정하려는 다른 그룹들의 방법보다 더 많은 콜라게네이트(collagenates)가 췌장으로 유입되도록 한다는 것을 확인했습니다.우리는 이 방법이 효소가 췌장으로 진입하도록 하는 데 더 효과적인 기술임을 확인했습니다. 이는 부드러운 시술입니다. 장을 찢지 않도록 주의해야 합니다.클램프가 총담관의 양쪽에 부드럽게 위치하도록 합니다. 이제 담낭을 찾고, 담낭이 노출되면 이를 가이드 삼아 총담관에 콜라게나아제(collagenase)를 주입하겠습니다. Powell은 3 mL의 콜라게나아제 용액이 담긴 5 cc 주사기와 30 gauge 바늘을 사용하고 있습니다.총담관에 진입하면서 콜라게나아제 용액으로 해당 관을 확장시키고, 장 근처에 도달할 때까지 총담관을 따라 내려갑니다. 내려가는 동안 효소 용액이 췌장으로 주입됩니다. 이제 췌장이 콜라게나아제 용액으로 팽창되었으므로, Powell은 지혈鉗(hemostats)를 제거하고 췌장을 장에서 조심스럽게 분리하여 마우스로부터 적출할 것입니다.그는 그것을 위에서 제거합니다. 그런 다음 비장을 손잡이처럼 사용하여 췌장을 들어 올리고, 총담관 부위를 천천히 절단하여 분리합니다. 이렇게 하여 췌장이 드러나면 비장을 제거하고, 장간막 조직을 제거합니다. 그 후 췌장을 멸균된 유리 바이알에 담긴 2 mM collagenase 용액에 넣고 다시 얼음에 둡니다.유리 바이알에 넣은 분리된 췌장을 이제 37°C 항온수조에 약 17분 동안 넣어둡니다. 췌장이 떠오르지 않도록 50 mL 코니컬 랙에 고정시켰습니다. 수조에 넣음과 동시에 타이머를 시작하며 소화 과정이 시작됩니다.소화 시간이 완료되면 바이알을 꺼내어 부드럽게 흔들어 분쇄합니다. 조직이 분해되기 시작하면 바이알을 얼음 위에 놓습니다. 세척 버퍼가 들어 있는 400 mL 비커 위에 멸균 스크린을 배치합니다.그 다음 췌장 소화물을 스크린 위로 세척 완충액 속으로 조심스럽게 붓습니다. 시연을 위해 후드를 끄고 후드 유리를 올렸으므로 작업 과정을 확인할 수 있습니다. 췌장 소화물을 비커에 부은 후, 바이알을 동일한 세척 완충액으로 헹구고 세척 완충액을 스크린 위에 붓습니다.세척 완충액이 채워진 주사기를 준비합니다. 이를 사용하여 조직을 스크린을 통해 강하게 세척합니다. 이는 매트릭스에 부착되지 않은 느슨한 eyelet들을 제거하되, 막과 소화되지 않은 조직은 스크린에 남기기 위함입니다.조직 세척이 완료되면, 일반적으로 절차 마지막에 이와 같은 상태가 됩니다. 튜브 바닥에 있는 췌장 조직을 이제 두 개의 50 mL 원추형 튜브로 옮기고 세척합니다. 조직을 고르게 섞은 다음, 각 튜브의 펠렛 부피가 동일하도록 균등하게 나누어 줍니다. 이제 비커를 세척 버퍼로 다시 헹굽니다.비커 벽면을 헹구어 내부에 남아 있는 모든 조직을 다시 회수합니다. 그런 다음 이를 두 개의 50 mL 원뿔형 튜브에 동일하게 나누어 담고, 세척 완충액을 채워 정량을 맞춥니다.조직을 여러 번 뒤집어 섞어준 다음 원심분리기에 넣습니다. 이는 짧은 시간 동안 원심분리하는 과정입니다. 원심분리기가 1,000 RPM에 도달하면 작동을 멈춥니다.이 시점에서 조직은 매우 민감하므로, 과하게 압착하지 않도록 주의해야 합니다. 튜브를 제거하고 세척 단계를 세 번 더 반복합니다. 이제 세 번째 세척이 완료되었습니다.50 ml 원추형 튜브의 구성 성분을 15 ml 원추형 튜브로 옮기고 1,000 rpm으로 원심 분리한 후 정지시킵니다. 상층액을 제거하고 FI Call의 첫 번째 단계를 시작합니다. 현재 펠렛 형태의 췌장 소화물을 확보한 단계입니다.조직이 펠릿에서 잘 떨어지도록 재현탁합니다. 첫 번째 밀도 구배 용액인 1 1 0 8을 추가합니다. 각 튜브에 5 mL씩 넣습니다.그 다음 펠릿을 각 밀도 구배층에 넣고 충분히 섞어줍니다. 가장 밀도가 높은 구배층에서 조직이 고르게 분산되도록 하는 것이 중요합니다. 이제 1.096 밀도의 용액 2mL를 층층이 쌓아줍니다.그 위에 1 0 6 9 밀도의 층을 2밀(mils) 두께로 쌓고, 다시 그 위에 1 0 3 7 밀도의 층을 쌓습니다. 밀도 층을 쌓는 동안 층이 섞이지 않도록 하는 것이 중요합니다. 이제 모든 층이 튜브에 추가되었습니다.여기 보시면 1108번, 91096번, 1069번, 그리고 1037번 튜브의 상단부입니다. 원심분리를 하지 않았음에도 조직이 이미 적정 밀도로 이동하기 시작하는 것을 볼 수 있습니다. 파이알 기울기 원심분리를 1800 RPM에서 15분 동안 가속하고, 튜브를 원심분리기에서 꺼낸 후에는 반드시 브레이크를 끈 상태로 유지하십시오.0 0 9 6 층과 0 0 7 층 사이에 파블로의 췌도 조직 밴드가 잘 형성된 것을 볼 수 있습니다. 이제 처리 과정 중에 방출되었을 수 있는 조직 파편과 DNA를 제거하기 위해 0 3 7 층을 제거합니다. 멸균 플라스틱 파스퇴르 피펫을 사용하여 췌도 층을 제거하고, 이를 25 mL의 세척 완충액이 들어 있는 50 mL 원추형 튜브로 옮깁니다.fol은 eyelet에 독성이 있으므로 이 단계를 빠르게 수행해야 합니다. 실제로 저희는 0 6 9 및 0 9 6 층 전체를 제거했습니다. Pavo가 플라스틱 pasture 피펫의 윗부분을 자르고 세척 버퍼로 헹굽니다.이전과 동일한 방식으로 안구를 원심분리합니다. 1,000 RPM까지 회전시킨 후 정지하고 상층액을 흡입하여 제거합니다. 안구는 세척액으로 3회 세척합니다.이제 아일렛(Islet) 분리 과정을 모두 마쳤습니다. 소화 단계부터 폴리머 농도 구배 원심분리, 세 번째 세척 완충액 세척 후의 정제된 아일렛 단계까지 진행하였습니다. 분리된 아일렛을 RPMI 배지에 재현탁하여 조직 배양 플레이트에 분주하였습니다. 이렇게 준비된 아일렛은 이제 인비트로(in vitro) 분석이나 아일렛 이식과 같은 인비보(in vivo) 준비 과정에 사용할 수 있습니다.

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

높은 품질과 인간 아일 레츠의 적절한 수량을 달성하는 것은 성공적인 아일릿 이식을 위해 유명 전제 조건 중 하나입니다. 이 비디오에서는, 우리는 단계별로 설명을 인간의 췌장 아일릿 절연을위한 절차 : 수정된 자동화된 방법을 사용하여 (부분 I 소화 및 췌장 조직의 수집).

인간 췌장 아일릿 격리 : 부품 I : 소화 및 췌장 조직의 수집

높은 품질과 인간 아일 레츠의 적절한 수량을 달성하는 것은 성공적인 아일릿 이식을 위해 유명 전제 조건 중 하나입니다. 이 비디오에서는, 우리는 단계별로 설명을 인간의 췌장 아일릿 절연 (부분 II : 인간 아일 레츠의 정화 및 문화)에 대한 절차를 수정 자동화된 방법을 사용하여.

인간 췌장 아일릿 절연 : 2 부 : 인간 아일 레츠의 정화와 문화

마우스 작은 섬 격리에 대한 자세한 설명은 collagenase와 중성 단백 분해 효소를 정제의 조합의 현장 췌장 ductal cannulation 및 재관류에의 기술을 사용하여 설명되어 있습니다.

Langerhans 절연의 마우스 작은 섬은 정화의 Collagenase와 중성 단백 분해 효소의 조합을 사용하여

랑게르한스 섬이라고도 불리는 췌장 섬은 포도당 조절 및 기타 중요한 생물학적 기능을 위한 호르몬을 생산하는 내분비 세포의 클러스터입니다. 이 프로토콜은 먼저 Vater의 Ampulla를 통해 콜라겐 분해 효소를 관류하여 외분비 췌장 조직을 소화하고 단순화 된 밀도 구배 원심 분리를 통해 췌장 섬을 분리하는 방법을 설명합니다.

콜라겐분해효소 관류를 통한 췌장섬 분리: 췌장섬 세포를 분리하는 효소 방법

우리는 여기에서 제2형 당뇨병의 마우스 모델, Leprdb에서 섬을 분리하기 위한 프로토콜과 2개의 광자 현미경을 사용하는 온전한 섬에서 인슐린 분비를 측정하기 위한 라이브 셀 분석의 세부 정보를 제시합니다.

Lepr<sup&gt; DB</sup&gt; 2 형 당뇨병의 마우스 모델 : 본래 독도 췌장 섬 세포의 분리 및 라이브 셀 2 광자 이미징

당뇨병 연구 분야에 중요한 도전은 섬 β 세포 복제를 조절하고 β - 세포 재생을 자극하는 방법을 개발하는 분자 메커니즘을 이해한다. 여기서 높은 콘텐츠 스크리닝 방법 식별 및 작은 분자의 β 세포의 복제를 촉진 활성을 평가하기 제시된다.

높은 콘텐츠<em&gt; 체외</em&gt; 췌장 작은 섬의 β 세포 복제 디스커버리 플랫폼

우리는 신생아 쥐에서 그대로 섬을 분리 본원 프로토콜을 설명합니다. Pancreata 부분적으로 세척하고 손을 따기 다음, 콜라게나로 소화했다. 20-80 아일렛 클러스터 여러 섬 연구에 적합한 새로 태어난 쥐의 췌장에 따라 얻을 수있다.

신생아 마우스 췌장의 기능 독도의 효과적인 분리

이 섬 격리 프로토콜은 외분비 조직을 소화하기 위해 콜라게나아제 주사의 새로운 경로를 설명하고 마우스로부터 섬을 정화하기 위한 단순화된 그라데이션 절차를 설명했다. 효소 소화, 그라데이션 분리/정제, 그리고 아일렛 수작업 피킹이 포함됩니다. 성공적인 절연은 마우스당 250~350개의 고품질 및 완전한 기능을 갖춘 아일렛을 생성할 수 있습니다.

마우스에서 췌장 췌도 격리를 위한 간단한 고효율 프로토콜

여기 우리는 잠재적인 diabetogenic xenobiotic 화학 물질 식별는 xenobiotics에 의해 선생님 inductions을 심사에 대 한 마우스 췌 장 섬 세포 격리 프로토콜을 제시.

Diabetogenic 환경 화학 물질에 대 한 Murine 췌 장 섬 세포 기반 검사

여기에서, 우리는 췌도 세포와 같은 이기종 세포 집단에 있는 칼슘 역학을 화상 진찰 그리고 정량화하기 위한 프로토콜을 제시합니다. 형광 기자는 그 때 고정화되고 심상되는, 그리고 형광 강렬의 역학의 세포 당 분석이 수행되는 작은 틀 내의 세포의 말초 층으로 전달됩니다.

마우스 췌도 세포의 하위 집단에 있는 화상 진찰 칼슘 역학

이 연구는 마우스 췌장에서 기능성 원차 섬과 선반세포를 효율적으로 추출하는 단순화된 방법을 개발하여, 급성 췌장염 유발 당뇨병의 발병 기전에서 세포 간 소통을 연구하는 귀중한 도구를 제공하였습니다.

마우스에서 1차 섬과 1차 췌장 아시나세포를 동시에 분리하는 간단하고 신속한 방법

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