항원 특이적 CD8+ T 세포의 나노 입자 기반 농축 및 증식

0 조회수5:41 • July 8th, 2025

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세포 스트레이너에서 마우스 비장과 림프절을 침용합니다. 비장세포와 림프구를 수집하기 위해 적절한 완충액으로 스트레이너를 세척합니다.

비오티닐화 항체 칵테일 및 비-CD8+ 세포에 결합하는 자성 항비오틴 마이크로비드와 함께 세포를 배양합니다.

세포 현탁액을 자기 컬럼에 통과시킵니다. 자력으로 인해 비드에 결합된 비-CD8+ 세포는 컬럼 벽에 결합하고 CD8+ T 세포는 용리됩니다.

용출된 세포를 인공 항원 제시 세포인 aAPC와 함께 배양합니다. 이들은 항원이 탑재된 주요 조직적합성 복합체-면역글로불린 융합 단백질, MHC-Ig 및 항-CD28 항체로 기능화된 자성 나노입자입니다.

항원이 탑재된 MHC-Ig는 항원 특이적 CD8+ T 세포의 별개의 수용체에 결합합니다. 항-CD28 항체는 T 세포 CD28 수용체와 상호 작용하여 T 세포 활성화를 시작합니다.

자성 나노입자와 세포 혼합물이 들어 있는 튜브를 마그네틱 스탠드에 놓습니다. aAPC 결합 CD8+ T 세포는 자기장에 끌리는 반면 비특이적 CD8+ T 세포는 부유 상태로 유지됩니다. 상청액을 제거합니다.

마그네틱 스탠드에서 튜브를 제거합니다. aAPC 결합 세포를 T 세포 성장 인자 함유 배지에 재현탁합니다. 멀티웰 플레이트에 파종하십시오.

성장 인자는 항원 특이적 CD8+ T 세포 확장을 유도합니다.

항원 특이적 CD8 양성 T 세포를 분리하기 위해, 야생형 C57Black/6j 마우스의 비장 및 림프절을 PBS 헹굼과 함께 멸균 70마이크로미터 세포 여과기를 통해 침용하고, 제조업체의 지침에 따라 비접촉 CD8 양성 T 세포 분리 키트를 사용하여 비-CD8 양성 T 세포를 제거합니다.

계수 후, 분리된 CD8 양성 T 세포를 원심분리하여 수집하고, 0.5% 소 혈청 알부민과 2밀리몰 EDTA를 보충한 100마이크로리터의 PBS에 펠릿을 재현탁합니다.

그런 다음, 멸균된 5밀리리터 폴리스티렌 둥근 바닥 튜브에서 1시간 동안 섭씨 4도에서 지속적으로 혼합하면서 1시간 동안 1 x 10 6개의 분리된 CD8 양성 T 세포당 1 x 1011 타이드 로딩 MHC-Ig가 있도록 나노입자 인공 항원 제시 세포와 함께 세포를 배양합니다.

배양이 끝나면 나노입자 세포 현탁액을 시연된 대로 마그네틱 스탠드에서 3회 세척하고, 인공 항원 제시 세포와 농축된 CD8 양성 T 세포를 1% T 세포 성장 인자가 포함된 500마이크로리터의 신선한 보충 배지에 다시 현탁합니다.

세포 회수율을 극대화하려면 세포의 입자를 자기 컬럼에 최소 2분 동안 방치하고 자기장의 영향을 받는 입자와 세포를 방해하지 않고 완충액을 조심스럽게 흡인하는 것이 중요합니다.

계수 후, 보충된 배지 160마이크로리터당 2.5 x 105개의 농축된 CD8-양성 T 세포와 자성 입자 혼합물과 1% TCGF를 96웰 U-바닥 플레이트에 시드합니다. 3일째에 웰당 2% T 세포 성장 인자로 80마이크로리터의 보충 배지를 세포에 공급하고 플레이트를 세포 배양 인큐베이터로 4일 더 되돌립니다.

7일째에 자극된 세포를 계수를 위해 5밀리리터 둥근 바닥 튜브에 수확하고 원심분리로 세포를 수집합니다. 계수를 위해 0.05% 아지드화나트륨과 2% 소 태아 혈청이 보충된 0.5밀리리터의 PBS에 펠릿을 재현탁하고, 항원 특이적 염색을 위해 5 x 104 내지 5 x 105 세포를 새로운 5밀리리터 둥근 바닥 튜브에 분취합니다.

적절한 튜브에 비오티닐화된 MHC-Ig 및 항마우스 CD8a를 섭씨 4도에서 1시간 동안 라벨링한 후 신선한 PBS에서 원심분리기 세척하여 과도한 비오티닐화 면역글로불린을 제거합니다. 그런 다음 적절한 스트렙타비딘 접합 2차 항체 및 적절한 생/사형 고정 가능한 사세포 염색으로 샘플을 섭씨 4도에서 15분 동안 염색하고 유세포 분석기에서 세포를 판독하여 표준 프로토콜에 따라 항원 특이적 CD8 양성 T 세포의 특이성과 수를 결정합니다.

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마지막 업데이트: 15 8월 2026