$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
세포 분화 배지에서 배양된 신경 세포로 시작합니다.
금 나노로드를 배지에 첨가합니다.
세포가 엔도사이토시스라는 과정을 통해 나노로드를 삼킬 수 있도록 배양합니다.
레이저로 나노로드를 자극합니다.
레이저 빔은 나노로드의 표면 전자를 여기시킵니다. 그런 다음 여기된 전자는 기저 상태로 돌아가 열 에너지를 방출합니다.
이 열은 신경 세포를 자극하여 βIII-튜불린이라는 특정 세포골격 단백질에 의해 지원되는 돌기를 생성합니다.
사용한 배지를 제거합니다.
세포를 수정합니다. 멤브레인을 투과화하기 위해 적절한 세제를 추가합니다.
항체의 비특이적 결합을 방지하기 위해 차단제를 첨가하십시오.
βIII-튜불린을 표적으로 하는 1차 항체로 세포를 표지합니다.
1차 항체와 상호 작용하는 형광 태그가 지정된 2차 항체를 추가합니다.
파란색 형광 염료로 핵을 염색합니다.
낙산화형광 현미경을 사용하여 파란색 핵이 있는 빨간색 세포를 관찰합니다.
세포의 길쭉한 돌출부는 신경 세포 분화를 나타냅니다.
NG108-15 뉴런 세포를 T75 플라스크의 세포 배양 배지 10밀리리터에서 배양한 후 가습된 분위기에서 섭씨 37도에서 배양합니다. 세포가 70%에서 80% 합류하면 따뜻하고 신선한 배지로 배지를 교체합니다.
그런 다음 합류 플라스크의 바닥을 부드럽게 두드려 세포를 기계적으로 분리합니다. 세포 현탁액을 600g에서 5분 동안 원심분리하고 세포 펠릿 을 2밀리리터의 따뜻한 세포 분화 배지에 재현탁합니다. 그런 다음 200마이크로리터의 세포 분화 배지와 함께 96웰 플레이트에 세포를 시드합니다.
샘플을 섭씨 37도에서 하루 동안 배양합니다. 다음날 금 나노로드 용액을 첨가하고 추가로 24시간 동안 배양합니다. 이 절차에서는 레이저를 단일 모드 광섬유와 결합하고 FC 커넥터로 종단합니다. 표준 파워 미터로 출력 레이저 출력을 측정합니다.
나노로드 배양 3일째에 FC 커넥터를 웰에 고정하고 샘플을 조사하고 대조군을 실온에서 다른 레이저 출력으로 연속파로 1분 동안 조사합니다. 5일째에 샘플에서 세포 분화 배지를 제거하고 부피당 3.7% 부피의 포름알데히드 용액으로 10분 동안 고정합니다.
그런 다음 부피당 0.1% 부피의 Triton X-100으로 세포를 20분 동안 투과화합니다. 그 후, 60분 동안 시료에 부피당 3% 중량의 BSA를 첨가하여 반응되지 않은 단백질 결합 부위를 차단합니다. 샘플에 항-베타-3-튜불린으로 4°C에서 밤새 라벨을 붙입니다.
다음날, 적절한 2차 항체와 함께 어두운 곳에서 세포를 90분 동안 배양합니다. 그 후, 세포 핵을 DAPI로 10분 동안 라벨링한 다음 최소 20x 대물렌즈를 사용하여 낙광 형광 또는 공초점 현미경으로 샘플을 이미지화합니다. 2차 항체에 따라 현미경 필터를 선택하고 DAPI 필터를 선택하여 세포핵을 시각화합니다.