0 조회수 • 3:29 분 • July 8th, 2025
Rho-키나아제 억제제를 함유한 줄기세포 배지에서 근아세포 분화 또는 MYOD 단백질 암호화, 독시사이클린 유도 유전자를 포함하는 조작된 인간 iPSC로 시작합니다.
세포를 ECM 코팅 플레이트로 옮기고 배양하여 세포 부착을 촉진합니다.
한편, 억제제는 세포내 Rho-kinase 효소를 비활성화하여 세포 생존력을 향상시킵니다.
배지를 독시사이클린이 포함된 줄기 세포 배지로 교체하십시오.
독시사이클린은 세포에 들어가 활성제 단백질에 결합합니다. 이 복합체는 프로모터에 결합하여 일부 세포에서 유전자 발현을 유도하고 줄기 세포를 근육 세포로 분화시키는 MYOD 단백질을 생성합니다.
다핵 근육 세포인 근관의 형성을 촉진하기 위해 근원성 분화 인자를 포함하는 근성 분화 배지로 세포를 처리합니다.
나중에 신경 성장 인자가 포함된 신경 유도 배지를 도입합니다.
이러한 요인은 나머지 iPSC를 뉴런 주위에 수초를 형성하는 운동 뉴런과 슈완 세포로 분화합니다.
마지막으로 배지를 신경근 접합부 배지로 교체하여 운동 뉴런과 근관 사이의 연결을 촉진하여 신경근 접합부를 형성합니다.
페트리 접시에 1밀리리터의 세포 박리 용액을 첨가하기 전에 3밀리리터의 PBS로 세포를 세척합니다. 섭씨 37도에서 10분 후, 영장류 배아 줄기 세포 배지 3밀리리터를 각 웰에 넣고 부드럽게 피펫팅을 3회 하여 커버슬립에서 세포를 해리시킵니다.
다음으로, 분리된 상청액을 함유한 줄기 세포를 원심분리를 위해 50밀리리터 원뿔형 튜브에 풀링하고, 계수를 위해 10마이크로몰 Y27632 ROCK 억제제가 보충된 신선한 영장류 배아 줄기 세포 배지 3밀리리터에 줄기 세포 펠릿을 재현
탁합니다.그런 다음 세포를 배지 밀리리터당 2 x 105 세포로 희석하고 ROCK 억제제 농도를 보충하고 세포외 매트릭스 코팅된 6웰 플레이트의 각 웰에 있는 각 커버슬립에 2밀리리터의 세포를 되돌립니다.
24시간 후, 각 웰의 상청액을 독시사이클린 밀리리터당 1마이크로그램이 보충된 신선한 영장류 배아 줄기 세포 배지 2밀리리터로 교체하고 플레이트를 세포 배양 인큐베이터로 24시간 동안 되돌립니다.
배양이 끝나면 상청액을 웰당 독시사이클린이 보충된 분화 배지 2밀리리터로 교체하고 플레이트를 세포 배양 인큐베이터로 10일 동안 되돌립니다.
배양이 끝나면 상청액을 웰당 독시사이클린이 보충된 근원성 분화 배지 2밀리리터로 교체하고 플레이트를 세포 배양 인큐베이터로 다시 10일 동안 돌립니다. 배양이 끝나면 상청액을 웰당 2밀리리터의 신경근 접합부 배지로 교체하고 플레이트를 30일 동안 세포 배양 인큐베이터로 되돌립니다.
본 연구에서는 엔지니어링된 인간 iPSC를 근육 세포로 분화시키고, 이후 운동 신경세포와 슈반 세포로 분화시키는 방법을 설명합니다. 이 과정에는 세포 부착, 분화 및 신경근 접합부 형성을 촉진하기 위한 특정 배지와 인자들의 사용이 포함됩니다.
이 방법은 엔지니어링된 iPSC로부터 기능적인 인간 신경근 접합부를 생성할 수 있게 하여, 신경근 연결성 및 질환 기전을 모델링하기 위한 확장 가능하고 재현 가능한 in vitro 시스템을 제공합니다. 이는 시냅스 형성 및 근육-뉴런 통신에 미치는 화합물의 영향을 평가할 수 있는 인간 관련 플랫폼을 제공함으로써, 신경퇴행성 및 신경근 질환 프로그램의 타겟 검증과 기전적 리스크 감소를 지원합니다. 단계적 분화 접근 방식은 동물 모델에 대한 의존도를 낮추고 중개 연구의 연속성을 개선하여 초기 발굴 단계에서의 예측 신뢰도를 높여줍니다.
이 방법은 타겟 검증부터 선도물질 확인, 그리고 전임상 평가에 이르는 발견 연속체에 적합하며, 특히 신경근 및 신경퇴행성 질환 프로그램에 유용합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026