0 조회수 • 2:55 분 • July 8th, 2025
기간 배양 후 산소가 공급된 aCSF로 관류된 기록 챔버에 마우스 뇌 절편을 고정합니다.
슬라이스의 세포에는 칼슘 지시약이 로드되어 세포 내 칼슘 측정이 용이합니다.
전해질 용액에 전극을 포함하는 기록 피펫을 가져 가십시오.
표적 뉴런을 식별합니다. 세포막에 양압으로 기록 피펫을 배치하여 딤플을 만듭니다.
음압을 가하여 단단히 밀봉합니다.
또한 음압 펄스를 적용하여 막을 파열시키고 전체 셀 구성을 설정합니다.
칼륨 농도가 높은 aCSF를 관류하여 뉴런의 막을 탈분극시킵니다.
탈분극은 나트륨 채널을 열어 활동 전위를 유발하고, 이는 차례로 전압 개폐 칼슘 채널을 활성화하고 칼슘 유입을 허용합니다.
칼슘 이온이 지시약에 결합하여 형광을 향상시키며, 이는 적절한 조명 하에서 시각화할 수 있습니다.
칼륨 적용 후 칼슘 유입으로 인한 세포내 형광의 증가는 장기간 배양 후 신경 생존력을 나타냅니다.
기록을 위해 현미경 아래 수중 기록 챔버에 조직을 넣고 분당 4-5밀리리터의 유속으로 산소가 함유된 aCSF로 관류합니다. 맞춤형 하프를 사용하여 티슈를 잡습니다. 다음으로, 마이크로피펫 풀러를 사용하여 일부 기록 피펫을 준비하여 5-6메가 옴의 최종 저항을 달성합니다.
피펫에 3-4마이크로리터의 내부 용액을 채운 다음 용액을 얼음 위에 놓습니다. 그런 다음 IR-DIC에서 CCD 카메라를 사용하여 세포를 시각화합니다. 마이크로 매니퓰레이터를 사용하여 세포막에 피펫을 배치합니다. 피펫 홀더의 흡입구를 통해 양압을 유지합니다. 피펫이 셀에 닿으면 피펫에 부드러운 음압을 가하여 기가옴 밀봉을 달성합니다.
그런 다음 짧은 음압으로 세포막을 파열시킵니다. 그런 다음 전체 셀 전류 또는 전압 클램프 기록을 시작합니다. 흐름 4의 단일 여기 파장의 경우 460-490나노미터 대역 통과 필터를 통해 여기광을 필터링하고 515-550나노미터 대역 통과 필터를 통해 방출된 빛을 필터링합니다.
본 논문은 전세포 패치 클램프(whole-cell patch-clamp) 기술을 사용하여 뉴런의 세포 내 칼슘 수치를 기록하는 방법을 상세히 설명합니다. 이 과정에는 마우스 뇌 절편 준비, 칼슘 지시약 주입, 그리고 기록용 피펫을 이용해 표적 뉴런에 견고한 씰(seal)을 형성하는 단계가 포함됩니다.
이 방법은 장기간 배양 후 뇌 조직 내 뉴런의 생존력과 기능적 반응을 직접 평가할 수 있게 하며, 이는 지속적인 조직 건강 유지가 필수적인 전임상 모델에서 매우 중요한 고려 사항입니다. 전기생리학적 기록과 칼슘 이미징을 결합함으로써, 뉴런의 흥분성과 세포 내 신호 전달에 대한 정량적인 실시간 리드아웃을 제공합니다. 이러한 이중 모드 접근 방식은 관찰된 약리학적 효과가 생리적으로 반응하는 뉴런에서 발생함을 확인함으로써, 신경과학 신약 개발 과정에서 타겟 검증 및 기전적 리스크 감소를 지원합니다.
이 기술은 화합물 스크리닝에 앞서 신경 세포의 건강 상태와 신호 전달 능력을 검증해야 하는 표적 가설 검증 단계의 초기 발견 워크플로우에 적합합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026