0 조회수 • 3:54 분 • July 8th, 2025
빛 의존성 이온 채널을 발현하는 배아 신장 세포와 형광 리포터 단백질이 포함된 커버슬립을 실리콘 도포 측정 챔버에 놓습니다. 닫고 외부 버퍼를 추가합니다.
이 챔버를 현미경 아래에 배치합니다. 한천으로 채워진 목욕 전극을 놓습니다. 잔류 배지와 죽은 세포를 제거하기 위해 완충액으로 관류합니다.
형광 필터를 사용하여 표적 세포를 식별하고 초점을 맞춥니다.
패치 피펫을 마이크로매니퓰레이터에 부착합니다. 막힘을 방지하기 위해 압력을 가하고 세포에 접근하십시오.
피펫을 세포 근처에 놓고 양압을 해제하여 팁에 멤브레인 패치를 형성합니다.
멤브레인 패치를 형성한 후 음압을 가하여 멤브레인을 파열시킵니다.
특정 파장의 빛을 적용하여 이온 채널을 엽니다. 이온의 움직임은 전극에 의한 전압 변화로 기록됩니다.
시작하려면 외부 버퍼의 누출을 방지하기 위해 측정 챔버를 실리콘으로 밀봉하십시오. 그런 다음 커버슬립 하나를 챔버에 넣고 닫습니다. 세포가 분리되는 것을 방지하기 위해 챔버를 세포외 완충액으로 조심스럽게 채웁니다. 그런 다음 세포 시각화를 위해 40x 대물렌즈를 사용하여 측정 챔버를 현미경 아래에 놓습니다.
다음으로, 수조 전극 위에 한천 브리지를 놓고 유체 레벨 센서 및 수조 핸들러의 관류 배출구와 함께 챔버에 넣습니다. 세포외 용액을 신선한 외부 용액 1밀리리터와 두 번 교환하여 잔류 배양 배지와 분리된 세포를 제거합니다. 세포에 초점을 맞추고 다른 세포로부터 분리해야 하는 형질감염된 세포를 찾습니다. 그런 다음 트리플 밴드 필터 세트와 주황색 조명을 사용하여 mCherry를 흥분하고 시각화합니다.
피펫을 피펫 홀더에 장착하고 팁이 막히는 것을 방지하기 위해 약간의 양압을 가합니다. 현미경 아래에서 패치 피펫의 끝을 찾아 마이크로 매니퓰레이터를 사용하여 세포 가까이로 이동합니다.
데이터 수집 소프트웨어 내에서 Bath 모드에서 멤브레인 테스트를 시작하고 전압 단계를 적용합니다. 피펫 저항이 1.3에서 3.0메가옴의 원하는 범위에 있는지 확인하십시오. 그런 다음 오프셋 전류를 0으로 설정하고 앰프의 피펫 오프셋 손잡이를 돌려 피펫 전위를 조정합니다.
전체 세포 구성에서 패치를 설정하려면 패치 피펫을 사용하여 상단에서 천천히 세포에 접근하고 세포에 닿기 직전에 양압을 해제합니다. 피펫 정전 용량 보상 손잡이를 돌려 피펫 정전 용량을 보상하여 테스트 펄스의 평평한 응답을 얻습니다.
멤브레인 테스트를 세포 모드로 전환합니다. 그런 다음 전체 세포 형태를 얻기 위해 강도가 증가하는 짧은 음압 또는 음압 펄스를 가하여 밀봉을 파괴하지 않고 패치를 파열시킵니다.
두 개의 전체 셀 매개변수인 셀 정전 용량과 직렬 저항을 설정하여 직렬 저항 보상을 시작합니다. 다양한 유지 전위에서 광 유도 전류를 기록합니다. 이 그림은 녹색 조명으로 조명되는 동안 PSACR1이 고정 전류 수준으로 빠르게 감쇠하는 빠른 과도 전류를 특징으로 한다는 것을 보여줍니다.
본 논문은 패치 클램프 기술을 사용하여 배아 신장 세포에서 광유도 이온 전류를 기록하는 방법을 설명합니다. 이 과정에는 형질전환된 세포를 분리하고 특정 파장의 빛을 조사하여 이온 채널을 활성화하는 단계가 포함됩니다.
광유전학적 전기생리학은 살아있는 세포 내 이온 채널 기능을 정밀하게 조사할 수 있게 하여, 신경과학 및 약리학 분야의 타겟 검증을 지원합니다. 빛 자극을 측정 가능한 전기생리학적 출력과 연결함으로써, 이 방법은 이온 채널 조절제의 메커니즘적 리스크 제거를 위한 정량적 데이터를 제공합니다. 이러한 접근 방식은 채널 선택성과 역학에 대한 재현 가능하고 빛으로 제어되는 평가를 가능하게 하여, 초기 발견 단계에서의 예측 신뢰도를 높여줍니다.
이 방법은 이온 통로 특성 분석을 위한 빛 제어 전기생리학적 분석법을 제공함으로써 초기 발견 워크플로우에 통합되어, 기능적 검증을 통한 선도 물질 발굴을 지원합니다.
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마지막 업데이트: 29 8월 2026