나노유체 칩을 사용하여 희귀한 전사체 변이체를 검출하는 칩 기반 디지털 PCR

0 views • 7:50 min • July 8th, 2025

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칩 기반 디지털 PCR 기술은 단일 반응을 나노유체 칩의 챔버로 분할합니다. 분할된 서열의 증폭을 통해 희귀 전사체 변이체(낮은 빈도로 발생하는 비표준 전사체)를 검출할 수 있습니다.

시작하려면 표적 희귀 전사체 변이체와 일반 변이체의 cDNA를 포함하는 샘플을 채취합니다. 열안정성 DNA 중합효소, dNTP 및 프라이머를 포함하는 용액을 추가합니다.

다양한 형광 리포터 및 소광제 분자로 표지된 일반적이고 희귀한 전사체 변이체 특이적 올리고뉴클레오티드 프로브를 추가합니다. 소광제는 가까이 있을 때 리포터의 형광을 흡수합니다.

혼합물을 나노유체 칩에 로드합니다. 용액은 균일 한 크기의 나노 챔버로 분할됩니다. cDNA를 포함하는 각 챔버는 독립적인 반응 용기 역할을 합니다.

열 순환 프로세스를 시작합니다. 높은 변성 온도는 이중 가닥 DNA를 단일 가닥으로 분리합니다. 온도를 낮추어 프라이머와 올리고뉴클레오티드 프로브가 단일 DNA 가닥의 상보적 영역에 어닐링되도록 합니다.

DNA 중합효소가 프라이머를 확장하고 프로브를 절단하는 확장 단계에 도달하기 위해 온도를 높입니다. 소광기와의 거리는 리포터의 형광 방출을 가능하게 합니다. 형광 신호를 읽습니다.

증폭된 희귀 전사체 표적이 있는 챔버와 표적이 없는 챔버를 나타내는 산점도를 만듭니다. 표적에 대한 양성 신호는 샘플에 희귀 전사체 변이체가 존재함을 나타냅니다.

시작하려면 마스터 믹스와 분석을 실온에서 최소 20분 동안 해동시킵니다. 그런 다음 0.5밀리리터 튜브에 cDNA 샘플의 6마이크로리터 분취량을 로드합니다. 또한 템플릿이 없는 컨트롤 튜브를 만드십시오. 다음으로, 마스터 믹스를 부드럽게 소용돌이치고 반응당 8.7마이크로리터를 멸균 튜브에 분취합니다.

그런 다음 각 반응에 대해 0.87마이크로리터의 맞춤형 분석 프라이머를 추가하고 1.83마이크로리터의 뉴클레아제가 없는 물을 추가합니다. 조합을 부드럽게 혼합하고 11.4마이크로리터를 cDNA가 포함된 각 튜브와 주형 없음 대조군으로 옮깁니다. 그런 다음 튜브를 부드럽게 혼합하고 펄스 원심분리를 사용하여 튜브 내용물을 모으십시오. 최적의 결과를 얻으려면 가능한 한 빨리 칩을 로드하십시오.

칩 로더를 연결하고 표시등이 녹색으로 바뀔 때까지 기다립니다. 그런 다음 플런저를 1-2mm까지 부드럽게 당겨 침지 유체 주사기를 준비한 다음 캡을 제거하고 팁을 추가합니다.

그런 다음 새 칩의 뚜껑에 적힌 코드를 기록한 다음 뚜껑의 측면을 조심스럽게 잡고 보호 필름을 떼어낸 다음 끈적끈적한 면이 위로 향하도록 뚜껑 네스트에 놓습니다. 이제 레버를 눌러 클램프를 열고 칩을 칩 네스트에 조심스럽게 로드합니다.

그런 다음 새 로딩 블레이드를 로더에 넣습니다. 부드럽게 밀어 제자리에 단단히 고정되었는지 확인하십시오. 이제 14.5마이크로리터의 반응 혼합물을 로딩 블레이드로 옮깁니다. 기포를 만들지 말고 칼날을 편향시키지 마십시오. 그런 다음 검은색 "로딩 중" 버튼을 눌러 볼륨을 칩에 분배합니다.

로딩 블레이드가 제자리에 있는지 확인하는 것이 중요합니다. 그런 다음 블레이드를 채우는 동안 기포가 발생하지 않도록 피펫을 두 번째 정지 지점까지 누르지 마십시오. 또한 끝으로 칼날을 휘두르지 마십시오.

사기를 사용하여 약 20방울의 침지 유체를 칩 표면에 옮깁니다. 팁으로 표면을 만지지 않도록 주의하고, 표면이 넘치지 않고 완전히 덮으십시오. 그런 다음 로터 암을 돌려 뚜껑이 칩에 닿도록 하고 15초 동안 누릅니다. 그런 다음 뚜껑 버튼을 눌러 칩을 분리하고 로더 암을 정지 위치로 되돌립니다. 이제 클램프를 열고 조립된 칩을 45도 각도로 잡고 주사기를 통해 충전 포트를 통해 침지 유체를 조심스럽게 분배합니다. 그런 다음 칩을 약간 돌려 기포를 제거한 다음 멸균 물티슈로 여분의 액체를 제거합니다.

팁 가장자리에 침지 유체를 흘리지 마십시오. 이 경우 밀봉하기 전에 초과분을 조심스럽게 제거하십시오.

마지막으로 뚜껑의 라벨을 부드럽게 떼어낸 다음 충전 포트를 최소 5초 동안 막아 칩 케이스를 밀봉합니다. 이제 칩을 2시간 이내에 사용하고 그때까지 어둠 속에 보관하십시오.

반응을 설정하려면 뚜껑을 열고 단일 블록을 사용하는 경우에도 두 블록에 어댑터를 설치하십시오. 그런 다음 샘플 블록에 칩을 놓고 충전 포트를 열 순환기 전면으로 향하게 하고 포트를 약간 들어 올립니다. 빈 칩을 사용하여 두 블록의 균형을 맞춥니다.

그런 다음 열 패드를 설정 위에 놓아 칩을 완전히 덮습니다. 그런 다음 주기를 프로그래밍하고 뚜껑을 닫고 반응을 시작합니다.

반응이 끝나면 열 순환기를 끄고 열 패드를 제거한 다음 칩을 제거합니다. 칩을 어둠 속에서 최소 10분 동안 실온으로 해동하고 한 시간 이내에 분석하십시오. 칩 표면을 이소프로판올로 청소하면서 누출이나 기타 문제가 있는지 검사하십시오.

데이터를 저장하려면 데이터를 저장할 수 있는 감지기 시스템에 USB 메모리 스틱을 삽입하십시오. 그런 다음 감지기 시스템의 칩 트레이를 열고 칩을 앞면이 위로 향하게 로드합니다. 트레이를 닫고 데이터가 처리될 때까지 30초 동안 기다립니다. 그런 다음 칩을 제거하고 다음 칩에 대해 이 과정을 반복합니다.

그런 다음 USB 스틱을 감지기에서 컴퓨터로 옮기고 파일을 전송합니다. 클라우드 기반 소프트웨어를 연 다음 프로젝트를 만들고 관심 있는 칩에 대한 모든 데이터 파일을 가져옵니다. 그런 다음 "정의된 칩" 탭에서 사용된 염료 및 분석을 선택합니다. "데이터 검토" 탭에서 칩을 시각화하여 칩이 허용되는지 확인합니다. 샘플이 잘 로드된 경우 최소 13,000개의 포인트를 사용할 수 있어야 합니다.

다음으로 선택한 칩의 산점도를 확인합니다. 거기에서 분석 유형에 의해 정의된 임계값을 적용합니다. 플루오레세인 아미다이트 리포터 염료 신호의 경우 임계값 6,000을 사용합니다. 이제 오탐을 일으킬 수 있는 의심스러운 신호를 제거하세요. "올가미" 도구를 사용하여 산점도에서 의심스러운 지점을 선택하고 "미결정" 옵션을 선택합니다.

나머지 모든 양성 지점은 분석된 희귀 표적의 cDNA 사본이 있음을 나타냅니다.

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