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성체 체세포는 줄기 세포와 유사한 미분화 및 증식 상태를 나타내는 유도만능줄기세포(iPSC)를 얻기 위해 유전적으로 재프로그래밍될 수 있습니다.
인간 iPSC를 대식세포(병원체와 세포 파편을 식균하는 백혈구)로 분화하려면 비세포 접착 표면이 있는 배양 플레이트부터 시작합니다.
성장 인자 뼈 형성 단백질, 줄기 세포 인자 및 혈관 내피 성장 인자를 포함하는 배지를 추가합니다. iPSC를 시종하고 배양합니다.
비접착성 표면은 iPSC 부착을 방지하고 세포를 현탁액으로 유지하여 3차원 배아체(EB)로의 응집을 촉진합니다. 성장 인자는 EB 내에서 중배엽 계통 세포로의 iPSC 분화를 시작합니다.
분화된 EB를 원심분리기 튜브로 옮깁니다. 중력을 통해 정착하도록 하십시오. 인터루킨-3, IL3 및 대식세포 콜로니 자극 인자인 CSF1을 포함하는 신선한 배지에 EB를 재현탁합니다. 젤라틴 코팅된 세포 배양 플레이트에 EB를 플레이트합니다.
세포외 기질 단백질인 젤라틴은 EB 부착을 촉진합니다. IL3는 EB가 조혈모전구세포로 분화하도록 자극하여 골수세포를 생성합니다. CSF1은 골수 세포 증식과 배지에서 방출되어 현탁 상태로 남아 있는 대식세포 전구체로의 분화를 지원합니다.
현탁 세포를 수집하고 원심분리합니다. CSF1 보충 배지에 세포를 재현탁합니다.
코팅되지 않은 배양 플레이트에 세포를 도금합니다.
CSF1은 대식세포 전구체를 완전한 기능의 부착성 성숙 대식세포로 말단 분화를 유도합니다.
0일에 분화 과정을 시작하려면 2.25밀리리터의 1단계 배지를 초저부착 6웰 플레이트의 두 웰에 추가합니다. 그런 다음 6웰 플레이트에서 iPSC의 180% 컨플루언트 웰의 경우 유지 배지를 1.5밀리리터의 1단계 배지로 교체합니다. 새로운 세포 계대 도구를 사용하여 콜로니를 절단합니다. 피펫을 사용하여 절단된 콜로니를 초저부착 6웰 플레이트의 두 웰로 옮깁니다.
2일째에 0.5밀리리터의 hESC-SFM 배지를 2일째 배아체를 포함하는 6웰 웰 플레이트에 추가하여 사이토카인 농도를 조정합니다.
4일째에 6웰 조직 배양 플레이트의 4웰을 0.1% 젤라틴으로 코팅합니다. 최소 10분 동안 배양한 후 젤라틴을 제거하고 2.5 밀리리터의 2단계 배지를 추가합니다.
6웰 플레이트의 두 웰에서 형성된 배아체를 수집하여 50밀리리터 원심분리기 튜브에 넣습니다. 중력에 의해 튜브 바닥에 가라앉도록 하십시오. 그런 다음 튜브에서 배지를 조심스럽게 흡인하고 배아체를 2밀리리터의 2단계 배지에 재현탁합니다.
10-15개의 배아체를 2.5밀리리터의 2단계 배지를 포함하는 젤라틴 코팅 웰에 옮기고 섭씨 37도에서 5% 이산화탄소와 함께 배양합니다. 2-3주 동안은 3-4일마다 미디어를 교체하십시오.
EB의 도금은 매우 중요합니다. EB가 10개 미만 또는 15개 이상이거나 고르지 않게 분포되어 있으면 대식세포 수율이 낮아질 수 있습니다.
2-3주 후, 배아체는 부착되지 않은 조혈 세포를 현탁액으로 방출하기 시작합니다. 40마이크로미터 스트레이너를 사용하여 이 세포를 50밀리리터 튜브에 모은 다음 배지를 보충합니다. 조혈 세포의 현탁액을 200 x g에서 3분 동안 원심분리합니다.
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혈 세포를 3단계 배지에 재현탁합니다. 그런 다음 밀리리터당 0.2 x 106의 밀도로 세포를 도금합니다. 3일마다 3단계 용지를 교체합니다.
9일에서 11일 후에 대식세포는 완전히 분화되고 완전히 기능할 것입니다.