Name: 질소 산화물과 세포로부터 전자 상자 성체의 프로그램 공명 분광학에 의한 초과 산화물 음이온 급진적가 탐지 스핀 트랩을 사용하여 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 21 s
Description: 배우세요 세포에서 산화질소와 초과산화물을 EPR 분광학과 스핀 트랩을 이용해 검출하는 방법을. 이 기술은 활성 산소 종을 식별하여 질병 메커니즘 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 NIH 국립 심장 폐 및 혈액 연구소 부여 RO1 HL81248에 의해 재정 지원되었다.

1. 소의 대동맥 내피 세포 (BAEC)의 문화 <ol><li> 적절한 무균 기법을 미행했다. </li><li> 37 항생제없이 물 목욕, 따뜻한 매체 ° C로 </li></ol> 주 : 중간 4.5 G / L D-글루코오스와 페놀 무료 Dulbecco의 수정된 이글 배지 (DMEM)로 구성되어 10 % 태아 소 혈청 (FBS) 및 2.5과 함께 보완 4 MM L-글루타민, 1 %가 아닌 필수 아미노산, MG / L 내피 성장 인자. <ol start="3"><li> 인큐베이터에서 T75 플라스크 들어있는 세포를 제거하고 후드 안쪽에 그것을 배치하기 전에 70 %의 에탄올과 플라스크의 표면을 청소하십시오. </li><li> 흡인기를 사용하여 기존의 매체를 제거하고 Dulbecco의 인산염 완충 식염수 (DPBS) 5 ML로 두 번 씻는다. </li><li> 트립신 2 ML을 추가하고 정기적으로 현미경으로 검사하는 동안 분리 전지 4-5 분 기다립니다. </li><li> 매체 3 ML을 추가하고 반복적으로 별도의 t에 피펫을 사용하여 혼합그는 세포도 정지를 만듭니다. </li><li> 5 분 대한 121g에서 약 15 ML 튜브와 원심 분리기에 트립신과 매체의 5 ML을 전송합니다. </li><li> 흡인기를 사용하여 표면에 뜨는을 제거합니다. DPBS 5 ML을 추가하고 철저하게 섞는다. 5 분 동안 121g에서 원심 분리기. </li><li> 뜨는을 대기음 및 매체 6 ML을 추가하여 세포 펠렛을 다시 일시 중지합니다. </li><li> 6 - 잘 접시에, 그럼 중간 1 ML을 추가할 각 세포 현탁액 1 ML을 추가합니다. 피펫을 사용하여 정지를 섞습니다. </li><li> 접시 라벨과 37 하룻밤 품어 ° C에서 5 % CO 2. </li></ol> 2A. BAEC 전지와 NO의 탐지 <ol><li> 적절한 무균 기법을 미행했다. </li><li> 배양기에서 6 잘 플레이트를 제거하고 첫 번째 우물에서 매체를 기음. 한 ML의 DPBS으로 두 세포를 씻으십시오. </li><li> 1.9 MM 철 (II) 황산의 heptahydrate (FeSO 4 0.7 H 2 O에서 0.8 밀리그램을 분해하여 신선하게 준비 중 210 μl를 추가하십시오1시 7분의 비율을 사용하여 한 CaCl 2, MgCl 2 ML DPBS)와 암모늄 N-메틸-D-glucamine dithiocarbamate (MGD, CaCl 2, MgCl 2 500 μl DPBS에서 2.7 밀리그램을 분해하여 신선하게 준비)의 210 μl . (참고 :. 초과 MGD가 사용되는이 비율은 통상 철 3에 대한 수율은 + MGD이 초과 MGD의 면전에서 최대있다는 사실로 인해 + MGD 복잡한 철 2의 준비를 위해 고용되었습니다의 추가 철 2를 안정화하기위한 솔루션 아스코 브 산은 + MGD NO-철 3 이래로 형성된 + MGD는 endogenously 아스코 브 산, 히드로퀴논, 또는 최대 변환 효율과 시스테인으로 + MGD이 NO-철 EPR 감지로 줄어 듭니다 필요하지 않습니다 99.9 %로 .. 철 2의 낮은 스핀 diamagnetic 상태 + NO) 저온 장치의 필요없이 평면 셀 또는 모세관을 사용하여 15 검출이 가능합니다. </li><li> 소용돌이 결과 현탁액 잘하고 4.6 μ 추가칼슘 ionophore의 리터 (CAI) (1 ML DMSO에 1 밀리그램을 해소하여 1.9 mm의 주식 솔루션에서 준비). </li><li> 소용돌이 다시 솔루션 및 순서 36 분 대한 ° C에서 추가 - 철 NO 3의 감소는 NO-철 2 +-MGD EPR 감지에 + MGD 수 있도록 37 알을 품다. </li><li> Eppendorf 튜브 및 EPR 평평한 세포 (또는 50 μl 모세관까지) 이전에 뜨는 (425 μl)를 수집합니다. </li><li> EPR 수집 매개 변수는 다음과 같습니다 마이크 로파 주파수 : 9.8 GHz의, 중심 분야 : 3,427 G, 변조 진폭 : 6.0 G, 스위프 폭 : 100 G, 리시버 게인 : 1 × 10 5; 마이크 로파 전력 : 10 MW, 스캔의 총 개수 : 121; 스위프 시간 : 10의, 그리고 시정수 : 20 MS (참고 : 매개 변수가 하나의 악기와 실험 조건에서 다른 달라질 수 있기 때문에, 따라서만을 중심 분야, 주파수 및 변조 진폭은 고려해야 할 가장 중요한 매개 변수입니다.). </li><li> 실온에서 스펙트럼을 기록하며 2 차원 스펙트럼은 integ되었습니다Bruker WinEPR 데이터 처리 소프트웨어 또는 다른 데이터 처리 소프트웨어를 사용하여 수정 배경 소음 기준을 줄이기 위해 평가. adduct 형성 부량 들어, 집중력 대 신호 강도 (또는 지역)의 표준 줄거리는 기증자 스냅인 아니오를 사용하지 구축하실 수 있습니다. </li></ol> 2B. eNOS Uncoupling 실험 <ol><li> 배양기에서 6 잘 플레이트를 제거하고 두 번째 우물에서 매체를 대기음 1 ML의 DPBS로 두 번 씻는다. </li><li> peroxynitrite 기증자, 5 - 아미노 -3 - (4-morpholinyl) -1,2,3-oxadiazolium 염화물 (SIN-1)은 eNOS 16 개를 풀다하는 데 사용되었다. 0.5 밀리미터 SIN-1 (M R 206.6 갓 노 CA / MG 이온과 PBS 500 μl에 1 MG SIN-1을 해소하여 준비 10 밀리미터 주식 솔루션에서 G / 몰) 및 묽은 ~ 2 ML과 DPBS 100 μl를 추가하십시오 와 10 % FBS. </li><li> 37 2 시인데 동안 품어 ° C에서 5 % CO 2. </li><li> 인큐베이터에서 접시를 제거하고 DPBS로 두 번 씻는다. </li><li> 의 210 μl 추가2.8 MM FeSO 4 0.7 H 2 O와 19.6 mm의 210 μl와 신선한 위에서 언급한 절차에 따라 준비 MGD. </li><li> 소용돌이 솔루션 및 1.9 밀리미터 CAI의 4.6 μl를 추가합니다. </li><li> 소용돌이 다시 솔루션 및 36 분 동안 37 ° C에서 품어. </li><li> Eppendorf 튜브 및 EPR 평평한 감방으로 전송에서 (425 μl) 뜨는 수집합니다. </li><li> EPR 획득 파라미터는 다음과 같습니다 마이크로 웨이브 주파수 : 9.8 GHz의, 중심 분야 : 3,427 G, 변조 진폭 : 6 G, 스위프 폭 : 100 G, 리시버 게인 : 1 × 10 5; 마이크 로파 전력 : MW 10, 스캔의 총 개수 : 121; 스위프 시간 : 10의, 그리고 지속 시간 : 20 MS. </li><li> 스펙트럼을 기록하며 2 차원 스펙트럼은 위에서 언급한 수정 배경 소음 기준을 줄이기 위해 통합되었다. </li></ol> 3. O 2의 탐지 • - Polymorphonuclear Neutrophils에서 (PMNs) <ol><li> 이전 17 설명된대로 Neutrophils은 인간의 혈액 샘플에서 고립되었다. </li><li> diethylenetriamine-pentaacetic 아세트산 (DTPA) 0.1 밀리미터를 포함하는 PBS에 1 M DMPO *의 주식 솔루션을 확인하십시오. DMPO는 25-29의 융점을 가지고 ° C ~ 그것이 유리관 (주에 액체 DMPO을 (고밀도 ~ 1.02 G / ML 25 ° C) 피펫 것이 더 편리하므로 : 순수 DMPO 이후 무게를 위해 플라스틱 튜브를 사용하지 않습니다 ) 플라스틱과 반응. 냉동 DMPO는 유리병 (DMPO가 분해 수 있으므로 온수를 실행하지 않는 주)에 루크의 온수를 실행하여 녹아 수 있습니다. </li><li> 그것은 이후 고순도 DMPO를 (&gt; 99 %)를 사용하는 것이 중요 상용 스핀 트랩 중 일부는 상자 성체의 불순물을 포함하고, 따라서 그것만으로도 DMPO 솔루션의 EPR 스펙트럼 (이 경우 10 MM)를 실행하는 것이 필수적입니다. 그것은 배경 신호 (그림 3A 참조) 분명없는 것이 중요합니다. </li><li> DMSO의 phorbol-12-myristate-13-아세테이트 (PMA)의 주식 솔루션 (1 밀리그램 / ML) 준비합니다. 10 μg / PBS의 ML에 대한 솔루션을 diluting하여 aliquots하십시오. </li><li> 1.5 ML Eppendorf 튜브는 또한 순서에 따라 0.6 ML의 총 부피와 솔루션을 준비 : PMN의 ML 당 ~ 10 6 세포, D-글루코오스 (1 밀리그램 / ML) 및 알부민 (1 밀리그램 / ML), 10 MM DMPO와 PMA의 0.2 μg / ML. (참고 : PMA는 급진 활성제이며, 마지막으로 추가됩니다.) </li><li> EPR 편평한 세포에 대한 솔루션을 전송합니다. </li><li> EPR 인수 매개 변수 조건은 다음과 같습니다 마이크로 웨이브 주파수 : 9.8 GHz의, 중심 분야 : 3,486 G, 변조 진폭 : 0.5 G, 스위프 폭 : 100 G, 리시버 게인 : 5 × 10 5; 스캔의 총 개수 : 10, 스위프 시간 : 30의 ; 마이크 로파 전력 : 20 MW, 그리고 지속 시간 : 81 MS. adduct 형성 부량 들어, 집중력 대 신호 강도 (또는 지역)의 표준 줄거리는 같은 템포 또는 3 - 카르복실산-PROXYL 등 안정 nitroxides를 사용하여 건설 수 있습니다. </li></ol> DMPO의 사용에 대한 * 중요 참고 : 평면 세포를 사용함으로써, 하나는 세포 밀도를 높이고이를 통해 신호를 증가 수스핀 adduct지만, O 2의 반감기의 강도 • - DMPO의 adduct가 DMPO-OH로 분해하는 (T 2분의 1 ~ 1 분) 짧습니다. DMPO는 t 2분의 1 ~ 8, 각각 14 분, 함께 증가 adduct의 안정성을 위해 상업적으로 사용할 수 있습니다 EMPO, BMPO 또는 DEPMPO의 동일한 농도를 사용하여 대체 할 수 있습니다. 4. 대표 결과 스핀 NO 라디칼의 포집이 철 2 +-MGD. 그림 2A와 2B를 사용하여 수행되었다 철 2에서 더 EPR 신호를 보여주지 + MGD 또는 철 2의 혼합 아무런 배경 신호 어떠한 이러한 시약 유래 없다는 것을 나타내는 CAI와 + MGD.에게 CAI와 자극시 BAEC는 철 2 반응하는 아니오를 출시하지 스핀 adduct, NO-철 2 +-MGD을 형성 + MGD, 그리고 초미세 분리 상수 (hfsc) N = 12.66 G의 가치와 특성 삼인승 신호를 보여줍니다 g = 2.040의 G-요소. (그림 2C). HFSC 값이 NIEHS EPR 소프트웨어 데이터베이스 웹 사이트에서 다운로드할 수 있습니다 WINSIM 시뮬레이션 프로그램을 사용하여 결정되었다. 실험 hfsc은 NO-철 2 +-MGD adduct를위한 N = 12.70 G와 g = 2.041 18 문학의 가치와 일치합니다. 마찬가지로, BAEC에 SIN-1의 효과는 그림 2D와 같이 uncoupling eNOS에 의해 생산 아니오를 낮춘 없습니다. 감지 - DMPO 스핀 트랩이 O 2 • 위해 사용되었다. 스핀 트랩은 상자 성체의 불순물에서 무료임을 확인하는 그림 3A와 같이 혼자 DMPO은 신호를주지 않았다. 그림 3B는 DMPO의 스펙트럼과 PMNs에만, 그리고 마찬가지로, DMPO이 발생하지 않는다는 것을 제안 전혀 감지 신호가 없습니다 효소 NADPH 산화 효소의 활성화. 그림 3C는 PMA에 의한 PMN의 자극시 관찰된 EPR 신호를 보여줍니다. 이 신호에 대한 hfsc 값은 N = 14.71 G, &amp; 것으로 확인되었습니다베타,-H = 11.40 G ​​및 γ-H = 1.25 G, 그리고 N = 14.3 G, β-H = 11.7 G 및 γ-H의 문헌 값 DMPO-O 용 = 1.3 G 19 일치 2 시인데의 adduct. <img src="/files/ftp_upload/2810/2810fig1.jpg" alt="그림 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 1"> 그림 1. EPR 스핀 트래핑을 사용하여 neutrophils과 BAEC에서 래디 칼의 검출을위한 플로우 차트. () PMNs는 DMPO와 PMA 섞인 있었고, 결과 혼합물은 데이터 수집을위한 EPR 평평한 세포로 전학 왔어. (B) BAEC는 접시에 성장하고, DPBS로 씻어되었습니다. 스핀 트랩 철 (MGD는) 2 CAI와 함께 추가되었습니다. 솔루션은 철저하게 혼합하고 incubated되었다. 혼합물은 EPR 데이터 수집을위한 EPR 평평한 세포로 이송되었다. <img src="/files/ftp_upload/2810/2810fig2.jpg" alt="그림 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 2"> B에서 NO의 그림 2. EPR 검출AEC. 철 2 (A) 스펙트럼 + MGD 전용 (B) + MGD + CAI 전용 철 2의 스펙트럼. (C) 철 2로 NO 트래핑으로 인한 삼인승 스펙트럼이 + MGD 사용하여 세포를 CAI 것은 자극. (D)으로 인해 0.5 MM 세포의 SIN-1 처리에 어떠한 생산의 감소를 보여주는 스펙트럼. <img src="/files/ftp_upload/2810/2810fig3.jpg" alt="그림 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="그림 3"> 활성화 neutrophils에서 DMPO, O 2 H의 그림 3. EPR 검출. 10 밀리미터 DMPO 전용의 () 스펙트럼. (B) 10 밀리미터 DMPO의 앞에서 혼자 PMN의 스펙트럼. (C) PMN의 스펙트럼은 10 밀리미터 DMPO의 면전에서 PMA에 의해 활성화.

<ol><li>Winterbourn, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconciling+the+chemistry+and+biology+of+reactive+oxygen+species%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Reconciling the chemistry and biology of reactive oxygen species.</a> Nat. Chem. Biol. 4, 278-286 (2008).</li>
<li>Winterbourn, C. C., Hampton, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thiol+chemistry+and+specificity+in+redox+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radic.+Biol.+Med%22%5BJournal%5D)">Thiol chemistry and specificity in redox signaling.</a> Free Radic. Biol. Med. 45, 549-561 (2008).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Oxygen%2C+Gene+Expression%2C+and+Cellular+Function%22">Oxygen, Gene Expression, and Cellular Function</a>. Clerch, L. B., Massaro, D. J. , (1997).</li>
<li>Gutteridge, J. M. C., Halliwell, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antioxidants%3A+Molecules%2C+medicines%2C+and+myths%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Antioxidants: Molecules, medicines, and myths.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 393, 561-564 (2010).</li>
<li>Sumimoto, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure%2C+regulation+and+evolution+of+Nox-family+NADPH+oxidases+that+produce+reactive+oxygen+species%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+J%22%5BJournal%5D)">Structure, regulation and evolution of Nox-family NADPH oxidases that produce reactive oxygen species.</a> FEBS J. 275, 3249-3277 (2008).</li>
<li>Ignarro, L. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aIgnarro%2C+LJ+%22Editor+Nitric+Oxide%3A+Biology+and+Pathobiology%22">Editor Nitric Oxide: Biology and Pathobiology</a>. , Academic Press. San Diego, CA. (2009).</li>
<li>Moreau, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+effects+of+alkyl-+and+arylguanidines+on+the+stability+and+reactivity+of+inducible+NOS+heme-dioxygen+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Differential effects of alkyl- and arylguanidines on the stability and reactivity of inducible NOS heme-dioxygen complexes.</a> Biochemistry. 45, 3988-3999 (2006).</li>
<li>Vasquez-Vivar, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superoxide+generation+by+endothelial+nitric+oxide+synthase%3A+the+influence+of+cofactors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Superoxide generation by endothelial nitric oxide synthase: the influence of cofactors.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 95, 9220-9225 (1998).</li>
<li>Villamena, F. A., Zweier, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+reactive+oxygen+and+nitrogen+species+by+EPR+spin+trapping%5BTitle%5D)+AND+%22Antioxid.+Redox+Signal%22%5BJournal%5D)">Detection of reactive oxygen and nitrogen species by EPR spin trapping.</a> Antioxid. Redox Signal. 6, 619-629 (2004).</li>
<li>Finkelstein, E., Rosen, G. M., Rauckman, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spin+trapping+of+superoxide+and+hydroxyl+radical%3A+practical+aspects%5BTitle%5D)+AND+%22Arch.+Biochem.+Biophys%22%5BJournal%5D)">Spin trapping of superoxide and hydroxyl radical: practical aspects.</a> Arch. Biochem. Biophys. 200, 1-16 (1980).</li>
<li>Frejaville, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((5-Diethoxyphosphoryl-5-methyl-1-pyrroline+N-oxide+%28DEPMPO%29%3A+a+new+phosphorylated+nitrone+for+the+efficient+in+vitro+and+in+vivo+spin+trapping+of+oxygen-centered+radicals%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Soc.%2C+Chem.+Commun%22%5BJournal%5D)">5-Diethoxyphosphoryl-5-methyl-1-pyrroline N-oxide (DEPMPO): a new phosphorylated nitrone for the efficient in vitro and in vivo spin trapping of oxygen-centered radicals.</a> J. Chem. Soc., Chem. Commun. , 1793-1794 (1994).</li>
<li>Olive, G., Mercier, A., Le Moigne, F., Rockenbauer, A., Tordo, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2-Ethoxycarbonyl-2-methyl-3%2C4-dihydro-2H-pyrrole-1-oxide%3A+Evaluation+of+the+spin+trapping+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radical.+Biol.+Med%22%5BJournal%5D)">2-Ethoxycarbonyl-2-methyl-3,4-dihydro-2H-pyrrole-1-oxide: Evaluation of the spin trapping properties.</a> Free Radical. Biol. Med. 28, 403-408 (2000).</li>
<li>Villamena, F. A., Zweier, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superoxide+radical+trapping+and+spin+adduct+decay+of+5-tert-butoxycarbonyl-5-methyl-1-pyrroline+N-oxide+%28BocMPO%29%3A+kinetics+and+theoretical+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Soc.%2C+Perkin+Trans%22%5BJournal%5D)">Superoxide radical trapping and spin adduct decay of 5-tert-butoxycarbonyl-5-methyl-1-pyrroline N-oxide (BocMPO): kinetics and theoretical analysis.</a> J. Chem. Soc., Perkin Trans. 2, 1340-1344 (2002).</li>
<li>Tsuchiya, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitric+oxide-forming+reactions+of+the+water-soluble+nitric+oxide+spin-trapping+agent%2C+MGD%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radical+Biol.+Med%22%5BJournal%5D)">Nitric oxide-forming reactions of the water-soluble nitric oxide spin-trapping agent, MGD.</a> Free Radical Biol. Med. 27, 347-355 (1999).</li>
<li>Vanin, A. F., Poltorakov, A. P., Mikoyan, V. D., Kubrina, L. N., van Faassen, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Why+iron-dithiocarbamates+ensure+detection+of+nitric+oxide+in+cells+and+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Nitric+Oxide%22%5BJournal%5D)">Why iron-dithiocarbamates ensure detection of nitric oxide in cells and tissues.</a> Nitric Oxide. 15, 295-311 (2006).</li>
<li>RojasWahl, R. U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decomposition+mechanism+of+3-N-morpholinosydnonimine+%28SIN-1%29%3A+A+density+functional+study+on+intrinsic+structures+and+reactivities%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Model%22%5BJournal%5D)">Decomposition mechanism of 3-N-morpholinosydnonimine (SIN-1): A density functional study on intrinsic structures and reactivities.</a> J. Mol. Model. 10, 121-129 (2004).</li>
<li>Klempner, M. S., Gallin, J. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+and+functional+characterization+of+human+neutrophil+subpopulations%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Separation and functional characterization of human neutrophil subpopulations.</a> Blood. 51, 659-669 (1978).</li>
<li>Pou, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spin+trapping+of+nitric+oxide+by+ferro-chelates%3A+kinetic+and+in+vivo+pharmacokinetic+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Spin trapping of nitric oxide by ferro-chelates: kinetic and in vivo pharmacokinetic studies.</a> Biochim. Biophys. Acta. 1427, 216-226 (1999).</li>
<li>Finkelstein, E., Rosen, G. M., Rauckman, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spin+trapping.+Kinetics+of+the+reaction+of+superoxide+and+hydroxyl+radicals+with+nitrones%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Spin trapping. Kinetics of the reaction of superoxide and hydroxyl radicals with nitrones.</a> J. Am. Chem. Soc. 102, 4994-4999 (1980).</li>
<li>Britigan, B. E., Rosen, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spin-trapping+and+human+neutrophils.+Limits+of+detection+of+hydroxyl+radical%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Spin-trapping and human neutrophils. Limits of detection of hydroxyl radical.</a> J. Biol. Chem. 264, 12299-12302 (1989).</li>
<li>Frejaville, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((5-%28Diethoxyphosphoryl%29-5-methyl-1-pyrroline+N-oxide%3A+A+new+efficient+phosphorylated+nitrone+for+the+in+vitro+and+in+vivo+spin+trapping+of+oxygen-centered+radicals%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Chem%22%5BJournal%5D)">5-(Diethoxyphosphoryl)-5-methyl-1-pyrroline N-oxide: A new efficient phosphorylated nitrone for the in vitro and in vivo spin trapping of oxygen-centered radicals.</a> J. Med. Chem. 38, 258-265 (1995).</li>
<li>Snyrychova, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+of+the+sensitivity+of+EPR+spin+trapping+in+biological+systems+by+cyclodextrins%3A+A+model+study+with+thylakoids+and+photosystem+II+particles%5BTitle%5D)+AND+%22Free+Radical+Biol.+Med%22%5BJournal%5D)">Improvement of the sensitivity of EPR spin trapping in biological systems by cyclodextrins: A model study with thylakoids and photosystem II particles.</a> Free Radical Biol. Med. 48, 264-274 (2010).</li>
<li>Han, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipophilic+beta-cyclodextrin+cyclic-nitrone+conjugate%3A+Synthesis+and+spin+trapping+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Org.+Chem%22%5BJournal%5D)">Lipophilic beta-cyclodextrin cyclic-nitrone conjugate: Synthesis and spin trapping studies.</a> J. Org. Chem. 74, 5369-5380 (2009).</li>
<li>Han, Y., Tuccio, B., Lauricella, R., Villamena, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+spin+trapping+properties+by+beta-cyclodextrin-cyclic+nitrone+conjugate%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Org.+Chem%22%5BJournal%5D)">Improved spin trapping properties by beta-cyclodextrin-cyclic nitrone conjugate.</a> J. Org. Chem. 73, 7108-7117 (2008).</li>
<li>Hardy, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection%2C+characterization%2C+and+decay+kinetics+of+ROS+and+thiyl+adducts+of+mito-DEPMPO+spin+trap%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Res.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Detection, characterization, and decay kinetics of ROS and thiyl adducts of mito-DEPMPO spin trap.</a> Chem. Res. Toxicol. 20, 1053-1060 (2007).</li>
<li>Kim, S. -U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+reactivity+of+a+cyclic+nitrone-calix%5B4%5Dpyrrole+conjugate+with+superoxide+radical+anion%3A+Theoretical+and+experimental+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Chem.+Soc%22%5BJournal%5D)">Fast reactivity of a cyclic nitrone-calix[4]pyrrole conjugate with superoxide radical anion: Theoretical and experimental studies.</a> J. Am. Chem. Soc. 132, 17157-17173 (2010).</li>
</ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

EPR의 스핀 트래핑은 자유 래디 칼을 quantifying 및 식별을 위해 생명 의학 애플 리케이션의 광범위한 채용되었습니다. 스핀 트래핑은 고도로 민감한 NM에서 따라서 생물 학적 시스템의 응용에 적합하게 μm의에 이르기까지 다양한 농도로 래디 칼을 감지 할 수있다. 상자 성체의의 adduct, NO-철 2 +-MGD의 형성은 EPR 통해 NO 검출의 기초입니다. ~의 속도로 10 6 M -1 s의 -1에서 NO 빠르게 18과 철 2 + MGD 반응을 보이고있어. NO-철 2 +-MGD adduct는 긴 반감기를 가지고 있으며, 매우 안정이다. 샘플은 -80에서 솔루션을 오해에서 수집한 후에 실제로 한 24 시간 이내에 EPR 스펙트럼을 수집할 수 ° C + MGD 상당한는 신호 강도 (미발표 결과)에 손실없이 NO-철 2를 포함하는...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td><td> 댓글 (옵션) </td></tr><tr><td> 페놀 무료 DMEM 배지 높은 포도당 1X </td><td> GIBCO </td><td> 31,053 </td><td></td></tr><tr><td> 0.25 % 트립신-EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) </td><td> GIBCO </td><td> 25,200 </td><td></td></tr><tr><td> L-글루타민 </td><td> 피셔 과학 </td><td> BP379-100 </td><td></td></tr><tr><td> MEM 비 필수 아미노산 </td><td> GIBCO </td><td> 11,140 </td><td></td></tr><tr><td> 태아 소 혈청 </td><td> 애틀랜타 체액 </td><td> S11550 </td><td></td></tr><tr><td> 내피 성장 인자 </td><td> Millipore </td><td> 02-102 </td><td></td></tr><tr><td> CAI </td><td> 엔조 생명 과학 </td><td> A-23187 </td><td> DMSO에 용해 </td></tr><tr><td> SIN-1 </td><td> 엔조 생명 과학 </td><td> BML-CN245-0020 </td><td></td></tr><tr><td> DMPO </td><td> Dojindo 연구소 </td><td> D048-10 </td><td></td></tr><tr><td> FeSO 4 0.7 H 2 O </td><td> 시그마 알드리치 </td><td> 215422-250G </td><td> 칼슘과 MG와 PBS에 디졸브 </td></tr><tr><td> MGD </td><td> 엔조 생명 과학 </td><td> ALX-400-014 - M050 </td><td> 칼슘 2 + 및 MG 2 PBS에 디졸브 + </td></tr><tr><td> BAEC 세포 </td><td> 전지 시스템 </td><td> 2B2-C75 </td><td></td></tr><tr><td> DMSO </td><td> 피셔 과학 </td><td> BP231-100 </td><td></td></tr><tr><td> DPBS </td><td> 시그마 알드리치 </td><td> D8537 </td><td></td></tr><tr><td> CaCl 2, MgCl 2 DPBS </td><td> 시그마ldrich </td><td> D8662 </td><td></td></tr><tr><td> Phorbol-myristate 아세테이트 (PMA) </td><td> 시그마 알드리치 </td><td> 79346-1MG </td><td></td></tr></tbody></table>

질소 산화물과 세포로부터 전자 상자 성체의 프로그램 공명 분광학에 의한 초과 산화물 음이온 급진적가 탐지 스핀 트랩을 사용하여

Detection of Nitric Oxide and Superoxide Radical Anion by Electron Paramagnetic Resonance Spectroscopy from Cells using Spin Traps

낮은 농도에서 반응 질소 / 산소 종 (ROS / RNS)은 신호 전달, 세포 기능 조절에 중요한 역할을하고, 면역 반응하지만, 관계가없는 농도에서 세포 생존 능력 1, 2에 해로운입니다. 살아있는 시스템이 ROS 생성을 조절하는 내생과식이 항산화 방어 메커니즘으로 발전했지만, ROS는 산소의 정상적인 신진 대사의 부산물 자연으로 연속적으로 생산되며 단백질 기능의 손실, DNA의 절단, 또는 지방질의 결과 biomolecules의 산화 손상을 일으킬 수 peroxidation 3, 궁극적으로 세포 부상 또는 사망 4로 이어지는 산화 스트레스합니다. 초과 산화물 라디칼 음이온 (O 2 • -)는 같은 peroxynitrite와 급진 히드록실과 같은 생물 학적 시스템에 존재하는 것으로 알려진 가장 높은 산화 종의 주요 전구체이다. O 2의 생성 • - 그러므로 산화 버스트의 첫 징후 신호를하고, 전TS 감지 및 / 또는 생물 학적 시스템의 격리가 중요합니다. 이 예제에서는 O 2 •이 - polymorphonuclear neutrophils (PMNs)에서 생성되었다. phorbol-12-myristate-13-아세테이트 (PMA)와 chemotactic 자극을 통해, PMN는 O 2 •를 생성 - 니코틴 아데닌 dinucleotide 인산 (NADPH) 옥시 데이스 5 활성화를 통해. 세 isoforms으로 제공 질소 산화물 (NO) synthase는 inducible -,의 연결 및 내피-NOS, 또는 iNOS, nNOS 나 eNOS는 각각 어떠한 6 생산도하는 NADPH를 이용하여 L-시트룰린로 L-아르기닌의 전환 catalyzes로 . 여기서는 내피 세포에서 아니오를 생성 않습니다. 산화 스트레스 조건 하에서, 예를 들어 eNOS는 O 2 •로 NO 생산으로 전환할 수 - 헴 7 또는 공동 인자, tetrahydrobiopterin (BH 4) 8 산화로 인한 것으로 생각됩니다 uncoupling라는 프로세스에. 오직 몇 가지가있다하지만 생물 학적 시스템의 자유 래디 칼의 검출을위한 안정적인 방법은 특이성과 감도에 의해 제한됩니다. 스핀 트래핑은 일반적으로 자유 래디 칼의 식별에 사용되며 전자 상자 성체의 공명 (EPR) 분광학에 의해 감지 수있는 영구적인 스핀 adduct를 형성 스핀 트랩에 대한 급진의 추가 반응을 포함하고 있습니다. 다양한 급진 부가물가 생성되는 래디 칼을 식별하고 급진적인 생산 9 자연과 속도론에 관한 풍부한 정보를 제공할 수 사용될 수 특유의 스펙트럼을 나타냅니다. 주기적 nitrones, 5,5 - 디메틸-pyrroline-N-옥사이드, DMPO 10 phosphoryl - 치환 DEPMPO 11 및 에스테르 - 치환, EMPO 12 BMPO 13, 널리 스핀 트랩으로 고용되어 - 후자의 스핀 adduct - 함정는 O 2 • 위해 더 이상 반 목숨을 전시. 철 (II)-N-메틸-D-glucamine dithiocarbamate, 철 (MGD) 2 &lt;/ 서브&gt;는 일반적으로 adduct 형성과 스핀 adduct 14 높은 안정성의 높은 비율로 어떠한 인해를 잡을수 없다하는 데 사용됩니다.

전자 상자 성체의 공명 (EPR) 분광학은 철 (II)-N-메틸-D-glucamine dithiocarbamate, 철 (MGD)를 사용하여 인간 neutrophils에서 소 대동맥 내피 세포와 초과 산화물 라디칼 음이온에서 질소 산화물을 감지하기 위해 고용되었다<sub&gt; 2</sub&gt;와 5,5 - 디메틸-1-pyroroline-N-산화물 각각 DMPO.

저농도의 반응성 질소/산소종(ROS/RNS)은 세포 기능, 신호 전달 및 면역 반응 조절에서 중요한 역할을 하지만, ...

저는 오하이오 주립대학교 약리학 부교수인 Frederick Dina입니다. 본 시연에서는 EPR 스핀 트래핑(Spin Trapping)을 이용하여 세포로부터 일산화질소와 초과산화물을 검출하는 방법을 보여드리겠습니다.활성 산소 및 질소종은 다양한 질병의 발생과 연관되어 있으며, 따라서 생물학적 시스템 내에서의 검출이 매우 중요합니다. 활성종 검출을 위해 생물학적 시스템에 적용된 신뢰할 수 있는 방법은 소수에 불과하며, 이들은 특이성과 민감도 면에서 한계가 있습니다. 반면, 스핀 드롭핑(Spin dropping)은 활성 산소종(ROS)의 식별에 흔히 사용되며, 이는 라디칼이 니트로 스핀 트랩이나 금속 복합체에 첨가 반응을 일으켜 지속적인 스핀 부가물을 형성하는 원리를 이용합니다. 이렇게 형성된 부가물은 전자 상자성 공명 분광법(electron paramagnetic resonance spectroscopy) 또는 EPR로 검출할 수 있으며, 다양한 라디칼 부가물은 각각 고유한 스펙트럼을 나타내므로 이를 통해 생성된 라디칼을 식별하고 라디칼 생성의 성질과 역학에 관한 풍부한 정보를 얻을 수 있습니다.산화질소 합성효소(Nitric oxide Syntase)는 N-A-D-P-H를 사용하여 L-arginine을 L citruline으로 전환하여 산화질소를 생성하는 반응을 촉매합니다. 산화적 스트레스 조건 하에서, 이 효소는 언커플링(uncoupling)이라고 불리는 과정을 통해 산화질소 대신 초과산화물을 생성하는 상태로 전환될 수 있으며, 이는 헴(heme)의 산화나 산화질소 조절을 방해하는 보조 인자로 인해 발생하는 것으로 알려져 있습니다. 생물학적 시스템에서 산화질소 조절은 혈관 확장과 같은 유익한 생리적 기능을 유도하는 세포 신호 전달에서 결정적인 역할을 하기 때문에 매우 중요하지만, 과잉 생성은 종종 염증성 질환과 연관됩니다. 따라서 생물학적 시스템 내에서 산화질소를 검출하는 것은 매우 중요합니다.생물학적 시스템에서 또 다른 중요한 신호 전달 분자 군은 일산화질소와 같은 활성 산소종입니다. 낮은 농도의 활성 산소종은 세포 기능, 신호 전달 및 면역 반응을 조절하는 데 중요한 역할을 하지만, 조절되지 않은 농도에서는 세포 산화 손상을 일으켜 산화 스트레스로 이어질 수 있습니다. 초과산화물 라디칼 음이온은 가장 중요한 활성 산소종 중 하나이며, 초과산화물 아질산염 및 하이드록실 라디칼과 같이 생물학적 시스템에 존재하는 것으로 알려진 가장 강력한 산화제들의 주요 전구체입니다. 따라서 생물학적 시스템에서 초과산화물을 검출하거나 격리하는 것은 매우 중요한데, 이는 초과산화물의 생성이 산화적 폭발의 첫 번째 징후를 나타내기 때문입니다.본 프로토콜에서는 서술된 절차에 따라 배양된 소 대동맥 내피세포를 트립신 처리합니다. 배양 후, 세포를 라벨이 부착된 6-well 플레이트로 옮겨 37 °C, 5% CO2 조건에서 하룻밤 동안 배양합니다.인큐베이터에서 6-웰 플레이트를 꺼내고 첫 번째 웰의 배지를 흡입하여 제거합니다. 1 mL의 인산완충식염수(DPBS)로 세포를 두 번 세척합니다. 0.8 mg의 황산철을 염화칼슘과 염화마그네슘이 포함된 1 mL DPBS에 첨가하여 1.9 mM 황산철 7수화물 용액을 준비합니다.염화칼슘과 염화마그네슘이 포함된 500 µL DPBS에 2.7 mg의 암모늄 MGD를 첨가하여 MGD 용액을 준비합니다. 새로 조제한 1.9 mM 황산철 헵타수화물 210 µL와, 1:7 몰비를 사용하여 새로 조제한 MGD 210 µL를 첨가하고 결과물인 현탁액을 혼합합니다. 4.6 µL의 칼슘 이온 4를 첨가하고 피펫팅을 통해 용액을 다시 혼합합니다.그 다음 샘플을 37 °C에서 36분 동안 배양하십시오. 에펜도르프 튜브에 가라앉은 상층액을 수집하십시오. EPR 획득 파라미터를 중심 자기장 3427 gauss, 변조 진폭 6 gauss, 주파수 9.8 GHz로 설정하십시오.기기 및 실험 조건에 따라 파라미터가 달라질 수 있으므로, 해당 장비에서 사용된 다른 파라미터는 본문을 참조하십시오. 상층액을 EPR 평면 셀로 옮기고 파라핀으로 밀봉한 후 EPR 공동(cavity)에 넣습니다. 실험이 수행된 후, 121회 스캔, 스캔당 10.4초 조건으로 약 21분 동안 스펙트럼을 기록합니다.Brucker WIN EPR 프로세싱을 사용하여 베이스라인을 보정하고 2D 스펙트럼을 적분하면 배경 노이즈를 줄일 수 있습니다. 스캔 시간과 스캔 횟수는 실험마다 다를 수 있다는 점에 유의해야 합니다. 또한, 베이스라인 보정 방법 역시 소프트웨어마다 다를 수 있습니다.eNOS 언커플링을 시작하려면, 6-웰 플레이트의 두 번째 웰에서 배지를 제거하고 1 mL의 DPBS로 세포를 두 번 세척합니다. 그다음 준비된 0.5 mM Syn 1 용액 100 µL를 첨가하고, 10% FBS가 포함된 DPBS로 최종 부피를 2 mL로 맞춘 후, 37 °C 및 5% CO2 조건에서 2시간 동안 세포를 배양합니다.세포를 DPBS로 두 번 세척합니다. 그런 다음 갓 조제한 2.8 millimolar 황산철 칠수화물 210 microliters와 이전 절차에 따라 갓 조제한 19.6 millimolar MGD 210 microliters를 첨가합니다. 이어서 1.9 millimolar calcium ion four 4.6 microliters를 첨가하고 용액을 다시 혼합합니다.이전과 동일하게, 세포를 37 °C에서 36분 동안 배양합니다. 36분 후, 에펜도르프 튜브에 가라앉은 상층액을 수집하여 EPR 플랫 셀로 옮깁니다. 이전과 동일한 수집 파라미터를 사용하여 EPR 스펙트럼을 기록합니다.본 프로토콜을 시작하기 전, 동일한 방식으로 데이터를 처리하십시오. 1 M DMPO 표준 용액과 0.1 mM DTPA가 포함된 PBS를 준비합니다. 그다음, 4-by-12의 1 mg/mL 용액을 만듭니다.DMSO에 용해된 Myra State 13 acetate 또는 PMA를 사용하여, 1 mg/mL D-glucose와 1 mg/mL albumin이 포함된 einor tube의 PBS로 PMA 스톡 솔루션을 10 µg/mL로 희석하여 1 mL씩 분주합니다. 1.5 mL einor tube에서 피펫팅을 통해 PMN 세포를 5~6 × 10⁶ cells/mL 농도로 조절합니다. 약 1.6 × 10⁶ cells의 PMN, 10 mM DMPO 및 0.2 µg/mL PMA를 포함하며 최종 부피가 60 µL가 되도록 혼합물을 준비합니다.본 실험에서는 Bruker ESP 300 X 밴드 분광계를 사용합니다. 용액을 EPR 플랫 셀에 옮긴 후, 플랫 셀을 EPR 공동(cavity)에 넣습니다. EPR 획득 파라미터로 중심 자기장 3, 486 goss, 변조 진폭 0.5 goss, 주파수 9.8 gigahertz를 입력합니다.기기 및 실험 조건에 따라 매개변수가 달라질 수 있으므로, 스펙트럼 획득에 사용된 다른 매개변수들은 본문을 참조하시기 바랍니다. 본 시연에서는 두 가지 서로 다른 스핀 트랩인 iron MGD와 DNPO를 사용하여 일산화질소와 초과산화물 라디칼의 검출 과정을 보여줍니다.우리는 칼슘 이온 4(calcium ion four)로 혈관 내피세포를 자극하면 일산화질소가 생성되며, seen one으로 처리할 때의 결과도 보여줍니다. perine nitrite 공여체는 일산화질소 생성을 감소시킬 수 있으나, 니트로 스핀 트랩(nitro spin trap) 존재 하에 PMA로 호중구를 자극하면 초기 형성된 초과산화물 adda의 불안정성으로 인해 S 산화물 대신 하이드록실 라디칼 ADDA가 생성됩니다. iron mg d nitros에 의한 스핀 트랩 메커니즘은 기본적으로 동일하지만, iron MGD에 일산화질소가 결합하는 과정은 반응 속도가 매우 빠르며, 형성된 iron MGD 일산화질소 결합 형태는 매우 안정적입니다.실제로 EPR 신호 강도의 유의미한 감소 없이 EPR 스펙트럼을 나중에 얻기 위해 용액을 -80 °C에서 냉동 보관할 수 있습니다. 반면, 니트로 스핀 트랩을 이용한 산화물 검출 속도는 느립니다. 이로 인해 일산화질소 검출을 위한 상대적인 철 MGD 4에 비해 더 높은 농도의 스핀 트랩이 필요합니다.초과산화물 부가물 형태를 성공적으로 검출하기 위해 여러 가지 접근 방식이 사용되어 왔으며, 본 영상에서는 더 이상 시연하지 않았습니다. 예를 들어, 평면 셀(flat cell)을 사용하면 세포 밀도가 더 높아지기 때문에 초과산화물 부가물 신호 강도를 더 높일 수 있습니다. 이 문제에 대해서는 관련 텍스트를 참고하시기 바랍니다.또한, DMPO 대신 BMPO 및 VMP와 같은 인증된 스핀 트랩이나, 더 지속적인 SU 과산화물 부가물을 생성할 수 있는 인산화된 Nitro DAP MPO를 사용할 수 있습니다. US 검출을 위해 스핀 트래핑을 적용할 때 SU 과산화물 부가물을 안정화하기 위해 시클로덱스트린을 사용하기도 했습니다. SU 슈퍼옥사이드 생성 직후에 EP 스펙트럼을 즉시 획득하는 것을 강력히 권장합니다.따라서, 철 MGD를 이용한 일산화질소 검출은 훨씬 더 효율적이며, 현재 초과산화물의 PR 스핀 트래핑이 직면한 주요 과제는 철 MGD 일산화질소 가첨물 형성에서 관찰된 특성들을 확보하는 것입니다. 즉, 빠른 초과산화물 반응성과 안정적인 가첨물 형성입니다. 초과산화물에 대해 빠른 반응성을 보이며 안정적인 스핀 가첨물을 형성하는 스핀 트랩을 개발하기 위한 노력이 현재 본 연구실과 다른 연구 그룹들에 의해 진행되고 있습니다.

detection-nitric-oxide-superoxide-radical-anion-electron-paramagnetic

Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

이 프로토콜은 전자 스핀 공명 현미경 살아있는 세포의 즉각적인 환경에서 산소 농도의 미크론 스케일 입체 영상을위한 방법을 설명합니다.

전자 스핀 공명 산소 매핑에 대한 라이브 종의 마이크로 이미징

스핀 - 트래핑 ESR 분광법은 공장 산화 억제제 lycopene, pycnogenol와 담배 연기의 가스 상에게 자유 래디 칼을 청소에 포도 종자 추출물의 효과를 연구하는 데 사용되었다.

메인 스트림 담배 연기에 자유 래디 칼을 감지하고 가스 단계 청소를위한 프로토콜

질소 산화물 (NO)의 내생적인 생산은 생물 학적 기능의 다양한 조절. 그것은 어떠한 기반 시그널링의 장애 또는 dysregulation이 많은 사람이 질병에 연루되어 있는지 점점 더 분명 해지고 있습니다. 메소드는 더 이상 metabolites 인간 질병에 대한 소설 진단 또는 전조 생체 자료를 제공할 수 없습니다 관련된 계량합니다.

질소 산화물 Bioactivity을 시금을위한 분석 기법

이 문서에서 우리는 형광 염료를 엉 얼굴 동시 탐지 및 세포 내 산화 질소의 시각화 (NO)과 슈퍼 옥사이드 음이온 (O 2 diaminofluorescein-2 디 아세테이트 (DAF-2DA) 및 dihydroethidium (DHE)를 사용하여 적응 상대적으로 쉬운 방법을 설명 .- )는 각각 갓에 비만 마우스 모델을 그대로 대동맥을입니다.

본래 동맥의 내피 층에서 산화 질소와 활성 산소의 욕실 얼굴 인식

새로운 전자 상자성 공명 (EPR) 방법, 빠른 스캔 EPR (RS-EPR)는, 기존의 연속파 (CW) 기술보다 우수하고 생체 내 이미징을위한 새로운 장소를 엽니 다 2D 스펙트럼 공간 영상에 대한 설명된다. 결과 250 MHz에서 입증되지만, 기술은 주파수에서 적용 가능하다.

빠른 스캔 전자 스핀 공명 이미징 생리 학적으로 중요 매개 변수에 대한 새로운 길을 엽니 다<em&gt; 생체</em

전자 상자성 공명 (EPR) 분광학은 자유 래 디 칼을 측정 하는 명확한 방법입니다. 선택적 스핀 프로브를 사용 하 여 다른 세포질 격실에서 자유 래 디 칼의 검출에 대 한 수 있습니다. 우리는 치료, 저장 및 전송 EPR 측정용 샘플을 용이 하 게 하는 생물 학적 샘플을 수집 하는 실용적이 고 효율적인 방법을 제시.

사용 주위 온도 77 K에서 생물학 견본에서 전자 상자성 공명

이 프로토콜은 캡슐화된 인간 세포를 최대 72시간 동안 생존할 수 있도록 유지하기 위한 NMR 생물반응기의 설정에 대해 설명하고, 이어서 시간 분해된 세포 내 NMR 데이터 수집 및 분석을 설명한다. 이 방법론은 세포 내 단백질-리간드 상호작용을 실시간으로 모니터링하기 위해 적용된다.

고세포 밀도 생물반응기를 이용한 실시간 정량적 세포내 NMR에 의한 인간 세포에서의 단백질-리간드 상호작용 모니터링

여기에서는 고감도의 화학 발광 기반 분석을 사용하여 산화 질소 및 이의 생물학적 관련 유도체를 검출하기위한 프로토콜을 제시합니다.

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뮐러 신경교 세포에서 2',7'-디클로로플루오레세인 디아세테이트 프로브 및 유세포 분석기를 사용한 반응성 산소 종의 정량화

과산화물 음이온의 생성은 혈소판의 자극에 필수적이며, 조절이 잘 되지 않는 경우 혈전성 질환에 매우 중요합니다. 여기에서는 과산화물 음이온의 선택적 검출과 산화 환원 의존성 혈소판 조절 연구를 위한 세 가지 프로토콜을 제시합니다.

혈소판에서 과산화물 음이온 생성을 검출하기 위한 대체 방법 

배우세요 세포에서 산화질소와 초과산화물을 EPR 분광학과 스핀 트랩을 이용해 검출하는 방법을. 이 기술은 활성 산소 종을 식별하여 질병 메커니즘 연구에 활용됩니다.

질소 산화물과 세포로부터 전자 상자 성체의 프로그램 공명 분광학에 의한 초과 산화물 음이온 급진적가 탐지 스핀 트랩을 사용하여

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