$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
쥐 해마 뉴런이 포함된 미세유체 칩을 가져 가십시오.
이
칩은 체세포 및 축삭 저장소를 특징으로 하며, 구획은 마이크로 그루브로 구획되어 뉴런을 효과적으로 구획화하고 체세포 및 축삭 영역을 분리합니다.
매체를 제거하고 포름알데히드를 첨가하십시오. 뉴런을 고정하고 구조를 보존하기 위해 배양합니다.
과도한 포름알데히드를 제거하고 완충액으로 세척하십시오. 그런 다음 세제를 첨가하여 뉴런을 투과시킵니다.
세제를 차단 용액으로 교체하여 비특이적 결합 부위를 차단합니다.
차단 용액을 제거하고 시냅스 소포의 통합 막 단백질인 특정 신경 시냅스 마커에 결합하는 1차 항체와 함께 배양합니다.
결합되지 않은 항체를 제거하고 완충액으로 세척합니다.
시냅스 마커를 표적으로 하는 1차 항체에 결합하는 형광단 태그가 지정된 2차 항체와 함께 배양합니다.
결합되지 않은 2차 항체를 제거하고 완충액으로 세척합니다.
공초점 현미경에서 칩을 이미지화하여 형광 신경 시냅스 마커를 시각화합니다.
형광 면역염색을 시작하려면 칩에서 대부분의 배지를 제거하고 내부 구획에 수분을 공급합니다. 즉시 100마이크로리터의 고정 용액을 축삭 및 체세포 구획의 상단 웰에 추가합니다.
1분 후 100마이크로리터의 고정 용액을 바닥 웰에 추가하고 실온에서 30분 동안 세포를 고정합니다. 웰에서 대부분의 용액을 제거하고 즉시 150마이크로리터의 PBS를 축삭 및 체세포 구획의 상단 웰 각각에 추가합니다. PBS가 하단 웰로 흘러 들어갈 때까지 2분 정도 기다린 다음 PBS를 제거하고 동일한 과정을 사용하여 웰을 두 번 더 헹굽니다.
마지막 헹굼 후 칩의 웰에서 대부분의 PBS를 제거하고 축삭 및 체세포 구획의 각 상단 웰에 0.25% Triton X-100이 포함된 150마이크로리터의 PBS를 즉시 추가합니다.
15분 동안 기다린 다음 우물에서 대부분의 액체를 제거합니다. 축삭 및 체세포 구획의 각 상단 웰에 즉시 150마이크로리터의 차단 용액을 추가합니다. 15분 후, 웰에서 대부분의 액체를 제거하고 즉시 100마이크로리터의 1차 항체 용액을 축삭 및 체세포 구획의 상단 웰 각각에 추가합니다.
증발을 최소화하기 위해 칩을 덮고 1차 항체의 세포를 실온에서 1시간 동안 배양합니다. 다음으로, 대부분의 용액을 제거하여 칩을 헹구고 축삭 및 체세포 구획의 각 상단 웰에 즉시 150마이크로리터의 PBS를 추가합니다. 5분 후 두 웰에서 PBS를 제거하고 헹굼을 두 번 더 반복합니다.
이제 웰에서 대부분의 액체를 제거하고 즉시 PBS에 있는 100마이크로리터의 2차 항체를 축삭 및 체세포 구획의 각 상단 웰에 추가합니다. 증발을 최소화하기 위해 칩을 덮고 칩을 실온에서 1시간 동안 배양합니다. 앞서 살펴본 것처럼 PBS로 칩을 세 번 헹굽니다. 그런 다음 함께 제공되는 텍스트 프로토콜에 설명된 대로 칩을 마운트하고 이미지화합니다.