Name: 측면 유체 타악기 : 마우스의 외상성 뇌 손상 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 4 s
Description: 배우세요 측면 유체 타악기 기법을 사용하여 마우스에서 외상성 뇌 손상을 유도하는 방법을. 이 기술은 신경과학 연구에서 뇌 손상의 형태학적 및 행동 변화를 평가하는 데 필수적입니다.

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이 작품은 뇌 손상의 연구에 뉴저지위원회 후원됩니다.

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관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.

LFP 방법은 여기에 제시의 neuropathalogical과 행동 결과 많은 모델은 TBI의 널리 사용되는 동물 모델이 될 이유는 외상성 뇌 손상을 검토할 온화한. 이 기법의 타당성과 신뢰성을 향상시키기 위해 고려해야 할 몇 가지 중요한 단계가 있습니다. 예를 들어, 두라의 무결성이 craniectomy 중에 손상되지 않은있는 유일한 동물 LFP의 대상 및 연구에 사용하는 것이 중요합니다. craniectomy 어떤 접착제 또는 시멘트에 의해 occluded 경우 또한 craniectomy 아래 두라 이러한 부분이 유체 압력의 강제로 노출하지 않습니다, 동물이 연구에서 제거되어야합니다. righting 반사 시간이나 사망률이 원하는 범위 내에 있지 않은 경우 마지막으로, 동물은 연구에 포함되지 않습니다. 압력 펄스의 강도가 더 심한 부상을 생성 증가 수 있습니다. 그림 1에 나타난 LFP 장치의 구성은 비교적 간단하고 부상의 정도의 재현성은 오실로 스코프에 대한 압박의 분위기를 모니터링하여 유지됩니다. 오실로 스코프 추적에 곡선의 부드러운 형태 LFP 부상의 유도 방해 수있는 유체에 공기 방울이 없다는 것을 나타냅니다. 테스트 펄스가 부상을 유도하기 전에 전달되어야하며 오실로 스코프 추적이 부드러운 곡선을 전시하지 않는 경우, 공기 방울이 제거되어야합니다. 펄스의 기간은 충돌 테스트 시뮬레이션에서 측정 유도 시간을 나타냅니다 약 20 밀리초입니다. 짧은 펄스의 부상이 더 초점 부상을 생산 가능성이 있습니다. TBI 따라서, 펄스 모델이 기간은 인간. LFP 다음과 같은 형태학의 및 세포 변화는 조직뿐만 아니라 그림 2에서 보여주 astrocytes와 macrophages의 증가 수를 물리적 손상이 포함됩니다. 이곳은 상해의 특징 신호 중 하나가 astrocytes의 증식과 glial 흉터의 형성이라고 설정됩니다. glial 흉터는 유익하고 해로운 효과 24 모두를 가질 표시되었습니다. 마찬가지로, macrophages은 치유 과정 25 시작 때 위상 다음과 같은 부상하는 동안 여러 조직에 축적하는 것으로 알려져 있습니다. 따라서 가짜 컨트롤에 상대적으로 LFP 샘플에서 GFAP 및 MAC1 긍정적인 세포의 증가 숫자는 부상의 유도 나타내는 것입니다. 가짜 컨트롤에서 해당 셀을 특정 마커 표현의 부족 혼자 수술 조작은 부정적인 뇌 조직의 건강에 결과 그 단백질 표현의 변화가 부상 패러다임에만 해당이 없다는 것을 나타냅니다. 그림 3에서 그림 온화한 LFP의 행동 결과는 인지적 및 모터 적자를 포함합니다. MWM의 결과는 LFP 생쥐 결국 가짜 마우스보다 느린 속도지만, 작업을 배우고 그들이 훈련 후 잘 하루가 작업을 기억하지 나타냅니다. 따라서, 심지어는 가벼운 부상 마우스는 이후의 테스트 기간 동안 검색할 수 있어야합니다 공간 정보를, 프로세스 통합, 그리고 저장하는 외부 신호를 사용하는에서 사기 마우스보다 효율적입니다. 이러한 시설이 두려움 반응과 같은 다른 hippocampal 종속 인지적 작업 LFP 26 대상이 생쥐에서 장애인으로 표시되었습니다. 마지막으로, 짧은 대기 시간은 가벼운 부상으로 다음과 같은 최대 3 주 rotarod 패러다임의 사기 마우스에 비해 LFP 마우스로 가을하면 통합 vestibulomotor 및 sensorimotor 기능의 결손의 지표이다. 더 적당한 부상은 다른 그룹에 27-30로 표시되어 같이인지 및 운동 기능에 이상 눈에 띄는 변화를 보여줄 것입니다. 그것이 예상 기준 중 많은 것들을 충족하기 때문에 요컨대, LFP 인간 TBI의 유효한 모델입니다. LFP는 건설 타당성을 제공한다는 점에서 그것은 인간의 TBI 유도 etiological 프로세스를 다시 만듭니다. 특히, 포스와 사망률의 크기는 사전에 부상 수술 개입은 동물 모델에 고유한되는 경고와 온화하고 적당한 스포츠 및 자동차 관련 부상에서 발생하는 것과 비슷합니다. LFP는 또한 인간의 TBI의 관찰 해부, 생화학, neuropathological 및 행동 효과의 많은 것을 LFP recapitulates의 얼굴 유효 기간을 나타냅니다. 초점과 확산 LFP 후에 감지된 변화와 영향의 lateralization 모두 하나가 contralateral 측면에 해당하는 부상을 ipsilateral 측면에 형태학의 손상을 비교할 수 있습니다 있습니다. 하나 주의해야 할 점은인지하고 모터 효과가 하나의 반구를 손상의 결과로 좀 더 정교한 수있다. 마지막으로, LFP는 예측 타당성을 전시하고 LFP 기술의 신뢰성은 부상 20 유도 앞이나 뒤에 다양한 약리과 유전자 조작의 평가를 수 있습니다. 이러한 혈압, 혈액 산도 피로 생리 변수건가 ... 치료 요원의 행동의 메커니즘을 결정하는 시험 약물의 존재와 부재에 측정해야합니다. 그러나, 때문에 TBI의 기본 및 보조 결과의 복잡한 특성, 그것은 증상을 모두 낮출 수있다 하나의 개입을 식별하는 어려운 작업입니다. LFP 기법에 대한 하나의 미래를 고려 유체 15 진자에 의해 전달되는 힘을 보정의 필요성을 제거하고 같은 공기 방울로 운영 변수를 방지하기위한 마이크로 프로세서 제어, pneumatically 주도 악기를 고용 마이크로 유체 타악기의 사용을 수 있습니다 . 그러나, 표준 LFP 접근이 더 나은 개입 및 치료제로 이어질 것입니다 TBI 다음과 같은 피해 및 복구를 기본 분자 메커니즘을 탐구하기 위해 안정적이고 간단한 방법으로 많은 연구에 의해 입증되었습니다.

<ul><li> 생쥐에 대한 Stereotaxic 정렬 악기 (Kopf 악기) </li><li> 마우스 가스 마취 헤드 홀더 (Kopf 악기) </li><li> O 2 플러시 (파클랜드 과학)과 마취 기계 </li><li> O2 플러시 (파클랜드 과학)과 마취 기계 </li><li> Buprenorphrine (웹스터 동물 공급) </li><li> 새로고침 Lacri 루브 아이 연고 (피셔) </li><li> Bupivacaine / Marcaine (웹스터 동물 공급) </li><li> Povidone - 요오드 용액 (피셔) </li><li> 20g 1 ½ &quot;바늘 (백톤 디킨슨) </li><li> 메스 블레이드 (# 15)과 홀더 (백톤 디킨슨) </li><li> 불독 클램프 (파인 과학 도구) </li><li> 치과 도구 또는 뼈 스크레이퍼 (파인 과학 도구) </li><li> 포셉 더몬트 쥐고 사이드 # 6 (파인 과학 도구) </li><li> 3mm 외경 trephine (연구 계측 센터, 펜실베니아 대학) </li><li> 솔리드 나일론 코드 (1.7 mm 직경 예 비드 라인 트리머) </li><li> 슈퍼 접착제 겔 </li><li> Loctite cyanoacrylate 접착제 (Loctite 444 탁 박) (헨켈 공사) </li><li> 제트 아크릴 액체 (버틀러 Schein) </li><li> 파마의 Reline / 수리 수지 (버틀러 Schein) </li><li> 스토리지 오실로 스코프 TDS 1001B, 40 MHz의, 500MS / s의 (텍트로닉스) </li><li> 외상 유도 압력 변환기 증폭기 (사용자 정의 설계 및 제작, 버지니아 커먼 웰스 대학) </li><li> LFP 장치 (사용자 정의 설계 및 제작, 버지니아 커먼 웰스 대학) </li><li> 고압 튜브, 길이 41cm, 볼륨 2ml (백스터) </li><li> 3M Vetbond 조직 접착제 (피셔) </li></ul>

측면 유체 타악기 : 마우스의 외상성 뇌 손상 모델

Lateral Fluid Percussion: Model of Traumatic Brain Injury in Mice

외상성 뇌 손상 (TBI) 머리 부상의 증가 의식에 의한 연구가 달성 갱신 추진력, 병적 상태와 사망률의 결과. 재생 프로세스 1,2 뒤에 아르 TBI, 복잡하고 이질적인 보조 결과 결과, 다음 주 부상의 성격에 따라. 주 상해는 두개골 골절 또는 전단 및 이동 3,4로 인해 두뇌의 조직 발생 변위의 스트레칭의 두뇌에 직접 타박상에 의해 유도된 수 있습니다. 그 결과 hematomas과 상처는 혈관 반응 3,5 원인, 그리고 흰색 물질의 형태학의 기능적인 손상이 axonal 부상 6-8을 무마하기 위해 연결됩니다. 일반적으로 두뇌에서 볼 추가 보조 변경 부종 증가 intracranial 압력 9아르. TBI에 따라 궁극적으로 장기적인 신경 장애를 초래할 13,14 excitotoxic 신경 전달 물질, 면역 중재자와 산소 래디 칼 10-12의 출시와 관련된 생화 학적 및 생리 학적 경로의 미세한 변경이 있습니다. 따라서 인간과 설치류 TBI에있는 유사한 세포와​​ 분자 이벤트 부상 및 수리를 기본 메커니즘을 연구를위한 중요한 것을 TBI의 적절한 동물 모델을 선택. 유체 타진, 대뇌 피질의 충격과 체중 드롭 / 충격 가속 1 : TBI의 다양한 실험 모델은 그 중 세 특정 모델을 널리 설치류에 맞게 있으며, 인간 관찰 TBI의 측면을 재현하기 위해 개발되었습니다. 유체 타악 장치는 그대로 두라에 간단한 유체 압력 펄스를 적용하여 craniectomy를 통해 부상을 생산하고 있습니다. 펄스는 액체의 저수지의 피스톤을 때리는 진자에 의해 생성됩니다. 타악기는 간단한 변위 및 신경 조직 1,15의 변형을 생산하고 있습니다. 반대로 피질 충격 부상 공압 압력 16,17 아래 단단한 임팩터 통해 그대로 두라에 기계적 에너지를 제공합니다. 체중 드롭 / 충격 모델은 닫힌 해골 18 특정 질량을 가진 막대의 가을이 특징입니다. TBI 모델 중 LFP 혼합 초점 및 확산 뇌 손상 19 평가할 수있는 가장 설립하여 일반적으로 사용되는 모델입니다. 그것은 다시 재현할 수 있습니까 부상 매개 변수의 조작 수 있도록 표준화합니다. LFP의 recapitulates 부상 따라서는 임상 관련 렌더링, 인간 관찰, 임상 번역 20 소설 치료제의 탐험을 허용합니다. 우리는 생쥐에서 LFP 절차를 수행하기 위해 상세한 프로토콜을 설명합니다. 입은 부상은 피질, 해마의 가장 취약하고 코퍼스의 callosum 같은 뇌 영역과 중간에 온화합니다. Hippocampal 및 모터 학습 작업 LFP 다음과 탐험하고 있습니다.

래터럴 유체 타진 (LFP), 생쥐의 외상성 뇌 손상의 설립 모델이 증명됩니다. LFP 동물 모델에 대한 세 가지 주요 기준을 충족 : 타당성, 안정성 및 임상 관련. 수술 craniotomy 구성 절차, 허브의 고정은 초점과 확산 부상의 결과로, 상해의 유도 뒤에 설명되어 있습니다.

외상성 뇌손상(TBI) 연구는 이환율과 ...를 초래하는 머리 부상에 대한 인식이 높아짐에 따라 새로운 추진력을 얻었습니다.

본 절차의 전반적인 목적은 마우스에게 경도에서 중등도의 뇌 손상을 유도하여 인간의 외상성 뇌 손상을 모델링하는 것입니다. 이는 먼저 C-craniectomy(두개골 절제술)를 수행함으로써 이루어집니다. 절차의 두 번째 단계는 두개골 절제 부위 위에 허브를 부착하는 것입니다.다음으로, 뇌 손상을 유도하기 위해 허브를 통해 물 펄스를 전달합니다. 절차의 마지막 단계는 허브를 제거하고 상처 부위를 봉합하는 것입니다. 최종적으로, 면역형광법, 현미경 관찰, 인지 및 운동 기능 테스트를 통해 손상 후 다양한 간격에서 나타나는 형태학적 및 행동적 변화를 보여주는 결과를 얻을 수 있습니다.일반적으로 이 방법에 익숙하지 않은 연구자는 경막에 손상을 주지 않고 두개절제술을 수행하거나, 경막에 접착제가 묻지 않게 허브를 부착하는 데 어려움을 겪을 것입니다. 따라서 이 기술을 시각적으로 보여주는 것은 매우 가치 있는 일입니다. 본 실험실의 기술자가 해당 절차를 시연할 것입니다. 우선 수술 부위를 준비하는 것으로 시작하십시오.수술 중 지속적인 마취제 흡입을 위해 가스 헤드 홀더가 장착된 정위 고정 장치를 준비합니다. 다음으로 수술 현미경과 광원을 필요에 따라 배치합니다. 수술 중 마우스 아래에 놓을 가온 패드를 준비하고, 수술 부위에 접촉하는 모든 도구와 재료가 멸균 상태인지 확인합니다.수술 부위 준비가 완료되면, 두개골에 부착되어 LFP 장치와 연결될 허브를 제작합니다. 면도날을 사용하여 20게이지 1.5인치 바늘의 금속 끝부분을 약간 비스듬하게 절단합니다. 허브의 개구부는 약 3mm가 되어야 합니다.다음으로, 잡초 제거기용 나일론 줄(weed whacker line)을 약 1mm 두께의 디스크 형태로 자릅니다. 이는 두개골을 드릴링하는 동안 타인을 고정하는 데 사용됩니다. 마우스가 마취되면, 동물을 정위 고정 장치(stereotaxic instrument)에 올리고 노즈 콘(nose cone) 내에 머리를 고정합니다.수술 중에 호흡률을 시각적으로 모니터링하는 것을 잊지 마십시오. 다음으로, 안구 건조를 방지하기 위해 눈에 연고를 바르고 머리의 털을 제거합니다. 포비돈 요오드 용액을 반복적으로 도포하여 수술 부위를 세척 및 소독한 후, 70% alcohol로 마무리합니다.수술 부위 준비가 완료되었으므로, 메스를 사용하여 눈에서 시작해 목까지 이어지는 정중선 절개를 수행합니다. 소형 불독 클램프(bulldog clamp)를 사용하여 피부를 뒤로 당깁니다. 두개골을 노출시켜 명확한 수술 시야를 확보하기 위해, 치과용 도구 또는 골 긁개(bone scraper)를 사용하여 두개골에 국소 마취제인 bupivacaine을 도포하고 두개골 상단의 근막을 제거합니다.다음으로, 우반구 위에서 Bgma와 Lambda의 중간 지점 및 시상봉합(sagittal suture)과 외측 능선(lateral ridge)의 중간 지점에 표시를 합니다. 플라스틱 웨보(webo) 위에 Loctite 접착제를 한 방울 떨어뜨리고, 측면 파지 핀셋을 사용하여 이전에 준비한 디스크 중 하나를 접착제에 담급니다. 그 후 디스크를 두개골에 표시한 지점에 누릅니다.바늘과 주사기를 사용하여 Loctite Accelerator를 1~2방울 첨가합니다. 접착제를 경화시키려면 외경 3mm의 트리핀(triffin)을 디스크 위에 배치하고 두개골을 관통할 때까지 시계 방향으로 회전시킵니다. 경막을 손상시키거나 너무 깊게 드릴링하는 것을 방지하기 위해 트레이의 진행 상황을 수시로 확인하십시오.가볍게 눌렀을 때 두개골 플랩이 헐거운 느낌이 들어야 합니다. 치과용 도구를 두개골 표면과 평행하게 배치하고 이를 이용해 골 플랩을 들어 올립니다. 포셉을 사용하여 두개골에서 뼈를 조심스럽게 분리합니다.면봉으로 압력을 가해 출혈을 멈추고 골분말이 경막에 닿지 않도록 합니다. 경막에 눈에 보이는 손상이 있는 경우, 해당 동물은 인도적 안락사를 통해 실험에서 제외해야 합니다. 포셉을 사용하여 허브의 편향이 두개골의 곡선과 일치하도록 구멍 위에 허브를 배치합니다.한 손으로 허브를 고정하면서 다른 한 손으로 끝이 뾰족한 나무 막대를 사용하여 허브 가장자리를 따라 순간접착제를 도포합니다. 접착제가 경막 상단에 묻지 않도록 주의하십시오. 접착제가 묻을 경우 손상 시 가해지는 힘이 감소하거나 나중에 허브를 제거할 때 찢어짐이 발생할 수 있습니다. 작은 종이컵에 Sano 아크릴과 치과용 아크릴을 함께 섞습니다.1 cc 주사기를 사용하여 허브 주변에 시멘트를 도포합니다. 시멘트는 허브의 하단 2 mm와 주변에 노출된 두개골을 모두 덮어야 합니다. 회복 단계 동안 경막을 촉촉하게 유지하기 위해 허브를 멸균 식염수로 채웁니다.용액의 수위가 유지되지 않는다면 누출 가능성이 높으므로, 동물에게 유체 투여를 완료하기 위해 새로운 허브를 부착하고, 와이어 덮개가 없는 가온된 빈 케이지로 옮겨야 합니다. 바닥에 하이드로겔을 일부 배치하고 생쥐가 1~2시간 동안 회복될 수 있도록 합니다. LFP 장치의 구성 요소는 진자, 고압 튜브와 수컷 루어 락 피팅이 부착된 물로 채워진 아크릴 실린더, 증폭기 및 오실로스코프입니다.먼저 오실로스코프와 증폭기를 켭니다. LFP 장치와 이에 연결된 고압 튜브에 물이 채워져 있고 기포가 없는지 루어 락 튜브의 수컷 단단을 밀폐하여 확인하십시오. 펜듈럼을 놓아 테스트 펄스를 전달합니다.여러 번의 펄스를 가하여 진자가 오실로스코프와 앰프에서 매끄러운 신호를 생성하는지 확인하십시오. 노이즈가 섞인 신호는 시스템 내에 공기가 있음을 나타내며, 이는 손상 펄스를 가하기 전에 반드시 제거해야 합니다. 손상의 일관성을 유지하기 위해 장치에서 가해지는 압력을 모니터링하십시오.여기 오실로스코프 트레이스는 2.16 volts의 peak-to-peak 값을 보여주며, 이는 1.47 atmospheres의 압력을 나타냅니다. 펄스의 강도를 조절하기 위해 진자의 각도를 늘리거나 줄일 수 있습니다. 여기에서 각도는 약 10 degrees입니다.LFP 장치를 조정한 후, 튜빙의 루어 락(lure lock) 끝부분을 반드시 열어주십시오. LFP 장치가 준비되면 마취된 마우스를 플랫폼 위에 올리고 허브에 멸균 식염수를 채웁니다. LFP 장치의 수형 루어 락을 허브의 암형 루어 락 피팅에 연결하십시오.동물을 옆으로 눕히고, 정상적인 호흡 패턴이 회복되었으나 동물이 감각을 되찾기 전 단계에서 펜듈럼을 놓아 단일 펄스의 손상을 유도합니다. 펄스의 정확한 압력을 기록해야 합니다. SHA 동물은 손상을 유발하는 실제 유체 펄스를 제외하고 모든 동일한 절차를 거칩니다.동물을 등 쪽으로 눕혀 정위 반사 시간을 모니터링합니다. 동물이 스스로 몸을 바로 세우면, 다시 짧게 마취합니다. 두개골에서 시멘트와 허브를 제거합니다.경막의 탈출 여부를 확인한 후, vet bond 조직 접착제로 상처 부위를 폐쇄합니다. 허브에 폐쇄가 있는지 시각적으로 검사합니다. 동물이 다시 움직일 수 있을 때까지 따뜻한 케이지에 보관한 다음, 원래의 사육 케이지로 돌려보냅니다.LFP 이후의 행동 검사는 인지적 및 운동적 결과 모두를 평가하는 데 사용될 수 있습니다. 모리스 수중 미로(Morris Water Maze)는 테스트실 내의 시각적 단서를 이용하여 학습 및 기억에 미치는 영향을 결정하는 데 사용됩니다. 가짜 수술(Sham) 군 쥐들은 플랫폼을 찾는 능력이 더 효율적으로 향상됩니다.훈련이 진행됨에 따라, LFP 처치를 받은 생쥐는 가짜 수술(sham) 생쥐에 비해 테스트 초기 이틀 동안 숨겨진 플랫폼을 찾는 데 더 오랜 시간이 걸렸으나, 셋째 날에는 과제를 학습한 것으로 보였습니다. 손상이 기억 유지에 미치는 영향을 확인하기 위해, 마지막 훈련 세션 하루 뒤에 프로브 시험(probe trial)을 수행하였습니다.Sham 쥐는 LFP 처치를 받은 쥐에 비해 표적 구역에서 더 많은 시간을 보냅니다. LFP로 인해 발생한 운동 능력 저하는 로터 러그 테스트(rotor rug test)를 통해 확인할 수 있으며, LFP 처치를 받은 쥐는 손상 후 1일, 7일, 21일째에 sham 쥐보다 평균 추락 잠복기가 더 짧게 나타납니다. GFAP(glial fibrillary acidic protein) 염색 결과, 손상 부위의 피질 전반에서 글리오시스(gliosis)가 증가한 것이 확인되었으나, sham 쥐의 해당 부위에서는 성상교세포 수의 증가가 나타나지 않았습니다.마찬가지로, MAC one 염색 결과는 가짜 수술(sham surgery)을 받은 마우스에 비해 손상 부위 주변에 더 많은 대식세포가 존재함을 보여줍니다. 또한, 가짜 수술군에서는 나타나지 않으나 LFP를 처치한 마우스에서는 피질 조직의 물리적 손상이 빈번하게 관찰됩니다. 이 절차를 수행할 때, 경막(dura)을 손상시켜서는 안 되며 LFP 장치 내에 공기 방울이 없어야 한다는 점에 유의하는 것이 중요합니다.이 기술을 통해 신경과학자들은 손상 전후에 다양한 약리학적 및 유전적 조작을 평가할 수 있습니다. 이는 생쥐를 대상으로 진행됩니다. 이를 통해 외상성 뇌 손상을 겪는 환자에게서 신경 퇴행을 감소시키거나 재생을 촉진하는 분자가 무엇인지 밝히는 데 도움이 될 것입니다.이 영상을 시청한 후, 귀하는 두개골 절제술을 시행하고 두개골에 허브를 부착한 뒤, 허브를 통해 경막에 수압 펄스를 가함으로써 설치류 모델에서 경도에서 중등도의 외상성 뇌손상을 유도하는 방법에 대해 충분히 이해하게 될 것입니다.

lateral-fluid-percussion-model-of-traumatic-brain-injury-in-mice

Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

이 비디오는 측면 유체 타악기(LFPI)를 사용하여 외상성 뇌 손상(TBI)의 마우스 모델을 생성하는 방법을 보여줍니다. 쥐를 마취시키면 두개골에 창을 만들어 뇌가 노출됩니다. 식염수로 채워진 캐뉼라를 창에 부착한 다음 LFPI에 연결합니다. 장치의 진자가 해제되어 외상성 뇌 손상을 입히는 압력 펄스를 생성합니다.

Lateral Fluid Percussion Device를 사용하여 외상성 뇌 손상의 마우스 모델 생성

이 비디오는 측면 유체 타악기 손상(FPI) 장치를 사용하여 쥐의 외상성 뇌 손상(TBI)을 유도하는 방법을 보여줍니다. 이 절차는 마취된 쥐의 두개골에 구멍을 뚫어 경막을 노출시키고 그 위에 캐뉼라를 부착하는 것을 포함합니다. 그런 다음 쥐를 장치에 연결하면 뇌에 도달하는 압력파를 생성하여 신경 세포 사멸과 혈관 손상을 일으킴으로써 TBI를...

Duction of Traumatic Brain Damage in a Rat Model Using a Lateral Fluid Percussion Device (측면 유체 타악기 장치를 사용한 쥐 모델에서 외상성 뇌 손상 유도)

운동 선수는 매년 수백 건의 경증 외상성 뇌 손상 (mTBI) / 뇌진탕을 흡수합니다. 그러나 뇌에 대한 이들의 결과는 제대로 이해되지 못했습니다. 따라서 임상 적으로 적절한 증상을 반복적으로 반복하는 단일 및 반복 mTBI의 동물 모델은 mTBI 및 뇌진탕의 연구를 발전시킬 수있는 수단을 제공합니다.

단일 및 반복적 인 경미한 외상성 뇌 손상의 마우스 모델

여기에 제시된 프로토콜은 직감 미생물군유전체 분석을 위한 케이쿰 함량의 수집에 이어 측면 유체 타악기 장치를 사용하여 확산 외상성 뇌 손상을 유도하는 프로토콜이다.

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외상성 뇌 손상의 유도에 대한 제어 피질 영향의 뮤린 모델

우리는 여기에 설치류를위한 폭발파 모델의 프로토콜을 제시하여 경증에서 중등도의 외상성 뇌 손상의 신경 생물학적 및 병리 생리학적 효과를 조사합니다. 우리는 압력 센서가 장착 된 가스 구동식 벤치 탑 설정을 구축하여 폭발로 인한 경증에서 중등도의 외상성 뇌 손상을 안정적이고 재현 가능한 생성이 가능하도록했습니다.

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외상성 뇌 손상에 대한 신경 염증 및 혈역학 반응의 시스템 분석

이 프로토콜은 마우스 모델에서 경미한 외상성 뇌 손상을 설명합니다. 특히, 경미한 정중선 폐쇄 두부 손상을 유도하기 위한 단계별 프로토콜 및 동물 모델의 특성화가 충분히 설명된다.

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LFPI(Lateral Fluid Percussion Injury) 장치가 안정적으로 작동하려면 적절한 관리와 유지 관리가 필수적입니다. 여기에서는 LFPI 장치를 적절하게 청소, 충전 및 조립하는 방법과 최적의 결과를 위해 적절하게 유지 관리되는지 확인하는 방법을 보여줍니다.

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이 프로토콜은 폐쇄성 두부 손상(CHI) 방법을 통해 유도된 반복적인 경미한 외상성 뇌 손상(rmTBI)의 수정된 마우스 모델을 제시합니다. 이 접근법은 두개골 창과 유체 타악기를 사용하여 수막 노출로 인해 일반적으로 발생하는 염증을 줄이고 설치류의 rmTBI 모델링에서 재현성 및 정확도를 향상시킵니다.

얇아진 두개골 창과 유체 타악기를 통합한 반복적인 경미한 외상성 뇌 손상의 수정된 마우스 모델

배우세요 측면 유체 타악기 기법을 사용하여 마우스에서 외상성 뇌 손상을 유도하는 방법을. 이 기술은 신경과학 연구에서 뇌 손상의 형태학적 및 행동 변화를 평가하는 데 필수적입니다.

측면 유체 타악기 : 마우스의 외상성 뇌 손상 모델

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